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      紫番薯原花青素的提取和穩(wěn)定性研究

      2012-01-03 03:09:24萍王文君
      食品工程 2012年2期
      關(guān)鍵詞:番薯花青素光度

      劉 萍王文君

      (1秦皇島市海港區(qū)農(nóng)業(yè)局,秦皇島066000) (2遵義醫(yī)學(xué)院珠海校區(qū),珠海 519041)

      ·基礎(chǔ)研究·

      紫番薯原花青素的提取和穩(wěn)定性研究

      劉 萍1*王文君2

      (1秦皇島市海港區(qū)農(nóng)業(yè)局,秦皇島066000) (2遵義醫(yī)學(xué)院珠海校區(qū),珠海 519041)

      采用乙醇提取紫番薯原花青素,運(yùn)用AB-8大孔樹脂進(jìn)行純化,洗脫液分別為體積濃度10%、30%、50%和70%的乙醇。洗脫液經(jīng)濃縮、冷凍干燥制得4種紫番薯原花青素樣品,并對(duì)每個(gè)樣品的穩(wěn)定性進(jìn)行了研究。

      紫番薯;原花青素;穩(wěn)定性

      原花青素(procyanidins,PC) 是從植物中分離得到的一類可在熱酸處理下產(chǎn)生紅色花色素的多酚類化合物,因其具有較強(qiáng)的清除自由基、抗氧化、改善心血管疾病、抗癌、抗輻射和抗病毒等生物活性,廣泛應(yīng)用于農(nóng)業(yè)和醫(yī)藥等領(lǐng)域。目前市場(chǎng)上的商品原花青素主要源于葡萄籽提取物,而葡萄籽原花青素的穩(wěn)定性比較差。因此,近幾年有許多探索從其他的植物中提取原花青素并分析穩(wěn)定性的研究報(bào)道。我們研究發(fā)現(xiàn)紫番薯中也富含原花青素,因此對(duì)紫番薯原花青素進(jìn)行了提取,并用AB-8大孔樹脂進(jìn)行了純化,同時(shí)對(duì)樣品的穩(wěn)定性進(jìn)行了研究,希望對(duì)紫番薯原花青素的開發(fā)利用提供理論依據(jù)。

      1 試劑與儀器

      紫番薯,珠海市三灶市場(chǎng);原花青素標(biāo)準(zhǔn)品,上海中藥研究所;AB-8型國產(chǎn)大孔吸附樹脂,北京慧德易科技有限責(zé)任公司;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

      UV2550型紫外可見分光光度計(jì),日本島津;CQ-200B型超聲波振蕩器,上海躍進(jìn)醫(yī)學(xué)用光學(xué)器械廠;400 g搖擺式高速中藥粉碎機(jī),溫嶺市林大機(jī)械有限公司;RE-52型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,上海亞榮生化儀器廠;Scientz-10N型冷凍干燥機(jī),寧波新藝生物科技股份有限公司。

      2 試驗(yàn)方法

      2.1 脫脂紫番薯粉的制備

      取新鮮紫番薯洗凈、切成細(xì)絲放在陰涼避風(fēng)處自然風(fēng)干,將風(fēng)干后的紫番薯絲用粉碎機(jī)粉碎,過80目篩,稱重,細(xì)粉用石油醚按料液比1 g∶1 mL的比例浸泡1 h,然后超聲波20 min,抽濾至近干,45℃烘烤24 h,備用。

      2.2 原花青素的提取

      脫脂紫番薯粉用體積濃度30%的乙醇以料液比1 g∶3 mL浸提2.5 h,超聲提取20 min,抽濾,收集濾液。將濾渣再用體積濃度30%乙醇以料液比1 g∶2 mL進(jìn)行浸提,再次超聲提取20 min,抽濾,收集濾液。將濾渣再用體積濃度30%乙醇按料液比1 g∶1 mL進(jìn)行浸提,再次超聲提取20 min,抽濾,收集濾液。將濾液合并用旋蒸儀蒸至黏稠狀,然后用AB-8大孔樹脂進(jìn)行吸附洗脫,洗脫液分別用體積濃度10%、30%、50%、70%的乙醇,把洗脫液真空濃縮至20 mL左右,冷凍干燥24 h,分別得到紫番薯原花青素樣品 S1、S2、S3、S4。

      2.3 原花青素含量測(cè)定(標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制)

      原理:鐵鹽作為催化劑的條件下,原花青素在酸性條件下加熱轉(zhuǎn)化為紅色,紅色的深淺與原花青素的含量成正比關(guān)系。該方法特征性顯著,操作方便,重現(xiàn)性好。

      試驗(yàn)方法:稱取原花青素標(biāo)準(zhǔn)品10.00 mg溶于乙醇中,定容至10 mL,吸取該溶液0.10 mL、0.25 mL、0.50 mL、1.00 mL、1.50 mL分別置于5個(gè)10 mL容量瓶中,加乙醇至刻度,搖勻。將正丁醇與鹽酸按95∶5的體積比混合后,取出6.00 mL分別置于5個(gè)10 mL具塞比色管中,再加入0.20 mL硫酸鐵銨溶液(24.1 mg/mL) 和1.00 mL原花青素標(biāo)準(zhǔn)品溶液,混勻,置沸水浴回流,加熱40 min,立即置冰水中冷卻。以V(正丁醇—鹽酸溶液)∶V(硫酸鐵銨溶液)∶V(乙醇)=6.00∶0.20∶1.00的試劑作空白參比,在549 nm處用紫外分光光度計(jì)測(cè)定其吸光度,并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。樣品同樣條件下測(cè)定吸光度。

