張?jiān)谠?,李曉梅,王涓冬,孫建華,姜玉華△,潘祥林
(山東大學(xué)第二醫(yī)院1腫瘤防治中心,2血液內(nèi)科,山東 濟(jì)南 250033)
肺癌的發(fā)病率和死亡率高,目前居惡性腫瘤死因的首位。生物免疫治療是肺癌治療的重要手段,exosome疫苗在多種腫瘤中顯示了抗腫瘤作用,受到普遍關(guān)注,但eoxosme疫苗的療效有待于進(jìn)一步提高。白細(xì)胞介素18(interleukin 18,IL-18)具有強(qiáng)大的免疫刺激功能,IL-18基因修飾能增強(qiáng)腫瘤疫苗的療效[1],但I(xiàn)L-18基因修飾否能增強(qiáng)肺癌細(xì)胞來源exosome誘導(dǎo)的抗腫瘤作用尚不清楚。腫瘤細(xì)胞來源的exosome含有腫瘤抗原,能夠刺激樹突狀細(xì)胞(dendritic cells,DC)誘導(dǎo)活化T細(xì)胞而產(chǎn)生抗腫瘤作用[2],是exosome疫苗重要來源。為此,本文旨在研究IL-18基因修飾的NCI-H460肺癌細(xì)胞來源exosome誘導(dǎo)活化T細(xì)胞對肺癌細(xì)胞的殺傷作用,為獲得高效的exosome疫苗作初步探討。
RPMI-1640培養(yǎng)液 (Gibco);蔗糖、重水(Sigma);超濾離心管(Millipore);鼠抗人熱休克蛋白70(heat shock protein 70,HSP70)、人白細(xì)胞抗原(human leukocyte antigtn,HLA)及 IL-18 抗體(Santa Cruz);辣根酶標(biāo)記兔抗鼠 IgG(Santa Cruz);ECL(Santa Cruz);LDH試劑盒(南京建成生物工程公司);IL-18和pcDNA3.1+載體修飾的NCI-H460細(xì)胞由本實(shí)驗(yàn)室保存。CO2培養(yǎng)箱(Format);超速冷凍離心機(jī)(55P-72型,日立),TEM-100X透射電鏡(日立);電泳儀及凝膠成像儀(Bio-Rad);紫外分光光度儀(Hewlett-Packard)。
將IL-18基因修飾的NCI-H460細(xì)胞(IL-18/H460)、pcDNA3.1+載體修飾細(xì)胞(DNA3.1/H460)及未修飾NCI-H460細(xì)胞(NCI-H460)用RPMI-1640培養(yǎng)液培養(yǎng),收集上清液,用差速離心法提取exosome。細(xì)胞培養(yǎng)上清液1000×g,離心10 min;取上清,10000×g離心10 min;取上清液,將30%蔗糖/重水墊、上清液及PBS依次放入離心管中,100000×g,離心1 h;取混有exosome的蔗糖/重水墊,用PBS懸浮,加入到100 kD超濾離心管中,重復(fù)3次,濃縮液即為exosome,用0.22 μm的濾膜過濾除菌,放入-80℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>
取exosome 20 μL,滴于載樣銅網(wǎng)上,室溫靜置1 min,用濾紙吸干液體,滴加20 g/L磷鎢酸負(fù)染1 min,用濾紙吸干負(fù)染液,用白熾燈烤干,透射電鏡下觀察形態(tài)。
將exosome經(jīng)超聲沖擊破膜,用Western blotting方法檢測exosome中HSP70、HLA及IL-18的表達(dá)。取20 μg用SDS-PAGE凝膠電泳,將蛋白電轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜,室溫封閉1h,加入鼠抗人 HSP70、HLA、IL-18抗體,再加入辣根過氧化物酶標(biāo)記的兔抗鼠IgG抗體,進(jìn)行ECL反應(yīng)顯影,在Bio-Rad凝膠成像儀中觀察分析結(jié)果。
分離人外周血T細(xì)胞,在T細(xì)胞中加入10 μg exosome培養(yǎng)72 h,為exosome直接刺激活化的T細(xì)胞。用人外周血單個(gè)核細(xì)胞誘導(dǎo)培養(yǎng)DC[3],將成熟DC加入exosome 10 μg培養(yǎng)24 h,再將DC與T細(xì)胞按1∶10混合培養(yǎng)72 h,為exosome沖擊DC活化的T細(xì)胞。以活化T細(xì)胞為效應(yīng)細(xì)胞(E),NCI-H460細(xì)胞為靶細(xì)胞(T),設(shè)反應(yīng)孔、最大釋放孔及自然釋放孔,反應(yīng)孔含效應(yīng)細(xì)胞和靶細(xì)胞,自然釋放孔只加靶細(xì)胞,最大釋放孔加Triton X-1002 μL,按乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)試劑盒說明書用LDH 法測定效靶比分別為 25∶1、10∶1、5∶1 時(shí)活化 T細(xì)胞對NCI-H460細(xì)胞的殺傷作用,計(jì)算殺傷率。
3組細(xì)胞上清液經(jīng)差速離心法提取exosome,透射電鏡下觀察到exosome呈囊泡狀,圓球形,大小不一,直徑在30-150 nm之間,3組exosome的形態(tài)、大小無顯著差異。用Western blotting方法檢測exosome中HSP70、HLA及IL-18的表達(dá),結(jié)果3組細(xì)胞exosome均有HSP70及HLA蛋白表達(dá)。IL-18/H460組exosome有IL-18蛋白的表達(dá),而其余2組未見IL-18蛋白表達(dá),見圖1。
