楊強(qiáng),李新華,林子木
1(沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,遼寧 沈陽,110866)2(遼寧省糧食科學(xué)研究所,遼寧 沈陽,110032)
銀杏是世界上十分珍貴和古老的樹種之一,有“活化石”之美稱。我國園藝學(xué)家們也常常把銀杏與牡丹、蘭花相提并論,譽(yù)為"園林三寶"。銀杏果是銀杏樹的種子,因其中種皮為白色的硬殼,故俗稱白果[1]。銀杏果中含有豐富的營養(yǎng)成分和特異的化學(xué)物質(zhì),多糖就是銀杏果中一種重要的活性成分。近年來研究發(fā)現(xiàn),多糖具有免疫調(diào)節(jié)、抗炎、抗衰老、抗腫瘤、降血糖等多種活性作用。但除蛋白后的銀杏果多糖色澤呈橘黃色,其色澤不僅會影響到多糖的純度,還會影響到多糖的分離純化、結(jié)構(gòu)鑒定及生物活性的研究。因此,對銀杏果多糖進(jìn)行脫色,不僅能改善多糖的外觀,而且還能為深入研究其結(jié)構(gòu)等打下基礎(chǔ)[2]。本文探討了離子交換樹脂和大孔吸附樹脂對銀杏果多糖的脫色情況,采用靜態(tài)吸附和動態(tài)吸附試驗確定了樹脂的種類,優(yōu)化了脫色工藝,取得了較好的效果。
銀杏果多糖(實驗室提取);脫色1號、D900、D101、HD-8、NKA9、DA-201、AB-8、S-8 型大孔樹脂(滄州寶恩吸附材料科技有限公司)。
7200 型分光光度計(尤尼柯(上海)儀器有限公司);JD200-2型電子天平(北京塞多利斯儀器有限公司);數(shù)顯式恒溫水浴鍋(常州國華電器有限公司);TDL-5-A型離心機(jī)(上海安亭科學(xué)儀器廠);SHB-Ⅲ循環(huán)水式多用真空泵(鄭州長城科工貿(mào)有限公司);RE-52A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠);DZF-6050真空干燥箱(上海精宏實驗設(shè)備有限公司);HL-2恒流泵(上海青浦滬西儀器廠)。
1.3.1 樹脂的預(yù)處理
陽離子交換樹脂→質(zhì)量分?jǐn)?shù)5%NaCl浸泡20 h→去離子水清洗至中性→質(zhì)量分?jǐn)?shù)5%NaOH浸泡4 h→去離子水沖洗至中性質(zhì)量分?jǐn)?shù)5%HCl浸泡4 h→去離子水沖洗至中性→烘箱中50℃烘干備用。
陰離子交換樹脂→質(zhì)量分?jǐn)?shù)5%NaCl浸泡20 h→去離子水清洗至中性→質(zhì)量分?jǐn)?shù)5%HCL浸泡4 h→去離子水沖洗至中性→質(zhì)量分?jǐn)?shù)5%NaOH浸泡4 h→去離子水沖洗至中性→烘箱中50℃烘干備用。
吸附樹脂→質(zhì)量分?jǐn)?shù)5%HCl浸泡20 h→去離子水清洗至中性→質(zhì)量分?jǐn)?shù)5%NaOH浸泡4 h→去離子水沖洗至中性→質(zhì)量分?jǐn)?shù)95%乙醇浸泡12 h→去離子水清洗至無醇味→烘箱中50℃烘干備用。
1.3.2 靜態(tài)吸附實驗
1.3.2.1 大孔樹脂脫色方法
取一定量處理好的樹脂,加入30 mL 2%的銀杏果多糖溶液于100 mL三角瓶中,恒溫振蕩2 h(120 r/min)。振蕩結(jié)束后,雙層濾紙過濾,5000 r/min離心20 min,考察不同樹脂對多糖溶液的脫色率、總糖保留率和蛋白質(zhì)去除率。
1.3.2.2 正交實驗
100 mL三角瓶中分別加入30 mL 2%的pH值為4.5、5.5和6.5的銀杏果多糖溶液和一定量處理好的脫色1號、D900和D101樹脂,然后將三角瓶置于25、35、45℃的恒溫振蕩箱中振蕩2 h(120 r/min),振蕩結(jié)束后,濾紙過濾多糖溶液,溶液經(jīng)5 000 r/min離心20 min后,考察不同樹脂對提取液的脫色率、總糖保留率和蛋白質(zhì)去除率。