      2.4 金屬離子對(duì)原花青素穩(wěn)定性的影響

      配制質(zhì)量分?jǐn)?shù)均為0.1%的各種金屬離子溶液(K+、Ca2+、Zn2+、Na+、Fe3+)各50mL,分別取9mL置于10 mL容量瓶中,向其中加入1 mL一定濃度的樣品溶液或標(biāo)準(zhǔn)品溶液,搖勻,立即取樣測(cè)定280 nm波長(zhǎng)處吸光度,然后密封避光放置并測(cè)定24 h和48 h后吸光度;另取9 mL水加入相同濃度的樣品溶液或標(biāo)準(zhǔn)品溶液1 mL搖勻(結(jié)果中記為原液),同法測(cè)定做對(duì)照。

      2.5 食品添加劑對(duì)原花青素穩(wěn)定性的影響

      配制0.4 mol/L的葡萄糖溶液、0.1 mol/L的食鹽溶液和質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.02%的谷氨酸鈉溶液、0.02%的檸檬酸溶液各50 mL,分別取9 mL置于10 mL容量瓶中,向其中加入1 mL一定濃度的樣品溶液或標(biāo)準(zhǔn)品溶液,搖勻,立即取樣測(cè)定280 nm波長(zhǎng)處吸光度,然后密封避光保存并測(cè)定24 h和48 h后吸光度;另取9 mL水加入1 mL相同濃度的樣品溶液或標(biāo)準(zhǔn)品溶液搖勻(結(jié)果中記為原液),同法測(cè)定做對(duì)照。

      3 結(jié)果

      3.1 紫番薯原花青素含量

      根據(jù)原花青素標(biāo)準(zhǔn)曲線得回歸方程為D(λ)=1.7418 ρ-0.0104,R2=0.999,線性關(guān)系很好,可以用于定量分析。乙醇洗脫得到的4個(gè)紫番薯樣品原花青素的含量(質(zhì)量分?jǐn)?shù)) 分別為1.6%、10.8%、8.2%、4.3%。從這里可以看出,AB-8大孔樹脂對(duì)紫番薯色素具有一定的富集能力,但效果有限。

      3.2 金屬離子對(duì)原花青素穩(wěn)定性的影響

      金屬離子對(duì)原花青素穩(wěn)定性的影響見圖1~圖5。

      圖1 金屬離子對(duì)S1穩(wěn)定性的影響

      圖2 金屬離子對(duì)S2穩(wěn)定性的影響

      圖3 金屬離子對(duì)S3穩(wěn)定性的影響

      圖4 金屬離子對(duì)S4穩(wěn)定性的影響

      圖5 金屬離子對(duì)S5穩(wěn)定性的影響

      由圖1~圖5可知,紫番薯原花青素在加入各種金屬離子后吸光度均有不同程度的變化。各樣品和標(biāo)準(zhǔn)品溶液穩(wěn)定性受Fe3+和Zn2+的影響比較大,F(xiàn)e3+的加入后有絮狀沉淀物產(chǎn)生;K+、Ca2+、Na+對(duì)其穩(wěn)定性影響較小。

      3.3 食品添加劑對(duì)原花青素穩(wěn)定性的影響

      食品添加劑對(duì)原花青素穩(wěn)定性的影響見圖6~圖10。

      由圖6~圖10可以看出,常用的食品添加劑對(duì)4個(gè)紫番薯原花青素穩(wěn)定性影響均較小。同一種添加劑放置24 h、48 h后值基本不變;各種不同的添加劑加入后初始的吸光度值也非常接近。這些均表明紫番薯原花青素對(duì)食品添加劑表現(xiàn)出良好的穩(wěn)定性。

      圖6 食品添加劑對(duì)S1穩(wěn)定性的影響

      圖7 食品添加劑對(duì)S2穩(wěn)定性的影響

      圖8 食品添加劑對(duì)S3穩(wěn)定性的影響

      圖9 食品添加劑對(duì)S4穩(wěn)定性的影響

      圖10 食品添加劑對(duì)S10穩(wěn)定性的影響

      4 結(jié) 論

      研究表明,紫番薯原花青素對(duì)食品中常用的金屬離子、添加劑等具有良好的穩(wěn)定性。AB-8大孔樹脂對(duì)紫番薯原花青素具有一定的富集能力(粗提物含量為7.442 mg/g),但效果有限。

      [1] JAME A K,GRAHAM P J.Analysis of proanthocyanidin cleavage products of following acidcatalysis in the presence of excess phloroglucinol[J].Agric Food Chem,2001,49:1 740-1 746.

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      [4] 吳娟,魏和平,許遠(yuǎn).油菜籽皮中原花青素的提取及穩(wěn)定性分析,[J].中國油脂,2010,35(3):67-69.

      [5] 姜洪芳,張衛(wèi)明,張玖.櫻桃李色素提取及穩(wěn)定性研究,[J].中國野生植物資源,2008,27(5):56-59.

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      Research on extraction and stability ofprocyanidin from purple sweet potato

      LIUPing1*WANGWen-jun2
      1(Haigangarea agriculture bureau ofQinhuangdaocity,Qinhuangdao 066000,China)1(Zunyi medical college zhuhai campus,Zhuhai 519041,China)

      Procyanidins in purple sweet potatoes extracted by ethanol were studied.And the extract was purified with AB-8 macroporous resin.The eluent concentration included 10%,30%,50%and 70%of ethanol solution.Four samples were obtained byconcentration and freeze dryingtreatment.Stabilityofeach sample was studied.

      purple sweet potatos;procyanidins;stability

      TS201.2+4

      A

      1673-6004(2012)02-0024-04

      * 劉萍,女,1974年出生,2002年畢業(yè)于河北農(nóng)業(yè)大學(xué),水產(chǎn)工程師

      2012-03-20

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