陳樂高 姚海波 關(guān)天培 葉再元 陶厚權(quán)
●論 著
miR-139-3p在胃癌組織中的表達及其對細(xì)胞增殖和凋亡的作用
陳樂高 姚海波 關(guān)天培 葉再元 陶厚權(quán)
目的 研究miR-139-3p在胃癌組織和癌旁組織中的表達水平及其對AGS和SGC-7901胃癌細(xì)胞株的增殖和凋亡的作用。 方法 采用qRT-PCR檢測38例患者胃癌組織與癌旁組織中miR-139-3p的表達情況,并分析miR-139-3p的表達與胃癌臨床病理特征之間的關(guān)系;利用miR-139-3p抑制劑下調(diào)胃癌細(xì)胞株中miR-139-3p的表達,MTT法檢測對AGS和SGC-7901細(xì)胞增殖的影響,流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡情況。 結(jié)果 miR-139-3p在胃癌組織中表達高于癌旁組織(P<0.01),其表達增高與腫瘤大小和部位相關(guān)(均P<0.05);下調(diào)miR-139-3p的表達能夠抑制胃癌細(xì)胞的增殖、促進細(xì)胞凋亡(均P<0.05)。 結(jié)論miR-139-3p在胃癌組織中表達增高,可能參與胃癌的發(fā)生、發(fā)展過程。
miR-139-3p 胃癌 AGS細(xì)胞 SGC-7901細(xì)胞 細(xì)胞增殖 細(xì)胞凋亡
miR-139-3p Gastric cancerAGS cellSGC-7901 cellCell proliferation Cell apoptosis
胃癌是一種常見的消化道惡性腫瘤,在我國發(fā)病率和病死率都非常高[1]。近年來研究發(fā)現(xiàn)microRNA(miR NA),作為一種非編碼的內(nèi)源性RNA,在腫瘤的發(fā)生、發(fā)展中起著重要作用[2]。已有實驗證明,異常表達的miRNA,如miR-101、miR-199a等在胃癌的發(fā)生、發(fā)展中起到重要作用[3-4]。在前期研究利用microRNA芯片篩選出胃癌中異常表達的miRNA,其中miR-139-3p異常表達增高。本研究采用實時定量PCR(qRT-PCR)檢測胃癌組織與癌旁組織中miR-139-3p的表達情況;分析其表達量與胃癌臨床病理特性之間的關(guān)系;通過miR-139-3p抑制劑下調(diào)胃癌細(xì)胞株AGS、SGC-7901中的miR-139-3p的表達,進一步分析miR-139-3p對胃癌細(xì)胞增殖和凋亡的作用,為進一步研究其在胃癌中的分子生物學(xué)機制和發(fā)現(xiàn)新的治療靶點提供依據(jù)。
1.1 一般資料 收集浙江省人民醫(yī)院2011-02—06收治的38例新鮮胃癌手術(shù)切除標(biāo)本及癌旁組織(距腫瘤組織5cm以上)。所有病例均經(jīng)病理確診,且術(shù)前未接受過放化療。其中男26例,女12例,年齡34~86歲,中位年齡57歲。腫瘤組織根據(jù)美國癌癥聯(lián)合委員會(American Joint Committee on Cancer,AJCC)胃癌TNM分期(2010年第7版)進行病理分期。
1.2 材料 胃癌細(xì)胞株AGS和SGC-7901購自于上海細(xì)胞庫;TRIzol試劑購自美國Invitrogen公司;One Step PrimeScript miRNA cDNA Synthesis Kit、SYBR Premix Ex TaqTMII定量PCR試劑盒購自TAKARA公司;Anti-hsa-miR-139-3p miScript miRNA Inhibitor試劑(MIN0004552)和 miScript Inhibitor Negative Control試劑(1027271)購自于美國QIAGEN公司;GAVA Nexin V Reagent凋亡試劑盒購自德國Millipore公司。
1.3 胃癌組織及癌旁組織中miR-139-3p的檢測
