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      黃豆脲酶的提取及其活性測(cè)定

      2013-09-05 05:11:42林麗云董曉潔陳阿微
      食品研究與開發(fā) 2013年9期
      關(guān)鍵詞:脲酶冷凍干燥黃豆

      林麗云,董曉潔,陳阿微

      (韓山師范學(xué)院生物系,廣東潮州 521000)

      黃豆脲酶的提取及其活性測(cè)定

      林麗云,董曉潔,陳阿微

      (韓山師范學(xué)院生物系,廣東潮州 521000)

      摘 要:對(duì)市售黃豆進(jìn)行了脲酶提取研究,通過(guò)pH增值法對(duì)脲酶活性進(jìn)行測(cè)定,并確定黃豆脲酶的最佳提取方案。結(jié)果表明,提取黃豆脲酶的最佳方案為:采用干黃豆為原料,以30%乙醇溶液提取脲酶粗酶液,用分級(jí)沉淀的方法對(duì)粗酶液里的脲酶進(jìn)行分離,采用Sephadex G-150凝膠層析過(guò)濾裝置對(duì)脲酶液進(jìn)行純化,用真空冷凍干燥技術(shù)對(duì)脲酶液進(jìn)行干燥濃縮,得到酶活力最高的脲酶。

      關(guān)鍵詞:黃豆;脲酶;分級(jí)醇沉;凝膠過(guò)濾;冷凍干燥

      脲酶作為重要的生物制劑,廣泛分布于植物的種子中,但以黃豆、刀豆中含量豐富。黃豆中的脲酶,是一種寡聚酶,分子量約為293 500,等電點(diǎn)為3.9,具有絕對(duì)專一性,特異性地催化尿素水解釋放出氨和二氧化碳。

      隨著我國(guó)經(jīng)濟(jì)、科技的迅速發(fā)展,脲酶的需求量越來(lái)越大。但就目前來(lái)說(shuō),脲酶在我國(guó)尚未形成自主的生產(chǎn)能力。商品化的脲酶產(chǎn)品主要由巨豆提取,而國(guó)內(nèi)又缺乏巨豆資源,對(duì)脲酶的迫切需求使我們不得不長(zhǎng)期依賴進(jìn)口。本實(shí)驗(yàn)以價(jià)格低廉、來(lái)源豐富的市售黃豆為原料提取脲酶;建立從黃豆中提取脲酶的全套流程,包括粗酶液的提取、脲酶的分級(jí)沉淀、分離純化,及酶液的干燥;對(duì)所提取的脲酶活性進(jìn)行檢測(cè),為脲酶的分離、純化及應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。

      1 材料與儀器

      1.1 主要原料

      市售黃豆:購(gòu)買于潮州市韓山師范學(xué)院附近菜市場(chǎng)。

      1.2 主要試劑

      Sephadex-G150:西安樸天生物科技有限公司,BR;尿素:上海源葉生物科技有限公司,BR;無(wú)水乙醇、甘油和丙酮均為分析純?cè)噭?/p>

      1.3 主要儀器

      TGL-16R冷凍高速離心機(jī):珠海黑馬醫(yī)學(xué)儀器有限公司;pH-3c精密酸度計(jì):上海紅益儀器儀表有限公司;交聯(lián)葡聚糖Sephadex G-150層析柱:上海精科;SBS-100數(shù)控記滴自動(dòng)部分收集器:上海康華生化儀器有限公司;LGJ-18冷凍干燥機(jī):北京四環(huán)科學(xué)儀器廠有限公司等。

      2 方法

      2.1 黃豆脲酶的提取

      2.1.1 30%乙醇提取黃豆脲酶[1]

      用天平稱取干燥的黃豆,粉碎,以100目鋼篩篩出豆粉。向錐形瓶中加入2.0g豆粉,再加入20mL的30%乙醇溶液,充分搖勻30 min,放置冰箱里保存24 h后,以3 000 r/min離心15 min,上清液為脲酶粗提取液。

      2.1.2 70%甘油提取黃豆脲酶[2]

      取25 g洗凈晾干的黃豆,用無(wú)氨蒸餾水浸泡過(guò)夜,轉(zhuǎn)入研缽中,加入少許70%甘油溶液研磨至糊狀,用70%甘油稀釋至250 mL,用玻璃棒攪拌混勻,靜置提取后減壓過(guò)濾,濾液盛于塑料瓶中,儲(chǔ)于冰箱中待用。

