楊 漸,陳 理,俞昌喜
(福建醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院藥理學(xué)系,福建 福州350001)
人 胰 島 素 樣 生 長(zhǎng) 因 子-1(Human insulin like growth factor-1,hIGF-1)在生理活動(dòng)中與神經(jīng)細(xì)胞分化、個(gè)體發(fā)育、新陳代謝等密切相關(guān)[1,2],對(duì)許多疾病具有潛在的臨床治療作用[3-5],因此外源性 hIGF-1產(chǎn)品具有較大的市場(chǎng)需求。利用基因重組技術(shù)制備hIGF-1是目前國(guó)內(nèi)外研究的熱點(diǎn),要實(shí)現(xiàn)重組hIGF-1的大規(guī)模制備,高密度發(fā)酵是不可缺少的工藝步驟。高密度發(fā)酵技術(shù)即高密度細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)(High cell density cultivation,HCDC)能夠顯著增大菌體密度、縮短生產(chǎn)周期,從而降低生產(chǎn)成本、提高生產(chǎn)效率[6]。
要實(shí)現(xiàn)工程菌的高密度生長(zhǎng)及重組hIGF-1的高效表達(dá),首先需要合適的、能夠滿(mǎn)足表達(dá)需要的發(fā)酵培養(yǎng)基。實(shí)驗(yàn)室中常用的培養(yǎng)基如LB、M9、MBL等成分相對(duì)單一,要用于高密度培養(yǎng)還需要對(duì)其組成尤其是碳源、氮源及其比例進(jìn)行進(jìn)一步的優(yōu)化[7]。作者在此以M9培養(yǎng)基為初始發(fā)酵培養(yǎng)基,在單因素實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上,利用正交實(shí)驗(yàn)[8,9]優(yōu)化適合于表達(dá)重組hIGF-1大腸桿菌高密度發(fā)酵培養(yǎng)基,以期為后續(xù)的大量生產(chǎn)奠定基礎(chǔ)。
表 達(dá) hIGF-1 的 工 程 菌 E.coli DH5α/pET32a(IGF-1),自行構(gòu)建并保存。
LB培養(yǎng)基(g·L-1):胰蛋白胨10.0,酵母提取物5.0,NaCl 10.0,pH 值7.0。使用前加入氨芐青霉素至50μg·mL-1。
M9培養(yǎng)基(g·L-1):NH4Cl 1.0,KH2PO43.0,Na2HPO46.0,葡萄糖4.0,MgSO40.12,pH 值7.0。使用前加入氨芐青霉素至50μg·mL-1。
1.2.1 工程菌的搖瓶培養(yǎng)
在前期工作[10,11]基礎(chǔ)上,將凍存的工程菌株復(fù)蘇后鋪平板,37℃下培養(yǎng)24h;挑取單菌落接種于5mL LB培養(yǎng)基中,37℃、250r·min-1下振蕩12h后,按1∶100比例轉(zhuǎn)種于發(fā)酵培養(yǎng)基,繼續(xù)振蕩8h,加入誘導(dǎo)劑誘導(dǎo)6h。
1.2.2 培養(yǎng)基優(yōu)化方法
在M9培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上,首先采用單因素實(shí)驗(yàn)研究不同碳源(葡萄糖、甘油、蔗糖、檸檬酸)及不同氮源(胰蛋白胨、牛肉膏、氯化銨)對(duì)工程菌生長(zhǎng)與產(chǎn)酸的影響;然后以菌體生長(zhǎng)量(OD600)和重組蛋白表達(dá)率的乘積為綜合評(píng)價(jià)指標(biāo),采用正交實(shí)驗(yàn),考察碳氮源配比和5種 無(wú) 機(jī) 鹽 (Na2HPO4、KH2PO4、NH4Cl、NaCl、MgSO4)對(duì)工程菌生長(zhǎng)的影響。實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次,結(jié)果取平均值。
