王李寶,沈 輝,凌 云,黎 慧,萬夕和,鐘 非,張朝暉
(江蘇省海洋水產研究所,江蘇南通 226007)
沉積物是各種海洋污染物的源和匯,隨著海洋污染的加劇,沉積物中的有機質、氮、磷、重金屬、硫化物等的含量逐漸增加,不但危害底棲生物的生存環(huán)境和水產品質量,而且容易造成水體的二次污染,這種情況在海水養(yǎng)殖池塘里表現得尤為突出[1]。因此,去除沉積環(huán)境中的污染物,或對受污染的沉積環(huán)境進行生物修復,是維持海水養(yǎng)殖健康發(fā)展的有效手段。
迄今為止,已報道的自然界中有關氧化硫化物的微生物主要有絲狀硫細菌、光合硫細菌和無色硫細菌[2],其中脫硫桿菌屬Thiobacillus的8種桿菌能在厭氧條件下,利用硝酸鹽為電子受體同步去除硫化物[3]。由于以上脫硫微生物作為自養(yǎng)菌耐有機負荷的能力相對均較弱,且同步脫氮脫硫理論目前絕大部分是應用在工業(yè)領域。本研究從異養(yǎng)硝化細菌中分離得到一株脫硫細菌NG6-3,并從形態(tài)學、生理生化及分子生物學方面對該菌進行了初步研究,為今后利用該菌株對沉積物環(huán)境中硫化物進行生物降解奠定一定的基礎。
1.1.1 沉積物樣品
啟東呂四鎮(zhèn)某海水養(yǎng)殖池塘,多年蝦蟹混養(yǎng)池,離池底液面5~10 cm的暗黑色泥樣。
1.1.2 分離和篩選培養(yǎng)基
1.1.2.1 分離培養(yǎng)基
采用普通的2116E培養(yǎng)基。
1.1.2.2 篩選培養(yǎng)基
(NH4)2SO40.5 g,蔗糖 5.00 g ,牛肉膏 1.00 g,Na2S 飽和液 1.5 mL,1 000 mL 陳海水,pH 7.6~7.8。
1.1.3 分離和篩選步驟
1.1.3.1 異養(yǎng)硝化細菌的分離
按彭光浩等[4]方法,采用稀釋平板法分離得到菌株,并在平板上用格里斯(Griess)試劑直接點滴判定硝化活性,選取硝化活性較強者在分離培養(yǎng)基平板上劃線純化,作為脫硫細菌篩選的供試菌株。得純菌113株。
1.1.3.2 脫硫細菌的篩選
將上述純133株菌株分別接至2116E培養(yǎng)基(不含瓊脂)中,37℃培養(yǎng)24 h,再按2%(v/v)的接種量轉接至篩選培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng),適時測定培養(yǎng)基中硫化物含量,以篩選出具有硫化物降解能力的菌株。在113株菌株中篩選得到一株具有較強硫化物降解能力的菌株,編號NG6-3,用于后續(xù)研究。
1.2.1 形態(tài)學觀察
將菌株NG6-3在分離培養(yǎng)基上,觀察菌落形態(tài),在光學顯微鏡下觀察革蘭氏染色情況、鞭毛形態(tài)及芽孢形態(tài)[5]。
1.2.2 生理生化檢查
取純培養(yǎng)的菌株NG6-3,分別接種于細菌生化特性鑒定用培養(yǎng)基中,按常規(guī)進行氧化酶、接觸酶、糖(醇及苷)類代謝、H2S、吲哚、MR(V-P)試驗、硝酸鹽還原、枸櫞酸鹽利用等,參照《常見細菌系統(tǒng)鑒定手冊》[5]進行。并結合API-32E細菌鑒定系統(tǒng)的生化反應結果,對NG6-3的種屬進行初步判定[6]。
1.2.3 16S rRNA基因序列測定與系統(tǒng)發(fā)育學分析
1.2.3.1 菌株NG6-3基因組DNA的提取
取對數培養(yǎng)期的菌懸液1.5 mL,采用酚-氯仿法提取細菌DNA[7-8]。加100 μL TE溶液溶解。
1.2.3.2 菌株NG6-3部分序列分析
以提取的DNA為模板,采用細菌通用引物(正向27F:5’-GAGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3’,反向1495R:5-CTACGGCTACCTTGTTACGA-3’,)進行 16S rRNA 基因擴增。反應條件:96 ℃預變性 5 min;95 ℃變性30 s;52℃退火l min 30 s;72℃延伸l min 30s;30個循環(huán),延伸10 min。PCR產物經檢測純化后,由上海生物工程技術公司進行基因測序。
