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      快速測定紅曲中γ-氨基丁酸含量的薄層色譜-比色法研究

      2012-11-21 05:44:42
      關(guān)鍵詞:展開劑比色法氨基丁酸

      李 利

      (長江大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,湖北 荊州 434025)

      陳 莎

      (長江大學(xué)圖書館,湖北 荊州 434025)

      趙 穎,陳福生

      (華中農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,湖北 武漢 430070)

      快速測定紅曲中γ-氨基丁酸含量的薄層色譜-比色法研究

      李 利

      (長江大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,湖北 荊州 434025)

      陳 莎

      (長江大學(xué)圖書館,湖北 荊州 434025)

      趙 穎,陳福生

      (華中農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,湖北 武漢 430070)

      通過對紅曲中γ-氨基丁酸(GABA)的提取方法、薄層色譜(TLC)展開劑及其顯色斑洗脫液的比色法測定波長及范圍的研究,建立了一種簡便、快速測定紅曲中GABA含量的方法。結(jié)果表明,紅曲中GABA最佳提取方法為水提法,TLC分離的最佳展開劑為95%乙醇︰25%氨水=4︰1,GABA顯色斑洗脫液的最大吸收波長為512nm,在2~10μg范圍內(nèi)GABA的含量同洗脫液光密度的線性關(guān)系良好(R2=0.9983)。此方法對紅曲樣品中GABA的測定結(jié)果與高效液相色譜法一致性好,回收率為91.00%~96.33%,適合于大批量菌株篩選和發(fā)酵條件優(yōu)化實驗中GABA含量的定量分析。

      紅曲;γ-氨基丁酸;薄層色譜;分光光度法

      紅曲亦名丹曲,是以大米為原料,經(jīng)紅曲菌(Monascusspp.)發(fā)酵而成的米曲。紅曲在我國的應(yīng)用至今已有一千多年的歷史,它廣泛用于釀酒、食品著色、發(fā)酵及中藥等方面[1]。

      γ-氨基丁酸(GABA)被認(rèn)為是紅曲中降壓的主要成分[2-4]。研究證明,GABA是哺乳動物中樞神經(jīng)系統(tǒng)的抑制性神經(jīng)遞質(zhì),是一種生理活性物質(zhì),能夠降低血壓、促使精神安定、促進(jìn)腦部血流、增進(jìn)腦活力、改善腦機(jī)能、增加生長激素分泌,以及改善更年期綜合癥等[3,5-6]。

      由于GABA對于電化學(xué)和紫外、可見光等不靈敏,因此,對其進(jìn)行直接檢測存在一定困難。目前,國內(nèi)外報道的GABA檢測方法有高效液相色譜法[5,7]、毛細(xì)管電泳法[8]、放射受體法[9]、酶法[10]、紙層析法[11]等,但這些方法大多價格昂貴,多應(yīng)用于醫(yī)學(xué)領(lǐng)域。本研究針對紅曲中的GABA含量的測定,建立了一種簡便、低廉、快速測定食品中GABA含量的TLC-比色法。

      1 材料與方法

      1.1 材料、儀器與試劑

      紅曲米為自制,具體方法參照文獻(xiàn)[12]。將制備好的紅曲米在45℃下烘干至恒重,粉碎過40目篩備用。

      展開劑1:V(正丁醇)︰V(冰醋酸)︰V(水)=4︰1︰1;展開劑2:V(正丁醇)︰V(冰醋酸)︰V(水)=4︰1︰3;展開劑3:V(95%乙醇)︰V(氨水)=9︰1;展開劑4:V(95%乙醇)︰V(25%氨水)=4︰1。

      顯色劑為0.2%茚三酮乙醇溶液。洗脫劑采用75%乙醇︰30g/L CuSO4溶液=15︰1。

      主要儀器有YUKO-TF薄層涂敷器、島津UV-1700型紫外可見光譜儀和島津SPD 10AVP型高效液相色譜儀等。

      1.2 方法

      1.2.1 提取方法的比較試驗

      根據(jù)馬莉鋒等[5]報道的紅曲中GABA提取方法,參考國內(nèi)關(guān)于紅芪、米胚芽等GABA的提取方法[11,13-14],設(shè)計以下2種提取方案。

      (1)水提取法 準(zhǔn)確稱取紅曲粉2.00g置于50ml離心管中,加15ml蒸餾水,混勻,30℃下150r/min搖床振搖過夜,5000r/min離心,取上清用20ml氯仿分2次萃取,合并水層,40℃水浴濃縮至干,加2ml蒸餾水溶解備用。

      (2)乙醇提取法 準(zhǔn)確稱取紅曲粉2.00g置于50ml離心管中,加15ml 60%乙醇,混勻,30℃下150r/min搖床振搖過夜,5000r/min離心,取上清40℃水浴濃縮至干,加2ml蒸餾水溶解備用。