1.2.3 分析檢測(cè)
1.2.3.1 菌體密度測(cè)定
采用比色法測(cè)定菌體密度:將培養(yǎng)液稀釋適當(dāng)倍數(shù)至光吸收值在0.3~0.7之間,用分光光度計(jì)測(cè)OD600,測(cè)得值與稀釋倍數(shù)的乘積即為所測(cè)的菌體密度OD600值。
1.2.3.2 重組hIGF-1表達(dá)測(cè)定
采用蛋白質(zhì)聚丙烯酰胺凝膠電泳技術(shù),將發(fā)酵液離心去上清,用等體積的PBS洗滌并離心去上清2次,所有樣品加入等體積蛋白電泳上樣緩沖溶液,混勻,100℃下加熱3min,離心5min,取上清10μL上樣電泳,考馬斯亮藍(lán)法染色,采用凝膠分析軟件Band-Scan 5.0分析重組hIGF-1蛋白的表達(dá)量。
高密度發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化常在初始培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上添加能促進(jìn)細(xì)胞生長(zhǎng)及代謝產(chǎn)物形成的不同物質(zhì)[12]。不同工程菌菌株或是含有不同目的基因的相同菌株對(duì)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),特別是碳氮源配比的需求也不盡相同。
培養(yǎng)基中的碳源既是構(gòu)成菌體細(xì)胞和代謝產(chǎn)物的主要元素,又為微生物生命活動(dòng)提供能量,且某些碳源代謝過(guò)程中產(chǎn)生的有機(jī)酸的積累不利于外源蛋白在M9培養(yǎng)基中的表達(dá)[13]。葡萄糖、甘油、蔗糖及檸檬酸等4種碳源對(duì)工程菌E.coli DH5α/pET32a(IGF-1)生長(zhǎng)和產(chǎn)酸的影響見(jiàn)圖1。
圖1 不同碳源對(duì)E.coli DH5α/pET32a(IGF-1)生長(zhǎng)(a)和產(chǎn)酸(b)的影響Fig.1 Effect of different carbon sources on growth(a)and acid-producing(b)of E.coli DH5α/pET32a(IGF-1)
由圖1可看出,蔗糖或檸檬酸不利于工程菌生長(zhǎng),菌體密度OD600都比較低;以甘油為碳源時(shí),工程菌生長(zhǎng)較好,且菌體密度OD600與培養(yǎng)基pH值并不隨甘油濃度的變化而有明顯改變;以葡萄糖為碳源時(shí),隨其濃度的增加,OD600先升后降,在葡萄糖濃度為0.8%時(shí)達(dá)到最高,發(fā)酵液的pH值則明顯下降。
究其原因,一方面,葡萄糖極易被微生物利用而在一定范圍內(nèi)促進(jìn)工程菌生長(zhǎng);另一方面,當(dāng)培養(yǎng)基中的葡萄糖超過(guò)了細(xì)菌有氧代謝的能力時(shí),過(guò)量的葡萄糖進(jìn)入糖酵解途徑,產(chǎn)生酸性代謝副產(chǎn)物丙酮酸,抑制了工程菌的生長(zhǎng)[14],因此,在以葡萄糖作為碳源發(fā)酵時(shí),其濃度應(yīng)控制在一定范圍內(nèi)。相對(duì)而言,工程菌對(duì)甘油的利用較慢,甘油作為碳源也不易產(chǎn)生酸性代謝副產(chǎn)物[15],因此,菌體密度OD600與培養(yǎng)基pH值相對(duì)較為穩(wěn)定。綜合考慮,選擇葡萄糖和甘油作為優(yōu)化培養(yǎng)基的碳源。
氮源是菌體合成細(xì)胞結(jié)構(gòu)和含氮代謝物的主要原料,可分為無(wú)機(jī)氮源與有機(jī)氮源。無(wú)機(jī)氮源如氯化銨、硫酸銨等作用持續(xù)時(shí)間短,能夠被微生物快速利用,并且通常會(huì)顯著改變培養(yǎng)基的pH值而影響菌體的生長(zhǎng);胰蛋白胨和酵母粉等有機(jī)氮源主要以大分子蛋白質(zhì)的形式存在,需進(jìn)一步降解成小分子的肽和氨基酸后才被微生物吸收利用,其利用速度較慢[16]。