1.3.1 總RNA提取和反轉(zhuǎn)錄 按RNA提取試劑盒說明書提取總RNA。利用miRNA cDNA Synthesis Kit進行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng),反應(yīng)體系:2×miRNA Reaction Buffer Mix 10μl,0.1%PBS 2μl,miRNA PrimeScrip RT Enzyme Mix 2μl,Total RNA 1μl RNase Free dH2O 5μl;反應(yīng)條件:37℃60min,85℃5s。
1.3.2 Real-time PCR miR-139-3p的正向特異性引物序列為:GGAGACGCGGCCCTGTTGGAGT,內(nèi)參U6B的正向特異性引物序列為:ACGCAAATTCGTGAAGCGTT;反向引物為逆轉(zhuǎn)錄試劑盒中提供的通用引物。PCR反應(yīng)體系:SYBR Premix 10μl,Rox 0.4μl,正反向引物各0.5μl,模板1 μl,dH2O 7.6μl;反應(yīng)條件:94℃4min,1個循環(huán);94℃5s,55℃20s,72℃20s,40個循環(huán);熔解曲線程序:95℃1min,55℃30s,95℃30s,1個循環(huán)。
1.4 胃癌細(xì)胞株中miR-139-3p抑制劑的轉(zhuǎn)染 取對數(shù)生長期AGS和7901細(xì)胞接種于6孔板中(細(xì)胞濃度2×105個/孔)。按轉(zhuǎn)染試劑盒要求,將miR-139-3p抑制劑Anti-hsa-miR-139-3p miScript miRNA Inhibitor作用于細(xì)胞,作為實驗組;將miScript Inhibitor Negative Control作用于細(xì)胞,作為對照組。轉(zhuǎn)染24h后,利用qRT-PCR檢測轉(zhuǎn)染效果及進行細(xì)胞實驗。
1.5 MTT檢測增殖率 收集上述實驗組和對照組細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞濃度為1×105個/ml。將200μl細(xì)胞懸液接種于96孔板中,置于37℃、5%CO2飽和濕度培養(yǎng)箱內(nèi)。分別在培養(yǎng)24、48、72h后,每孔加入20μl MTT液(5mg/ml),繼續(xù)培養(yǎng)4h后取出培養(yǎng)板。吸凈上清液,每孔加入150μl DMSO,振蕩15min。以630nm為參考波長,570nm為測定波長,用多功能酶標(biāo)儀(Infinite M200)測定每孔的吸光度(A)。相對增殖率(%)=實驗組(A570nm-A630nm)/對照組(A570nm-A630nm)× 100%。
1.6 流式細(xì)胞儀檢測凋亡 取上述實驗組和對照組細(xì)胞,用0.25%胰酶消化后,PBS洗滌2次,離心去除PBS,加入200μl凋亡試劑染色,混勻,避光放置30min,再次混勻,吸100μl細(xì)胞混合液至96孔板中,加入100μl培養(yǎng)基后上機檢測。
1.7 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS18.0統(tǒng)計軟件,計量資料均以表示,配對計量資料采用配對樣本t檢驗;等級資料采用χ2或Fisher確切概率檢驗。
2.1 miR-139-3p在胃癌組織中表達增高 胃癌組織中miR-139-3p的相對表達量(1.36×10-4±4.01×10-5),高于癌旁正常組織(7.87×10-5±2.81×10-5)。兩者比較具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見圖1。
圖1 miR-139-3p在胃癌及癌旁組織中表達
2.2 miR-139-3p的表達與臨床病理特征的關(guān)系 miR-139-3p的表達增高與胃癌患者的腫瘤部位、直徑相關(guān)(P<0.05),而與患者性別、年齡、分化程度、TNM分期等無關(guān)(均P>0.05),見表1。
2.3 抑制劑對miR-139-3p表達的影響 qRT-PCR的檢測結(jié)果表明實驗組的miR-139-3p表達量明顯低于對照組(P<0.05)。提示miR-139-3p抑制劑能夠抑制胃癌細(xì)胞中miR-139-3p的表達,見圖2。
