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      葛花總黃酮的含量測定及體外抗氧化作用研究

      2012-09-05 14:21:04歐陽昌漢張瑞雪葉濤吳基良
      食品研究與開發(fā) 2012年11期
      關(guān)鍵詞:葛花蘆丁清除率

      歐陽昌漢,張瑞雪,葉濤,吳基良

      (1.咸寧學(xué)院藥學(xué)院,湖北咸寧 437100;2.華中農(nóng)業(yè)大學(xué),湖北武漢 430070)

      自由基系指外層軌道含有未配對的電子、原子團或特殊狀態(tài)的分子。由于自由基可引起細胞損傷和死亡,與衰老、癡呆等某些疾病的發(fā)生有著密切關(guān)系,致使抗自由基生物學(xué)與功能食品科學(xué)的研究成為一個活躍的領(lǐng)域,尋找天然抗氧化劑和自由基清除劑已越來越引起人們的關(guān)注[1]。黃酮類化合物因具有抗氧化、抗炎、鎮(zhèn)痛、降脂作用而成為近年來的研究熱點;對富含黃酮化合物的中草藥進行篩選,將為天然抗氧化劑的開發(fā)提供參考。

      葛花為豆科植物野葛 [Pueraria Lobata(Willd.)Ohwi]的干燥花蕾,是藥食同功的保健美食,具有解酒護肝、抗腫瘤、降糖之功效,為我國民間用于解酒的傳統(tǒng)中藥,亦是目前許多解酒保健品成分之一,其主要有效成分為黃酮類化合物[2-4]。目前有關(guān)葛花中總黃酮的提取方法已有報道,但其存在提取時間長、溶劑消耗大、提取率低等缺點[5]。為此,將超聲技術(shù)用于葛花中總黃酮的提取,同時對黃酮提取物進行含量測定及體外自由基清除研究,進而為更好地開發(fā)和利用葛花中黃酮類物質(zhì)提供科學(xué)參考。

      1 材料與方法

      1.1 原料與試劑

      葛花:江西橫峰葛源綠山葛粉廠,經(jīng)我院藥用植物教研室鑒定為豆科蝶形花亞科葛屬植物野葛的干燥花蕾;蘆丁標準品:中國藥品生物制劑鑒定所,批號:0080-9504;1,1,-二苯基苦基苯阱(DPPH)、2,2′-聯(lián)氨-雙(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二胺鹽(ABTS):美國Sigma公司產(chǎn)品,其余試劑為國產(chǎn)分析純。

      1.2 主要儀器

      SB-5200超聲波清洗儀:寧波新芝生物科技股份有限公司;50-Conc紫外可見分光光度儀:美國VARIAN公司;RE-5299旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:鞏義市英峪予華儀器廠;TDL-5臺式離心機:上海安亭科學(xué)儀器廠。

      1.3 方法

      1.3.1 葛花中總黃酮提取方法

      精確稱取干燥葛花粉末10 g,置于500 mL燒杯中,加入適量濃度甲醇300 mL,超聲波輔助提取一段時間,提取液過濾。濾渣反復(fù)提取3次,合并3次濾液,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀減壓濃縮至一定體積,4 000 r/min離心15 min,吸取上清液進行脫脂、去糖、棄蛋白,即得樣品液。

      1.3.2 葛花中總黃酮提取條件研究

      采用正交設(shè)計方法,以甲醇為溶劑,選擇提取溫度、溶劑濃度、提取時間和料液比4個因素,采用L9(34)正交設(shè)計,進行四因素三水平試驗,對葛花中總黃酮提取條件進行優(yōu)化,因素與水平見表1。

      表1 正交試驗因素與水平表Table 1 Orthogonal test level-factor table

      1.3.3 標準曲線制備

      準確稱取5.25 mg蘆丁標準品,用90%乙醇配制成濃度為0.021 mg/mL蘆丁標準液。分別移取蘆丁標準液 0、2.0、4.0、6.0、8.0、10.0 mL 于 10 mL 容量瓶中,90%乙醇定容至刻度。在200 nm~400 nm波長段進行紫外掃描,于最大吸收波長265 nm紫外光下測定吸光度,繪制標準曲線。

      1.3.4 樣品總黃酮含量測定

      吸取超聲提取后的葛花上清液1 mL,離心,取上清液0.1 mL,用90%的乙醇稀釋50倍。以90%乙醇作為空白對照,在265 nm波長紫外光下,用1 cm石英比色皿測定吸光度,然后由標準曲線計算出待測葛花樣品中總黃酮含量。