不同氮源對(duì)工程菌E.coli DH5α/pET32a(IGF-1)生長(zhǎng)的影響見(jiàn)圖2。
圖2 不同氮源對(duì)E.coli DH5α/pET32a(IGF-1)生長(zhǎng)的影響Fig.2 Effect of different nitrogen sources on growth of E.coli DH5α/pET32a(IGF-1)
由圖2可看出,酵母粉和胰蛋白胨均能較好地促進(jìn)工程菌生長(zhǎng),濃度在6.0%時(shí)OD600均達(dá)到高峰,但隨其濃度進(jìn)一步增大,工程菌生長(zhǎng)受到抑制;牛肉膏對(duì)工程菌生長(zhǎng)有促進(jìn)作用但相對(duì)較弱;低濃度的氯化銨有利于菌體生長(zhǎng),但隨其濃度增大,OD600顯著下降。綜合考慮,選擇酵母粉和胰蛋白胨作為優(yōu)化培養(yǎng)基的氮源。
在確定了合適的碳源和氮源后,需要進(jìn)一步優(yōu)化碳氮源配比。碳氮源配比偏小,菌體在發(fā)酵早期生長(zhǎng)過(guò)快,造成菌體提前衰老自溶;碳氮源配比偏大,菌體繁殖數(shù)量少、不利于產(chǎn)物的積累,產(chǎn)率下降[17]。因此在確定以葡萄糖、甘油為復(fù)合碳源,以酵母粉、胰蛋白胨為復(fù)合氮源的基礎(chǔ)上,進(jìn)行4因素3水平培養(yǎng)基碳氮源配比優(yōu)化正交實(shí)驗(yàn),結(jié)果見(jiàn)表1,各實(shí)驗(yàn)組的重組hIGF-1蛋白表達(dá)情況見(jiàn)圖3。
表1 培養(yǎng)基碳氮源配比優(yōu)化正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析Tab.1 Results and analysis of orthogonal experiment for optimization of proportion of carbon source and nitrogen source
由表1可知,葡萄糖濃度對(duì)工程菌生長(zhǎng)的影響最大,0.4%的葡萄糖對(duì)工程菌的生長(zhǎng)最為有利,這與單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果有所不同,可能是因?yàn)榕囵B(yǎng)基中存在的另一種碳源甘油減少了工程菌對(duì)葡萄糖的需求;甘油濃度對(duì)工程菌生長(zhǎng)影響不大,高濃度的甘油(3.0%)也不會(huì)抑制工程菌的生長(zhǎng);3%的酵母粉即適合于工程菌生長(zhǎng);而6%的胰蛋白胨對(duì)工程菌生長(zhǎng)最為有利,但在3%時(shí)已基本能滿(mǎn)足工程菌需要,增大濃度對(duì)進(jìn)一步促進(jìn)工程菌生長(zhǎng)十分有限(極差值很小)。綜合考慮菌體生長(zhǎng)量、重組蛋白表達(dá)率及發(fā)酵成本,確定最佳碳氮源配比為 A1B2C1D1,即葡萄糖0.4%、甘油1.5%、酵母粉3%、胰蛋白胨3%。
培養(yǎng)基中的無(wú)機(jī)鹽既是菌體內(nèi)某些復(fù)雜化合物的重要組成部分,又參與酶活性的調(diào)節(jié),如Na+、K+、Ca2+、Mg2+、P3+等離子可以多種形式存在于培養(yǎng)基中。選擇5種無(wú)機(jī)鹽(Na2HPO4、KH2PO4、NH4Cl、NaCl、MgSO4)進(jìn)行5因素4水平培養(yǎng)基無(wú)機(jī)鹽優(yōu)化正交實(shí)驗(yàn),結(jié)果見(jiàn)表2,各實(shí)驗(yàn)組的重組hIGF-1蛋白表達(dá)情況見(jiàn)圖4。