Figure1.HSP70,HLA and IL-18 proteins in exosomes of the 3 groups(IL-18/H460,DNA3.1/H460,and NCIH460)were detected by Western blotting.HSP70 and HLA proteins were detected in exosomes of all the 3 groups,and IL-18 protein was observed only in IL-18/H460 group.圖1 Exosome中HSP70、HLA及IL-18蛋白表達(dá)
用3組細(xì)胞exosome直接刺激T細(xì)胞,用LDH法檢測T細(xì)胞對NCI-H460細(xì)胞的殺傷作用。結(jié)果在效靶比25∶1、10∶1、5∶1 時(shí),IL-18/H460 組殺傷率為(38.45±5.42)%、(25.17±3.94)%和(11.75±3.22)%,效靶比25∶1和10∶1時(shí)高于DNA3.1/H460組(P<0.05)及NCI-H460組(P<0.05),后2組之間殺傷率無顯著差異。IL-18/H460組殺傷率隨效應(yīng)細(xì)胞比例增加而提高,效靶比25∶1時(shí)殺傷率高于10∶1(P <0.05)及5∶1時(shí)(P <0.05),見圖2。
將3組細(xì)胞exosome沖擊DC,再用DC活化T細(xì)胞,檢測其對NCI-H460細(xì)胞的殺傷作用。在效靶比25∶1、10∶1、5∶1 時(shí) IL-18/H460 組殺傷率為(89.05±4.06)%、(64.97±6.02)%和(40.16±4.98)%,均高于DNA3.1/H460組(P<0.05)及NCI-H460組(P<0.05),后2組之間無顯著差異。IL-18/H460組效靶比25∶1時(shí)殺傷作用最強(qiáng),10∶1時(shí)次之,5∶1 時(shí)作用最弱,見圖3。
Figure2.The lethal effects of exosome-activated T cells on NCI-H460 lung cancer cells(LDH method).The killing rates of IL-18/H460 group at E∶T ratio of 25∶1,10∶1 and 5∶1 were higher than those in DNA3.1/H460 and NCI-H460 groups..n=6.△P <0.05 vs IL-18/H460.E∶T =effector cell∶target cell.圖2 Exosome刺激的T細(xì)胞對NCI-H460細(xì)胞的殺傷作用
Figure3.The lethal effects of exosome-pulsed DC-activated T cells on NCI-H460 lung cancer cells(LDH method).The killing rates of IL-18/H460 group at E∶T ratio of 25∶1,10∶1 and 5∶1 were higher than those in DNA3.1/H460 and NCI-H460 groups..n=6.△P <0.05 vs IL-18/H460.圖3 Exosome沖擊DC活化的T細(xì)胞對NCI-H460細(xì)胞的殺傷作用
將exosome沖擊DC活化的T細(xì)胞殺傷作用與exosome直接刺激T細(xì)胞的殺傷作用相比較,前者在效靶比25∶1、10∶1、5∶1 時(shí)其 IL-18/H460 組殺傷率均高于后者(P<0.05),表明用IL-18基因修飾的NCI-H460細(xì)胞來源的exosome誘導(dǎo)抗腫瘤作用時(shí),exosome沖擊DC活化的T細(xì)胞殺傷作用強(qiáng)于exosome直接刺激活化的T細(xì)胞,見圖4。
Figure4.Comparison of the anti-tumor efficacy between exosome-pulsed DC-activated T cells and exosomestimulated T cells in IL-18/H460 group.The killing rates of exosome-pulsed DC-activated T cells at E∶T ratio of 25∶1,10∶1 and 5∶1 were higher than those of exosome-stimulated T cells..n=6.△P<0.05 vsexosome-DC.圖4 Exosome沖擊DC活化的T細(xì)胞與exosome直接刺激的T細(xì)胞殺傷腫瘤細(xì)胞作用比較
Exosome最初用來描述網(wǎng)織紅細(xì)胞分泌的一種膜小泡,后來發(fā)現(xiàn)B淋巴細(xì)胞、樹突狀細(xì)胞、肥大細(xì)胞、腸上皮細(xì)胞和腫瘤細(xì)胞等多種細(xì)胞可分泌exosome[4,5],它來源于細(xì)胞的多泡體,是由多泡體的泡膜與質(zhì)膜融合后釋放到胞外空間的小泡,由脂質(zhì)雙分子層膜包被,直徑為30-100 nm,呈蝶形或球形。Exosome含有豐富的蛋白質(zhì),不同細(xì)胞來源的exosome所含的蛋白質(zhì)不同,其生物學(xué)功能也有差異。腫瘤細(xì)胞來源的exosome含有MHC-Ⅰ類分子、熱休克蛋白、腫瘤特異性抗原及腫瘤共同抗原,可以作為一種抗原載體,將腫瘤抗原轉(zhuǎn)移到抗原提呈細(xì)胞,并具有交叉提呈作用[6]。