      1.3.5 總抗氧化能力測定

      參照文獻方法[6],取已稀釋過的ABTS·+儲藏液1.2 mL,加入不同濃度葛花總黃酮溶液0.1 mL,反應(yīng)時間為6 min,在734 nm處測定其吸光度。

      清除率SA/%=(Ao-As)/As×100。

      1.3.6 DDPH清除率測定

      取DPPH溶液1.5 mL,加入不同濃度的葛花總黃酮溶液1.5mL,搖勻,在25℃避光放置30min,以1.5mL 90%乙醇與1.5 mL水混合液調(diào)零,在最大吸光波長517 nm處測定其吸光度。用1.5 mL無水乙醇代替樣品液,得到吸光度為A;用1.5 mL無水乙醇代替DPPH溶液,得到吸光度為Aj。清除率SA/%=[A0-(As-Aj)]/A0×100。

      1.3.7 超氧陰離子清除率測定

      取 50 mmol/L Tris-HCl緩沖液(pH=8.2)2.5 mL,加入不同濃度葛花總黃酮溶液0.4 mL,25℃水浴保溫10 min,加入5 mmol/L鄰苯三酚溶液0.1 mL,混勻后立即倒入比色杯,于特征波長320 nm處每隔30 s測定鄰苯三酚溶液3 min內(nèi)吸光度變化。以吸光度對時間進行線性回歸處理,測定鄰苯三酚自氧化速率。清除率 SA/%=(As-A0)/A0×100。

      1.3.8 NO清除率測定

      在反應(yīng)體系中加入10 mmol/L硝普鈉0.5 mL,PBS緩沖液(pH=7.4)0.5 mL,不同濃度的樣品溶液0.5 mL,于25℃環(huán)境中放置反應(yīng)180 min,然后取反應(yīng)液1 mL,依次加入Griess反應(yīng)試劑,混勻后在25℃反應(yīng)30 min,以0.5 mL無水乙醇與1.5 mL水混合調(diào)零,在540 nm下測量吸光度。用1.5 mL無水乙醇代替樣品液,得到吸光度為A0;用1.5 mL無水乙醇代替硝普鈉溶液,得到吸光度為Aj。清除率SA/%=[A0-(As-Aj)]/Ao×100。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 標準曲線的繪制及樣品含量測定

      以吸光度(y)為縱坐標,蘆丁質(zhì)量濃度(x)為橫坐標繪制標準曲線,見圖1。

      圖1 蘆丁的標準曲線Fig.1 Standard curve of the absorption capacity of rutin

      進行統(tǒng)計處理,得回歸方程:y=30.812x+0.001 7,R2=0.999 9,說明蘆丁在所取的濃度范圍內(nèi)其濃度和吸光度呈良好的線性關(guān)系。

      2.2 超聲提取正交試驗結(jié)果與分析

      從直觀分析表看出,在所選取的四個因素內(nèi),極差大小順序是D>C>B>A;D的極差最大,反映為當D因素水平變動時,對提取產(chǎn)率的影響最大,A因素對提取產(chǎn)率的影響最小。分析均值k可以得到各因素的較優(yōu)水平是:A2,B2,C3,D3:即使用濃度為 50%甲醇溶液,料液比為1∶30(g/mL),在70℃溫度下,超聲2.0 h為葛花提取的最佳方案,見表2。

      表2 L9(34)正交試驗設(shè)計與極差分析結(jié)果Table 2L9(34)orthogonal experiment design and result analysis

      以因素A作為誤差項,方差分析結(jié)果表明,因素C和因素D對提取產(chǎn)率的影響較為顯著(P<0.05),而因素A和因素B影響不明顯(P>0.05),這與極差分析得出的結(jié)果相一致,提示提取時間和提取溫度對葛花中黃酮提取影響較為顯著。在上述最佳提取條件下,葛花總黃酮的平均提取產(chǎn)率為17.48%。

      2.3 葛花總黃酮的總抗氧化能力

      ABTS·+經(jīng)活性氧氧化后生成穩(wěn)定的藍綠色水溶性ABTS·+自由基,當向其中加入抗氧化物質(zhì)時,則該物質(zhì)會與ABTS·+發(fā)生反應(yīng)而使反應(yīng)體系褪色,在ABTS·+自由基的最大吸光波長下檢測吸光度的變化,即可換算出被測物質(zhì)總的抗氧化能力。當吸光值越低時,表示樣品對ABTS·+的清除能力越強,見圖2。

      圖2 葛花總黃酮的總抗氧化能力Fig.2 The total antioxidant capacity of total flavonoids from Puerariae Flos