2.4 下調(diào)miR-139-3p對胃癌細(xì)胞增殖的影響 MTT實驗結(jié)果表明,下調(diào)miR-139-3p的表達能夠抑制胃癌細(xì)胞的增殖。培養(yǎng)24、48、72h后,實驗組AGS細(xì)胞相對增殖率分別為95.3%±2.18%、87.5%±2.04%、83.8%± 3.59%(均P<0.05);實驗組SGC-7019細(xì)胞相對增殖率分別為92.1%±4.22%、85.3%±1.76%、74.7%±3.39%(均P<0.05)。提示下調(diào)miR-139-3p對胃癌細(xì)胞的增殖有明顯的抑制作用,見圖3。
2.5 下調(diào)miR-139-3p的表達對胃癌細(xì)胞凋亡的作用 下調(diào)miR-139-3p的表達后,AGS細(xì)胞的早期凋亡比例從7.03%±1.02%增加到16.83%±2.21%,具有統(tǒng)計學(xué)差異(P<0.01),而SGC-7901細(xì)胞的早期凋亡比例增加無統(tǒng)計學(xué)差異(7.60%±2.05%vs 8.13%±0.77%,P>0.05),見圖4。
表1 miR-139-3p的表達與胃癌患者臨床病理特征的關(guān)系
圖2 抑制劑下調(diào)miR-139-3p在胃癌細(xì)胞中的表達
圖3 MTT法檢測下調(diào)miR-139-3p后胃癌細(xì)胞增殖情況
圖4 流式細(xì)胞儀檢測下調(diào)miR-139-3p后胃癌細(xì)胞凋亡情況
miRNAs是一類由18~23個核苷酸構(gòu)成的單鏈非編碼RNA分子,其本身不編碼蛋白質(zhì),但是可以通過與靶基因mRNA的3′端非編碼區(qū)(3′-untranslational region,UTR)結(jié)合,抑制mRNA的翻譯或降解翻譯產(chǎn)物導(dǎo)致靶基因的轉(zhuǎn)錄后沉默,從而參與靶基因功能的調(diào)節(jié)。miRNA參與生命過程中一系列的重要進程,包括早期發(fā)育、細(xì)胞增殖、分化和凋亡等[2]。近年來研究發(fā)現(xiàn)[5],miRNA還與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展有著密切關(guān)系。有研究表明,大約50%的人類miRNA基因位于染色體的易碎片段和腫瘤相關(guān)區(qū)域,而腫瘤的發(fā)生常常與這些基因的擴增或丟失密切相關(guān)。miRNA表達失調(diào)的現(xiàn)象普遍存在于肺癌、前列腺癌、乳腺癌、肝癌、胰腺癌、結(jié)腸癌等多種腫瘤中,并且不同腫瘤其miRNA表達譜也有很大差異[6-11]。miRNA具有類癌基因或類抑癌基因的功能,類癌基因樣miRNA在腫瘤中表達增高或類抑癌基因樣miRNA的表達降低能下調(diào)抑癌基因的活性,促進腫瘤細(xì)胞增殖、侵襲、轉(zhuǎn)移或耐藥等,在腫瘤的發(fā)生、發(fā)展中起著重要作用[12]。
近來大量研究表明,胃癌是一種多基因疾病,其發(fā)生、發(fā)展是一個多步驟參與、多種相關(guān)基因失活導(dǎo)致的結(jié)果。miRNA可以作為癌基因或抑癌基因在胃癌中發(fā)揮促癌或抑癌作用。Xia等[13]研究表明,miR-124能夠與SPHK1基因的3′-UTR結(jié)合來抑制該基因表達,從而抑制胃癌細(xì)胞的增殖。Zhang等[14]報道,miR-181a能夠促進胃癌細(xì)胞7901增殖、克隆形成、侵襲和遷移,抑制細(xì)胞凋亡,而且進一步原位雜交和熒光素酶報告基因結(jié)果顯示抑癌基因KLF6的表達被其抑制。Liu等[15]研究發(fā)現(xiàn),miR-221在胃癌組織中高表達,且與淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移、浸潤深度和淋巴遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移相關(guān),Cox比例風(fēng)險回歸模型提示高表達miR-221可能是胃癌預(yù)后的一個危險因子。Zhang等[16]用實時定量PCR證實miR-21在人胃癌組織及細(xì)胞株中顯著過表達,在人胃癌細(xì)胞株AGS中,miR-21的高表達能顯著增強細(xì)胞增殖和侵襲能力,而敲除miR-21導(dǎo)致細(xì)胞凋亡顯著增加,增殖、侵襲和遷移能力明顯下降,進一步研究證實RECK(一種已知的胃癌抑制基因)是miR-21的靶點,即miRNA先通過下調(diào)RECK,然后導(dǎo)致胃癌發(fā)生。本研究表明miR-139-3p在胃癌組織中表達量高于癌旁組織,且miR-139-3p的表達增高與腫瘤大小、部位相關(guān),當(dāng)miR-139-3p被下調(diào)后,胃癌細(xì)胞株AGS和SGC-7901的增殖被抑制,且AGS細(xì)胞凋亡比例增加。