殺傷性T細(xì)胞是抗腫瘤免疫治療的關(guān)鍵細(xì)胞,T細(xì)胞的活化需要有腫瘤抗原,抗原呈遞、共刺激分子等,exosome含腫瘤抗原和抗原呈遞所需物質(zhì),本身可以呈遞抗原,活化T細(xì)胞,因而是exosome腫瘤疫苗的重要來源。應(yīng)用腫瘤細(xì)胞來源的exosome構(gòu)建腫瘤疫苗,可以通過exosome沖擊DC而誘導(dǎo)活化T細(xì)胞,也可由exosome直接刺激活化T細(xì)胞,發(fā)揮抗腫瘤作用[7,8]。本研究比較了NCI-H460細(xì)胞來源的exosome經(jīng)沖擊DC后活化T細(xì)胞與直接刺激活化T細(xì)胞對肺癌細(xì)胞的殺傷作用,結(jié)果exosome直接刺激活化的T細(xì)胞顯示了對肺癌細(xì)胞的殺傷作用,但殺傷效力較exosome沖擊DC后活化的T細(xì)胞明顯減弱,表明了DC在exosome腫瘤疫苗中的關(guān)鍵地位。
目前的exosome疫苗雖然顯示了一定的抗腫瘤作用,但其效力有待于增強(qiáng)。IL-18是功能強(qiáng)大的細(xì)胞因子,可誘導(dǎo)TNF-α、GM-CSF和 IFN-γ等細(xì)胞因子的產(chǎn)生,調(diào)節(jié)T細(xì)胞、B細(xì)胞、NK細(xì)胞、巨噬細(xì)胞和DC的活性,在抗腫瘤和機(jī)體的免疫調(diào)節(jié)等方面具有重要作用[9],研究顯示IL-18基因修飾能夠增強(qiáng)DC的活性和免疫刺激能力[10]。我們研究了IL-18基因修飾的NCI-H460細(xì)胞來源exosome誘導(dǎo)的T細(xì)胞對肺癌細(xì)胞的殺傷作用,以pcDNA3.1+修飾的NCI-H460細(xì)胞與未修飾的NCI-H460細(xì)胞為對照,結(jié)果IL-18基因修飾組作用明顯強(qiáng)于對照組,而后二者之間作用無顯著差異,因而排除了基因轉(zhuǎn)染過程的干擾因素。這表明IL-18基因修飾可以增強(qiáng)肺癌細(xì)胞來源exosome誘導(dǎo)的抗腫瘤作用,為IL-18與exosome疫苗聯(lián)合用于肺癌治療提供了理論依據(jù),但其作用機(jī)制尚待進(jìn)一步闡明。
[1]Cao DY,Yang JY,Dou KF,et al.Alpha-fetoprotein and interleukin-18 gene-modified dendritic cells effectively stimulate specific type-1 CD4-and CD8-mediated T-cell response from hepatocellular carcinoma patients in vitro[J].Hum Immunol,2007,68(5):334-341.
[2]張家模,吳小候,張 堯,等.膀胱移行細(xì)胞癌來源的exosome誘導(dǎo)體外細(xì)胞毒性T細(xì)胞殺傷效應(yīng)[J].中華腫瘤雜志,2009,31(10):738-741.
[3]傅永強(qiáng),張?jiān)谠?,李旭升,?白細(xì)胞介素-18干預(yù)誘導(dǎo)的樹突狀細(xì)胞表型和活性研究[J].中國病理生理雜志,2008,24(7):1414-1417.
[4]Viaud S,Théry C,Ploix S,et al.Dendritic cell-derived exosomes for cancer immunotherapy:what's next?[J].Cancer Res,2010,70(4):1281-1285.
[5]Saunderson SC,Schuberth PC,Dunn AC,et al.Induction of exosome release in primary B cells stimulated via CD40 and the IL-4 receptor[J].J Immunol,2008,180(12):8146-8152.
[6]Clayton A,Mitchell JP,Court J,et al.Human tumorderived exosomes down-modulate NKG2D expression[J].J Immunol,2008,180(11):7249-7258.
[7]Hao S,Bai O,Li F,et al.Mature dendritic cells pulsed with exosomes stimulate efficient cytotoxic T-lymphocyte responses and antitumour immunity[J].Immunology,2007,120(1):90-102.
[8]Tan A,De La Pe?a H,Seifalian AM.The application of exosomes as a nanoscale cancer vaccine[J].Int J Nanomedicine,2010,5:889-900.
[9]Nakanishi K,Tsutsui H,Yoshimoto T.Importance of IL-18-induced super Th1 cells for the development of allergic inflammation[J].Allergol Int,2010,59(2):137-141.
[10]張?jiān)谠?,吳金?白細(xì)胞介素18基因轉(zhuǎn)染的肺癌細(xì)胞對樹突狀細(xì)胞免疫特性的影響[J].中國病理生理雜志,2007,23(4):794-798.