      1.2.2 薄層色譜分離時展開劑的選擇試驗

      硅膠H與0.7%的羧甲基纖維素鈉按1︰3(W︰V)的比例調(diào)成糊狀,用涂敷器鋪成0.5mm厚的層析板(10cm×13cm),自然干燥后于105℃活化30min,放于干燥器中待用。

      將GABA標(biāo)準(zhǔn)溶液和樣品溶液以點狀或線狀點樣于硅膠H層析板,分別使用上述4種展開劑展開,展距10cm。隨后置層析板于通風(fēng)櫥中吹干,然后以0.2%茚三酮乙醇溶液噴霧,90℃顯色10min。其中選用含氨水的展開劑3和4時,在通風(fēng)櫥中吹干后需要進(jìn)一步于90℃烘箱保溫30min以揮盡氨氣,避免層析板上殘余的氨與茚三酮發(fā)生顯色反應(yīng)后形成紅色的背景干擾色。

      1.2.3 比色分析時波長的選擇試驗

      將GABA標(biāo)準(zhǔn)溶液和樣品溶液以線狀點樣于層析板,按1.2.2的方法用V(95%乙醇)︰V(25%氨水)=4︰1為展開劑展開并顯色,用薄塑料片刮下顯色帶處的硅膠,收集后置于10ml離心管中,加1.6ml洗脫液進(jìn)行洗脫,5000r/min離心10min,上清用200μl微量比色皿(光程L=1cm)在480~600nm進(jìn)行掃描,測定吸收曲線,根據(jù)最大吸收峰的位置確定測定波長。

      1.2.4 測定范圍的確定

      取5~70μl 0.2μg/μl的GABA標(biāo)準(zhǔn)品溶液,每10μl在硅膠H層析板上點成1cm長的線狀點樣帶,按1.2.3的方法展開、顯色并洗脫,測定顯色帶洗脫上清液的光密度D512nm,得到GABA含量與光密度D512nm之間的關(guān)系,根據(jù)線性范圍確定方法的測定范圍。

      1.2.5 回收率試驗

      準(zhǔn)確稱取2.00g紅曲粉置于50ml離心管中,一組加入GABA標(biāo)準(zhǔn)品600μg (加標(biāo)量300μg/g),另一組不加GABA標(biāo)準(zhǔn)品,每組設(shè)置3個平行,按1.2.1的水提法進(jìn)行提取,提取液按1.2.3的方法展開、顯色、洗脫并測定洗脫上清液的光密度D512nm,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算GABA含量。依據(jù)加標(biāo)量、加標(biāo)準(zhǔn)品和未加標(biāo)準(zhǔn)品的測定結(jié)果,計算方法的回收率。

      1.2.6 精確度試驗

      選取2個GABA含量不同的紅曲樣品,分別采用TLC-比色法和HPLC法測定其GABA含量,通過比較TLC-比色法與反相高效液相色譜法的測定結(jié)果,計算TLC-比色法的精確度。

      GABA的反相高效液相色譜測定參考文獻(xiàn)[7]。樣品提取液用0.1mol/l碳酸鉀緩沖液稀釋適當(dāng)倍數(shù),0.22μm微孔濾膜過濾。每1ml過濾后的樣品稀釋液加入500μl OPA衍生液進(jìn)行衍生。色譜條件: 色譜柱為Kromasil C18(5μm,250.0mm× 4.6mm) ; 流動相為磷酸鉀緩沖液( 0.1mol/l,pH6.0)∶甲醇∶乙腈體積比為6∶3∶1; 檢測器為熒光檢測器,熒光激發(fā)波長Ex = 340nm,發(fā)射波長Em = 455nm; 流速0.6ml/min;進(jìn)樣量20μl。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 提取方法的選擇

      采用醇提法和水提法分別對紅曲中GABA進(jìn)行提取,結(jié)果顯示,乙醇提取液中紅色色素含量較高,呈深紅色(表1)。由于薄層色譜分析時,GABA等氨基酸用茚三酮溶液噴霧顯色后亦呈紅色,故隨展開劑展開的紅色色素對GABA的顯色斑有較嚴(yán)重地干擾。相比之下,水提法色素干擾較少,TLC分離時氨基酸的顯色斑清晰,故在后續(xù)實驗中選用水提法提取紅曲中的GABA。

      表1 2種提取方法比較

      2.2 展開劑的選擇

      關(guān)于層析法分離分析氨基酸,不同文獻(xiàn)使用不同的展開劑和配比。張暉等[11]用紙層析分析米胚芽中GABA含量時,比較了幾種展開劑配方,發(fā)現(xiàn)展開劑V(正丁醇)︰V(冰醋酸)︰V(水)=4︰1︰3能夠很好地將米胚芽提取物中的GABA同其他氨基酸分開。本研究中發(fā)現(xiàn)不同配比的正丁醇-冰醋酸-水展開劑對紅曲提取液中氨基酸的分離效果很差,展開后的氨基酸顯色斑連成一片,GABA無法同其他氨基酸分開,可能是紅曲中氨基酸組成和含量與米胚芽中存在較大差異所致。因此,進(jìn)一步研究了不同配比的乙醇-氨水展開劑的分離效果,發(fā)現(xiàn)展開劑V(95%乙醇)︰V(25%氨水)=4︰1能很好地將提取液中GABA與其它氨基酸分開。故在后續(xù)實驗中選用展開劑V(95%乙醇)︰V(25%氨水)=4︰1。