miR-139-3p的異常表達在其他惡性腫瘤中也有報道。Schmitz等[17]發(fā)現(xiàn),miR-139-3p在惡性腎上腺皮質(zhì)瘤中表達量增加了7.49倍,提示miR-139-3p可作為一個惡性腎上腺皮質(zhì)瘤的診斷因子。Shen等[18]報道發(fā)現(xiàn),miR-139-3p高表達與結(jié)腸癌肝轉(zhuǎn)移正相關(guān),提示其可能參與了結(jié)腸癌的遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移。然而陽圣等[19]利用miRNA芯片檢測發(fā)現(xiàn)胃癌中miR-139-3p表達下調(diào),這與本實驗結(jié)果相反,可能與實驗的樣本數(shù)量及實驗方法不同有關(guān)。
綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn)miR-139-3p在胃癌組織中表達升高,且與胃癌的腫瘤大小、部位相關(guān)。下調(diào)miR-139-3p可抑制胃癌細(xì)胞的增殖,促進胃癌細(xì)胞凋亡。推測miR-139-3p可能參與了胃癌發(fā)生、發(fā)展,其具體機制尚需進一步研究。
[1]Ling Y.Incidence and mortality of gastric cancer in China[J]. World J Gastroenterol,2006,12(1):17-20.
[2]Bartel D P.MicroRNAs:genomics,biogenesis,mechanism,and function[J].Cell,2004,116(2):281-297.
[3]Wang H J,Ruan H J,He X J,et al.MicroRNA-101 is down-regulated in gastric cancer and involved in cell migration and invasion[J].Eur J Cancer,2012,46(12):2295-2303.
[4]Zhang Y,Fan K J,Sun Q,et al.Functional screening for miRNAs targeting Smad4 identified miR-199a as a negative regulator of TGF-β signalling pathway[J].Nucleic Acids Res,2012,40(18): 9286-9297.
[5]Calin G A,Sevignani C,Dumitru C D,et al.Human microRNA genes are frequently located at fragile sites and genomic regions involved in cancers[J].Proc Nat Acad Sci USA,2004,101(9): 2999-3004.
[6]Landi M T,Zhao Y,Rotunno M,et al.MicroRNA expression differentiates histology and predicts survival of lung cancer[J].Clin Cancer Res,2010,16:430-441.
[7]Tong A W,Fulgham P,Jay C,et al.MicroRNA profile analysis of human prostate cancers[J].Cancer Gene Ther,2009,16:206-216.