對供試菌株NG6-3基因序列通過NCBI(NCBI菌株提交號EU081880.1)的Blast檢索系統(tǒng)進行序列同源性分析,并用MEGA4.1軟件與從Genbank數據庫中獲得的序列相似性較高的菌株的序列進行多序列匹配排列(Multiple Alignments),采用鄰接法(neighbor joining method)獲得分支系統(tǒng)樹,并通過Bootstrap法(1 000次重復)檢驗。
1.2.4 菌種分類位置的確定
根據供試菌株形態(tài)、培養(yǎng)及理化特性測定的結果,主要依據《Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology.9thed》[9]、《Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology》[10]及相關資料,進行種屬分類位置判定。
設待測菌株、陽性對照菌和陰性對照實驗組,每組設2個平行,每個平行隨機選取暫養(yǎng)7 d的健康凡納濱對蝦50尾;每尾注射待測菌株、陽性對照菌和陰性對照50 μL,每天記錄其死亡情況。陽性對照為鰻弧菌,陰性對照為不接種處理。每株菌用107cfu/mL、106cfu/mL、105cfu/mL和104cfu/mL 4個濃度進行肌肉注射。
取50 mL以硫化鈉作為惟一硫源的液體培養(yǎng)基于250 mL的錐形瓶中,接種1 mL處于對數生長期的供試菌液,以沒有接種菌液的培養(yǎng)基作為空白對照。調節(jié)初始pH為7.8,在30℃,靜置培養(yǎng),定期測定菌體生長量及培養(yǎng)基中硫化物質量濃度。硫化物的測定采用碘量法[11]。
2.1.1 供試菌株的分離和形態(tài)學觀察
從上述泥樣分離純化得到一株具有氨氧化能力和脫硫能力的菌株,命名為NG6-3。菌株NG6-3在2116E培養(yǎng)基上培養(yǎng)48 h后形成直徑為1.5 mm、乳白色、邊緣整齊的細小菌落,圓形,表面濕潤,光滑,呈蠟狀(圖1)。在1 000倍光學顯微鏡下觀察,菌株NG6-3革蘭氏陰性,細胞為橢圓形,無芽孢,細胞大小為 0.5~1.0 μm×1.0~2.0 μm(圖 2)。
進一步對菌株NG6-3做磷酸鎢負染,透射電鏡下觀察呈短桿狀,無鞭毛(圖3)。
圖1 NG6-3的菌落形態(tài)Fig.1 The colony of strain NG6-3
圖2 NG6-3的顯微形態(tài)Fig.2 The morphology of strain NG6-3
2.1.2 理化實驗結果
供試菌株NG6-3在法國梅里埃公司API-32E系統(tǒng)生化反應結果見表,相應的軟件進行供試菌株的所屬分析表明與弧菌屬的相似性較高(98%)。其中鳥氨酸脫羧酶、賴氨酸脫羧酶、L-阿拉伯糖醇、酚紅、吲哚產生、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖反應呈陽性,主要的生化反應結果見表1。
2.1.3 16S rRNA基因序列和系統(tǒng)發(fā)育學分析
利用細菌通用引物,對菌株的16S rDNA序列進行擴增并測序,得到序列長度為957 bp(GenBank登錄號為EU081880)。將序列在NCBI數據庫中進行BLAST分析,該菌株與弧菌屬中部分菌株(CP001805.1)的相似性為99%,其在系統(tǒng)分類中位置如圖4所示。有關弧菌屬的細菌能夠在海水環(huán)境中同步去除硫化物和銨態(tài)氮的研究在國內外還未見報道。