      2.3 測定波長的選擇

      圖1 GABA顯色斑洗脫液吸收曲線

      將在硅膠H層析板上收集的GABA顯色帶采用洗脫液進(jìn)行洗脫后,上清在480~600nm進(jìn)行掃描,發(fā)現(xiàn)GABA顯色帶洗脫液在512nm處有最大吸收峰(圖1),因此,后續(xù)實驗中GABA洗脫液的光密度均在512nm處測定。

      圖2 GABA含量與洗脫液光密度D512nm的關(guān)系

      2.4 測定范圍的確定

      取1、2、4、6、8、10、12、14μg GABA標(biāo)準(zhǔn)品點樣于硅膠H層析板,展開后顯色并測定顯色帶洗脫上清液的光密度D512nm,得到GABA含量與光密度D512nm之間的關(guān)系(圖2)。由圖2可知,當(dāng)點樣量在10μg內(nèi)時,D512nm與GABA的含量呈線性關(guān)系,其中在2~10μg范圍內(nèi),GABA的含量與D512nm之間線性關(guān)系良好,以D512nm(Y)對GABA質(zhì)量(X)進(jìn)行回歸,回歸方程為Y=0.0439X+0.1219,R2= 0.9983。

      2.5 方法的回收率

      選取2個GABA含量不同的紅曲樣品,按1.2.5的方法進(jìn)行加標(biāo)回收試驗,結(jié)果見表2。由表2可知,該方法的回收率在91.00%~96.33%之間,平均值為93.50%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為2.03%。

      2.6 方法的精確度

      選取2個GABA含量不同的紅曲樣品,分別采用TLC-比色法和HPLC法測定其GABA含量,結(jié)果發(fā)現(xiàn)2種方法測定結(jié)果一致性較好,TLC-比色法的測定值約為HPLC測定值的92.45%(表3),可見TLC-比色法有較好的精確度,可用于紅曲中GABA的定量分析。

      3 討論與小結(jié)

      GABA是一種具有生理活性的氨基酸。近年來,GABA在保健食品中的應(yīng)用研究逐漸興起,選育高產(chǎn)GABA的微生物及其發(fā)酵條件的優(yōu)化是其重要研究方向之一[2,7,15-17]。氨基酸自動分析儀、高效液相色譜儀等現(xiàn)代分析儀器可以快速準(zhǔn)確地測定GABA的含量,但由于菌種選育和發(fā)酵條件優(yōu)化的研究中需要測定的樣品多、工作量大,而且容易受研究經(jīng)費、設(shè)備條件等因素限制,所以此類方法難以在一般的實驗室普及。因此,建立一種簡便、快速準(zhǔn)確、能大批量測定樣品中GABA的方法意義重大。

      紅曲菌固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)物紅曲的成分比較復(fù)雜,色素含量高,氨基酸種類也較多,GABA的提取和分析難度較大。本研究采用水浸提法提取紅曲中的GABA,能有效避免醇溶性紅曲色素的干擾,再采用氯仿萃取法除去部分水溶性色素,最終的提取液色素含量少,TLC分離時氨基酸的顯色斑清晰。為了簡便、快速地測定紅曲提取液中GABA含量,本研究將TLC和分光光度法相結(jié)合,先采用TLC分離樣品中的GABA,經(jīng)茚三酮顯色得到穩(wěn)定的紅色色斑,這樣一方面可以直接根據(jù)顯色斑的大小和顏色深淺進(jìn)行定性和半定量分析,另一方面可收集GABA顯色斑進(jìn)行洗脫,通過比色法測定洗脫液的光密度進(jìn)行定量分析。

      表2 TlC-比色法測定GABA的回收率

      表3 TLC-比色法與HPLC的測定結(jié)果比較

      本研究結(jié)果表明,采用TLC-比色法定量測定GABA含量時,最佳展開劑為95%乙醇︰25%氨水=4︰1,測定波長為512nm,線性范圍為2~10μg,方法的回收率在91.00%~96.33%之間,其測定結(jié)果與HPLC測定結(jié)果相比精確度達(dá)92.45%。該方法適合于大批量菌株篩選和發(fā)酵條件優(yōu)化實驗中GABA含量的定量分析。

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      2012-11-22

      李 利(1983-),湖北浠水人,博士,講師,主要從事微生物學(xué)的教學(xué)與研究。

      10.3969/j.issn.1673-1409(S).2012.12.008

      TS201.2

      A

      1673-1409(2012)12-S023-04

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