      如圖2可見,葛花總黃酮的總抗氧化能力隨著黃酮質(zhì)量濃度的增加,抗氧化能力逐漸增強,表明總黃酮抗氧化能力與黃酮質(zhì)量濃度有明顯的量效關(guān)系。在實驗條件下,當葛花總黃酮質(zhì)量濃度為600 μg/mL時,清除率可達83.26%。

      2.4 葛花總黃酮清除DPPH作用

      DPPH在有機溶劑中是一種較為穩(wěn)定的自由基。當抗自由基活性物質(zhì)與其作用時,通過與其孤對電子配對,致使其吸收峰消失或減弱。因此通過測定吸收減弱的程度,可評價自由基清除劑的活性,見圖3。

      圖3 葛花總黃酮對DPPH的清除作用Fig.3 DPPH radical scavenging activity of total flavonoids from Puerariae Flos

      從圖3可以看出,葛花總黃酮與VC對DPPH都有明顯的清除作用,并且隨著質(zhì)量濃度的增加,清除能力增強,表明葛花總黃酮與VC對DPPH的清除能力與濃度有明顯的量效關(guān)系。在實驗條件下,當葛花總黃酮質(zhì)量濃度為400 μg/mL時,DPPH的清除率可達71.62%,提示葛花總黃酮對DPPH自由基具有較強清除作用。

      2.5 葛花總黃酮清除超氧陰離子作用

      在弱堿性條件下,鄰苯三酚自身氧化分解產(chǎn)生O2-·,隨著反應(yīng)持續(xù)進行,O2-·在體系中不斷積累,導(dǎo)致反應(yīng)液在320 nm處的吸光度隨時間而線性增大,因此,測定吸光度隨時間的變化率,并與空白液對比可得到被測物抑制O2-·積累的作用能力,見圖4。

      圖4 葛花總黃酮對O2-·的清除作用Fig.4 Superoxide anion radical scavenging activity of total flavonoids from Puerariae Flos

      從圖4可以看出,葛花總黃酮對鄰苯三酚自氧化產(chǎn)生的O2-·具有一定的清除作用,且隨著黃酮質(zhì)量濃度的增加其清除率逐漸上升。在實驗條件下,當葛花總黃酮質(zhì)量濃度為1 200 μg/mL時,O2-·的最大清除清除率可達37.97%,提示葛花總黃酮對O2-·具有一定的清除作用。

      2.6 葛花總黃酮清除NO作用

      葛花總黃酮清除NO作用,見圖5。

      圖5 葛花總黃酮對NO自由基的清除作用Fig.5 Nitric oxide radical scavenging activity of total flavonoids from Puerariae Flos

      從圖5可以看出,葛花總黃酮對NO自由基具有一定的清除作用,并且隨著黃酮質(zhì)量濃度的增加其清除率逐漸上升。在實驗條件下,當葛花總黃酮質(zhì)量濃度為1200μg/mL時,NO自由基的清除率可達56.24%,提示葛花總黃酮對NO自由基具有清除作用。

      3 結(jié)論

      1)超聲輔助提取葛花中黃酮的最佳工藝條件為:50%甲醇溶液,料液比為 1∶30(g/mL),在 70℃溫度下,超聲2.0 h,葛花總黃酮的提取率為17.48%。

      2)葛花總黃酮對DPPH、O2-·和NO自由基均具有清除作用,而且與黃酮的濃度成正相關(guān)性。當濃度達600 μg/mL時,總抗氧化能力可達83.26%;當黃酮濃度為400 μg/mL時,DPPH清除率可達71.62%,提示葛花總黃酮在人類保健事業(yè)上有潛在的利用價值,也為其進一步的研究和開發(fā)利用提供理論參考。

      [1]Sies H.Polyphenols and health:update and perspectives[J].Arch Biochem Biophys,2010,501(1):2-5

      [2]尹俊亭,仲英,孫敬勇,等.葛花的研究進展[J].中草藥,2005,36(12):1905-1906

      [3]Shin J E,Bae E A,Lee Y C,et al.Estrogenic effect of main components kakkalide and tectoridin of Puerariae Flos and their metabolites[J].Biol Pharm Bull,2006,29(6):1202-1206

      [4]Lee M K,Cho S Y,Jang J Y,et al.Effects of puerariae flos and puerariae radix extracts on antioxidant enzymes in ethanol-treated rats[J].Am J Chin Med,2001,29(2):343-354

      [5]張淑萍,張尊聽.野葛花異黃酮化學(xué)成分研究[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā),2005,17(5):595-597

      [6]Petacci F,Freitas S S,Brunetti IL,et al.Inhibition of peroxidase activity and scavenging of reactive oxygen species by astilbin isolated from Dimorphandra mollis(Fabaceae,Caesalpinioideae)[J].Biol Res,2010,43(1):63-74

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