圖3 菌株NG6-3的電鏡照片Fig.3 Electronic micrograph of the isolated strain NG6-3
圖4 根據16S rRNA序列構建的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.4 Phylogenetic tree based on 16S rRNA sequence
表1 菌株NG6-3的API32E生理生化實驗結果Tab.1 Bio-chemical characteristics of strain NG6-3 by API32E test
注射待測菌,生理鹽水和陽性對照后,每天記錄死亡數,計算其累積死亡率,用SPSS17.0軟件對試驗數據進行統(tǒng)計分析,結果見表2。
表2 NG6-3安全性試驗中各組凡納濱對蝦的累積死亡率(%)Tab.2 The cumulative mortality of Litopenaeus vannamei in safety test(%)
NG6-3 的 107cfu/mL、106cfu/mL、105cfu/mL 和 104cfu/mL注射組與生理鹽水注射組在觀察的兩周時間內均無死亡現象;而陽性對照鰻弧菌的107cfu/mL和106cfu/mL注射組均引起對蝦大量死亡,顯著高于其他注射組(P<0.05)。由此可知,NG6-3 對凡納濱對蝦無毒害作用。
接種有供試菌NG6-3的培養(yǎng)基中硫化物含量第2天就為對照組的44.3%,第5天開始,在培養(yǎng)基中幾乎測不到硫化物的存在,隨著硫化物含量的降低菌株生長量逐漸增大(圖5)。
圖5 菌株NG6-3的硫化物出去除效果Fig.5 The removal effect of sulfide based on strain NG6-3
目前報道的具有硫化物氧化能力的微生物有蝕陰溝硫桿菌Thiobacillus concretivorus[12]、酒色著色菌Chromatium vinosum[13]、氧化亞鐵硫桿菌 Thiobacillus ferrooxidans[13]、氧化硫硫桿菌 Thiobacillus thiooxidans[15]、排硫桿菌 Thiobacillus thioparus[16]、鏈霉菌 Streptomyces sp.strainSH91[17]和弓形菌 Arcobacter sp.[18]等?;【诤K蟹植紡V泛,是海水環(huán)境中的常見細菌,部分弧菌在一定條件下可導致海水養(yǎng)殖對象致病[19]?;【诤Kh(huán)境中長期存在,對環(huán)境中的各種營養(yǎng)物質產生了依賴作用,可以利用環(huán)境中的不同物質作為營養(yǎng)而生存。弧菌屬Vibrio的哈氏弧菌Vibrio harveyi、費氏弧菌Vibrio fisher早期曾經均被作為發(fā)光細菌用于在水環(huán)境污染物的檢測,后并被證實多種弧菌均為非致病菌[20]。本研究中分離得到一株既能利用Na2S,又能進行氨氧化作用的細菌,并結合了初步的安全性試驗,排除了其潛在的致病性。對擴大海水養(yǎng)殖環(huán)境改良菌的篩選范圍,提供了一個大膽的思路。
早在上世紀,BISOGNI等[21]利用富集培養(yǎng)的脫氮硫桿菌以硫代硫酸鹽和硫化物為電子供體進行了小試的自養(yǎng)反硝化研究,表明脫氮硫桿菌是典型的能夠同時利用硫化物和硝酸鹽的細菌。同步去除氨氮和硫化物的研究最早集中在制藥廢水、食品發(fā)酵廢水、造紙廢水等工業(yè)廢水的處理中,將其方法借用到水產養(yǎng)殖環(huán)境修復應用中來,也不失為一種捷徑。本研究就是基于此理論基礎,先分離出一株具有較強能力的異養(yǎng)型氨氧化細菌,在此基礎上在分離出一株能利用Na2S的細菌,以期在同一環(huán)境中實現對氨氮和硫化物的同步去除作用。
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