[8]Yan L X,Huang X F,Shao Q,et al.MicroRNA miR-21 overexpression in human breast cancer is associated with advanced clinical stage,lymph node metastasis and patient poor prognosis [J].RNA,2008,14:2348-2360.
[9]Varnholt H,Drebber U,Schulze F,et al.MicroRNA gene expression profile of hepatitis C virus-associated hepatocellular carcinoma[J].Hepatology,2008,47:1223-1232.
[10]Lee E J,Gusev Y,Jiang J,et al.Expression profiling identifies microRNA signature in pancreatic cancer[J].Int J Cancer,2007, 120:1046-1054.
[11]Bandres E,Cubedo E,Agirre X,et al.Identification by Real-time PCR of 13 mature microRNAs differentially expressed in colorectal cancer and non-tumoral tissues[J].Mol Cancer,2006, 5:29.
[12]Lin T,Dong W,Huang J,et al.MicroRNA-143 as a tumor suppressor for bladder cancer[J].J Urol,2009,181:1372-1380.
[13]Xia J,Wu Z,Yu C,et al.miR-124 inhibits cell proliferation in gastric cancer through down-regulation of SPHK1[J].J Pathol, 2012,227(4):470-480.
[14]Zhang X,Nie Y,Du Y,et al.MicroRNA-181a promotes gastric cancer by negatively regulating tumor suppressor KLF6[J].Tumour Biol,2012,33(5):1589-1597.
[15]Liu K,Li G,Fan C,et al.Increased Expression of MicroRNA-221 in gastric cancer and its clinical significance[J].J Int Med Res,2012,40(2):467-474.
[16]Zhang Z,Li Z,Gao C,et al.miR-21 plays a pivotal role in gastric cancer pathogenesis and progression[J].Lab Invest,2008, 88(12):1358-1366.
[17]Schmitz K J,Helwig J,Bertram S,et al.Differential expression of microRNA-675,microRNA-139-3p and microRNA-335 in benign and malignant adrenocortical tumours[J].J Clin Pathol, 2011,64(6):529-535.
[18]Shen K,Liang Q,Xu K,et al.MiR-139 inhibits invasion and metastasis of colorectal cancer by targeting the type I insulin-like growth factor receptor[J].Biochem Pharmacol,2012, 84(3):320-330.
[19]陽圣,張雯,楊燕青,等.胃癌組織miRNA差異表達的初步分析[J].上海交通大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2010,30(11):1317-1323.
2012-09-04)
(本文編輯:胥昀)
國家自然科學(xué)基金(81071991)
325000 溫州醫(yī)學(xué)院第一臨床醫(yī)學(xué)院 (陳樂高、姚海波、關(guān)天培、葉再元,陳樂高系碩士研究生);浙江省人民醫(yī)院胃腸外科(葉再元、陶厚權(quán))
葉再元,E-mail:zaiyuanye@163.com
【 Abstract】 ObjectiveTo investigate the effect of miR-139-3p on proliferation and apoptosis in gastric cancer. Methods The expression of miR-139-3p in gastric cancer and pericancerous tissues was examined by Real-time PCR.The correlation between miR-139-3p expression and clinicopathologic features of gastric cancer was analyzed.The cultured gastric cancer AGS and SGC-7901 cells were treated with miR-139-3p Inhibitor;the cell proliferation was detected by MTT assay and apoptosis was analyzed by flow cytometry. Results The expression of miR-139-3p increased in gastric cancer compared with pericancerous tissues(P<0.05).Expression of miR-139-3p was associated with tumor size(P<0.05)and location(P<0.05). Down-regulation of miR-139-3p inhibited proliferation and promoted apoptosis of gastric cancer AGS and SGC-7901 cells. Conclusion miR-139-3p is up-regulated in gastric cancer,which might be involved in the development of gastric cancer.