1.3.3 動態(tài)吸附實驗
1.3.3.1 上柱速度對脫色效果的影響
裝柱體積1BV,配制2 mg/mL的脫蛋白后的多糖溶液 1BV 上樣,選擇上樣速度為0.5,l,1.5,2.0,2.5 mL/min,再用2BV的蒸餾水淋洗,合并多糖脫色液和洗脫液,分別測其多糖、色素、蛋白質(zhì)的含量,考察上樣流速對吸附效果的影響。
1.3.3.2 上樣濃度對脫色效果的影響
裝柱體積1BV,分別稱量1 g粗多糖配成1、2、3、4、5、6 mg/mL的粗多糖溶液上柱,流速為1.5 mL/min,后用2BV的蒸餾水沖洗,合并多糖脫色液和洗脫液,分別測其多糖、色素、蛋白質(zhì)的含量,考察上樣濃度對吸附效果的影響。
1.3.3.3 柱容量對脫色效果的影響
在上柱速度為1.5 mL/min,上柱濃度為4 mg/mL條件下,考察脫色1號的柱容量。
1.3.4 分析方法
1.3.4.1 多糖測定及保留率的計算
采用苯酚-硫酸法[3],以葡萄糖為對照品。線性回歸方程為:A=13.961c+0.0449,相關(guān)系數(shù) r=0.999。式中:A為吸光度;c為以葡萄糖計的多糖濃度(mg/mL)。
式中:m前、m后分別為脫色前后的多糖總量。
1.3.4.2 脫色率測定及計算方法
經(jīng)脫色后的待測的多糖提取液雙層濾紙過濾,5 000 r/min 離心20 min 后,分別在420、520、620 nm處測其的吸光值。
式中:OD總前、OD總后分別為脫色前后溶液在420、520、620 nm處測得的吸光值的和。
1.3.4.3 蛋白質(zhì)的測定及去除率的計算
蛋白質(zhì)測定采用考馬斯亮藍(lán)G-250法[4]測定,以牛血清白蛋白為標(biāo)準(zhǔn)品,線性回歸方程為A=0.042 82+0.001 34c,相關(guān)系數(shù) r=0.997 5。
式中:A為吸光度;c蛋白質(zhì)濃度(μg/mL)。
式中:c前、c后分別為脫色前和脫色后蛋白質(zhì)的濃度。
2.1.1 樹脂的初步篩選
分別向三角瓶中加入8種一定量的樹脂和料液(30 mL),然后放入搖床振蕩2 h(溫度45℃,轉(zhuǎn)速120 r/m in)。脫色后,濾紙過濾多糖溶液,5 000 r/min離心20 min,測定并計算料液的脫色率、總糖保留率和蛋白質(zhì)去除率,結(jié)果如表所示。
由表1可知,脫色1號、D900、DA-201C、D101四種樹脂的脫色率都在50%以上,多糖保留率也在65%以上,但 D101樹脂的蛋白質(zhì)去除率卻只有51.07%,所以選擇脫色1號、D900、DA-201C樹脂進(jìn)行正交試驗,對樹脂脫色條件進(jìn)一步優(yōu)化。
以上8種被考察的樹脂對色素、多糖、蛋白質(zhì)的吸附各不相同,這與樹脂的性能和被吸附物質(zhì)的性質(zhì)有很大的關(guān)系。從樹脂性質(zhì)上看,樹脂脫色1號、D900屬于陰離子交換樹脂,樹脂HD-8屬于陽離子交換樹脂,樹脂脫色1號、D900的脫色效果優(yōu)于樹脂HD-8,表明銀杏果多糖提取液中的色素可能屬于陰離子型。從樹脂極性來看,樹脂D101、DA-201為非極性樹脂,樹脂AB-8、S-8、NKA-9為極性樹脂,樹脂D101、DA-201的脫色效果明顯優(yōu)于樹脂AB-8、S-8、NKA-9,表明銀杏果多糖提取液中的色素可能屬于非極性分子。此外,樹脂聚合體所具有的網(wǎng)眼大小必須與銀杏果多糖中所含色素分子的大小相適應(yīng),才能達(dá)到吸附效果,而脫色效果較差的樹脂NKA-9孔徑最大,由此推測銀杏果多糖溶液中色素主要為小分子。綜合分析銀杏果多糖提取液中的色素可能以帶負(fù)電荷的非極性小分子色素為主。
2.1.2 正交設(shè)計確定脫色的最佳工藝條件