圖3 碳氮源配比優(yōu)化正交實(shí)驗(yàn)中的各組重組hIGF-1的表達(dá)Fig.3 Expression of recombinant hIGF-1of each group in the orthogonal experiment for optimization of proportion of carbon source and nitrogen source
由表2可知,對(duì)工程菌生長(zhǎng)影響較大的無(wú)機(jī)鹽主要是磷酸鹽Na2HPO4與KH2PO4,其最佳濃度分別為1.2%與0.6%,其余3種無(wú)機(jī)鹽對(duì)工程菌生長(zhǎng)影響不明顯(極差值較?。?。最適合工程菌E.coli DH5α/pET32a(IGF-1)生 長(zhǎng) 的 無(wú) 機(jī) 鹽 組 合 為:Na2HPO41.2%、KH2PO40.6%、NH4Cl 0.1%、NaCl 0.20%、MgSO40.048%。
表2培養(yǎng)基無(wú)機(jī)鹽優(yōu)化正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析Tab.2 Results and analysis of orthogonal experiment for optimization of inorganic salts
圖4 在無(wú)機(jī)鹽優(yōu)化正交實(shí)驗(yàn)中的各組重組hIGF-1的表達(dá)Fig.4 Expression of recombinant hIGF-1of each group in the orthogonal experiment for optimization of inorganic salts
經(jīng)培養(yǎng)基碳氮源配比及無(wú)機(jī)鹽的優(yōu)化,可知適合工程菌E.coli DH5α/pET32a(IGF-1)生長(zhǎng)的優(yōu)化培養(yǎng)基為:葡萄糖0.4%、甘油1.5%、酵母粉3%、胰蛋白胨3%、Na2HPO41.2%、KH2PO40.6%、NH4Cl 0.1%、NaCl 0.20%、MgSO40.048%。工程菌在此優(yōu)化培養(yǎng)基中的生長(zhǎng)曲線(xiàn)如圖5所示。
由圖5可看出,在優(yōu)化培養(yǎng)基中,搖瓶培養(yǎng)菌體密度OD600最高達(dá)7.5,較初始培養(yǎng)基的一般水平有了很大提高。
在M9培養(yǎng)基基礎(chǔ)上,通過(guò)單因素實(shí)驗(yàn)和正交實(shí)驗(yàn),優(yōu)化得到了適合于工程菌E.coli DH5α/pET32a(IGF-1)生長(zhǎng)的發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖0.4%、甘油1.5%、酵母粉3%、胰蛋白胨3%、Na2HPO41.2%、KH2PO40.6%、NH4Cl 0.1%、NaCl 0.20%、MgSO40.048%,在此培養(yǎng)基中搖瓶培養(yǎng)14h,菌體密度OD600達(dá)7.5。當(dāng)然,高密度發(fā)酵影響因素眾多,要進(jìn)一步提高重組hIGF-1的表達(dá)水平并實(shí)現(xiàn)其在工程菌高密度發(fā)酵培養(yǎng)基中的高效表達(dá),還需要對(duì)培養(yǎng)條件如誘導(dǎo)劑濃度、誘導(dǎo)時(shí)機(jī)、誘導(dǎo)時(shí)長(zhǎng)等進(jìn)行進(jìn)一步的優(yōu)化。
圖5 E.coli DH5α/pET32a(IGF-1)在優(yōu)化培養(yǎng)基中的生長(zhǎng)曲線(xiàn)Fig.5 Cell growth curve of E.coli DH5α/pET32a(IGF-1)in the optimal medium
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