采用正交試驗法確定銀杏果多糖溶液的最佳脫色條件,設(shè)計三因素三水平L9(33)正交試驗表,見表2。
表2 試驗因素水平表L9(33)
表3 正交試驗結(jié)果表
由表3可知,影響多糖脫色率的因素依次為A>B>C,即樹脂種類>pH值>溫度,最優(yōu)組合為A1B1C2,即樹脂種類為脫色1號,pH值為4.5,溫度為35℃;影響多糖保存率的因素依次為A>C>B,即樹脂種類>溫度>pH值,最優(yōu)組合為A1B1C3,即樹脂種類為脫色1號,pH值為4.5溫度為45℃;影響蛋白去除率的因素依次為A>B>C,即樹脂種類>pH值>溫度,最優(yōu)組合為A1B3C1,即樹脂種類為脫色1號,pH值為6.5,溫度為25℃。
綜合考慮脫色率、總糖保留率、蛋白質(zhì)去除率3個指標(biāo),得出最佳脫色條件為:脫色1號樹脂、pH值為4.5、溫度為25℃。
2.2.1 上柱速度對脫色效果的影響
將濃度為2.0 mg/mL的銀杏果多糖溶液以0.5、1.0、1.5、2.0、2.5 mL/min 的流速分別上樣,然后測其脫色率,結(jié)果見圖1。
圖1 上樣速度對樹脂脫色的影響
由圖1可知,隨著上柱速度的增加,多糖的脫色率逐漸下降。當(dāng)上樣速度為0.5、1.0 mL/min時,脫色率非常高;當(dāng)上樣速度為2.0 mL/min時,脫色率明顯下降。從吸附理論可以解釋,流速越慢,有利于上柱液中色素分子與樹脂表面充分進(jìn)行粒擴(kuò)散和膜擴(kuò)散,使色素分子充分被樹脂吸附;同時,流速過快,樹脂與多糖溶液接觸的時間越短,不能充分吸附其中色素,因而脫色效果較差。因此選擇上柱速度為1.5 mL/min。
2.2.2 上樣濃度對脫色效果的影響
配制濃度為 1,2,3,4,5,6 mg/mL 的銀杏果多糖溶液分別上樣,然后測其脫色率,結(jié)果見圖2。
圖2 上樣濃度對樹脂脫色的影響
由圖2可知,銀杏果多糖總量一定時,濃度越大,脫色率越低。但是當(dāng)多糖總量一定時,濃度較高的多糖溶液由于體積小反而可以縮短脫色時間,提高生產(chǎn)效率。當(dāng)多糖濃度為5 mg/mL時,脫色率明顯下降。綜合考慮脫色率以及后續(xù)試驗的濃縮工作考慮,選擇4 mg/mL濃度的銀杏果多糖溶液脫色較為合適。
2.2.3 柱容量對脫色效果的影響
在上柱速度為1.5 mL/min,上柱濃度為4 mg/mL條件下,考察脫色1號的柱容量,結(jié)果見圖3。
圖3 柱容量對樹脂脫色的影響
由圖3可知,隨著上樣量的增大,脫色率在逐漸的降低。當(dāng)上樣量在2BV時,多糖的脫色率為90.0%,當(dāng)上樣量為3BV時,脫色率也在80%以上,說明脫色1號具有較強(qiáng)的脫色能力。因此,選擇上樣量為2BV。
綜合靜態(tài)和動態(tài)吸附試驗的結(jié)果進(jìn)行3次驗證試驗,結(jié)果表明在采用脫色1號樹脂,pH值為4.5,溫度為25℃,上柱速度為1.5 mL/min,上樣濃度為選擇4 mg/mL,柱容量為2BV的條件下,多糖的脫色率為82.37%,多糖保留率為79.12%,蛋白去除率為88.39%。
(1)采用離子交換樹脂和吸附樹脂對銀杏果多糖進(jìn)行脫色,篩選出3種樹脂:大孔陰離子交換樹脂脫色1號、D900和非極性的大孔吸附樹脂DA-201C。
(2)銀杏果多糖中的色素可能以帶負(fù)電荷的非極性小分子色素為主。
(3)通過正交試驗和動態(tài)吸附試驗對脫色條件進(jìn)行優(yōu)化,結(jié)果表明,在采用脫色1號樹脂,pH值為4.5,溫度為25℃,上柱速度為1.5mL/min,上樣濃度為選擇4 mg/mL,柱容量為2BV的條件下,多糖的脫色率為82.37%,多糖保留率為79.12%,蛋白去除率為88.39%。
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