      2.1.3 32%丙酮提取黃豆脲酶

      稱取2 g黃豆粉置于三角瓶中,加入32%丙酮6 mL,振搖10 min,進(jìn)行提取,然后倒入離心管中,用32%丙酮2 mL洗小三角燒瓶一次,洗液也倒入離心管中,離心(3 000 r/min)5 min,將上清液倒入刻度離心管中量取體積,加入等體積的冷丙酮,使蛋白質(zhì)沉淀。進(jìn)一步離心(3 000 r/min)5 min,棄去上清液。待沉淀中的丙酮蒸發(fā)后,加蒸餾水2.5 mL,使沉淀溶解。如有沉淀,再離心(2 000 r/min)5 min,取上清液,即為脲酶粗提取液。

      2.2 黃豆脲酶的分離純化

      2.2.1 乙醇分級(jí)沉淀

      向粗酶液中攪拌加入預(yù)冷(-10℃)的無(wú)水乙醇至終體積分?jǐn)?shù)分別為10%、20%、30%和40%,再采用8 000 r/min冷凍離心10 min,收集上清液,測(cè)定酶活性。上清液繼續(xù)攪拌加入預(yù)冷乙醇至終體積分?jǐn)?shù)分別為40%和50%,15 000 r/min冷凍離心10 min,棄去上清液,收集沉淀,立即將沉淀溶于少量磷酸緩沖液(pH=6.8)中,4℃保存?zhèn)溆谩?/p>

      2.2.2 凝膠過(guò)濾

      脲酶分子量較大,達(dá)293 500 u。脲酶粗制品通過(guò)交聯(lián)葡聚糖Senhadex G-150層析柱。酶本身不能進(jìn)入凝膠顆粒,而其他小分子物質(zhì)及分子量較小的蛋白質(zhì)可擴(kuò)散進(jìn)入凝膠顆粒。用磷酸緩沖液(pH=6.8)作為洗脫劑,分子量大的脲酶首先被洗脫下來(lái),從而達(dá)到與其他物質(zhì)分離的目的。

      稱取葡聚糖凝膠G—150 l g,置于三角燒瓶中,加水60 mL,于沸水浴中加熱5 h(此為加熱溶脹,如在室溫溶脹需放置48 h~72 h)取出,待冷卻至室溫裝柱。加樣,控制流速7 d/min~8 d/min,流出的液體分別收集在刻度離心管中,收集量為3 mL/管,測(cè)定各管蛋白質(zhì)含量,收集合并蛋白質(zhì)含量較高的各管并測(cè)其酶活,4℃保存?zhèn)溆谩?/p>

      2.2.3 冷凍干燥

      將經(jīng)凝膠過(guò)濾后的酶液分裝在玻璃皿,裝量要均勻,蒸發(fā)表面盡量大而厚度要盡量薄一些,產(chǎn)品厚度不要超過(guò)1 cm[3]。

      將裝好的溶液速凍,溫度在-35℃左右,時(shí)間約2.0 h。凍結(jié)后的樣品須迅速進(jìn)行真空升華干燥,料溫控制在-20℃~-25℃之間,時(shí)間約為3 h~5 h。真空升華干燥后,樣品中仍含有少部分的結(jié)合水,較牢固,所以必須提高溫度,才能達(dá)到產(chǎn)品所要求的水分含量。控制料溫由-20℃升到55℃,當(dāng)料溫與板層溫度趨于一致時(shí),結(jié)束干燥[4-5]。

      真空干燥時(shí)間約為8 h~9 h,水分含量減至3%~5%左右,停止加熱,減壓,當(dāng)倉(cāng)內(nèi)真空度恢復(fù)接近大氣壓時(shí)打開倉(cāng)門,出倉(cāng),將已干燥的樣品立即進(jìn)行活性測(cè)定。

      3 pH增值法測(cè)定黃豆脲酶活性[6]

      將研細(xì)的試樣與尿素緩沖液混合,尿素在尿素酶作用下水解產(chǎn)生氨,氨溶解于水溶液中使溶液pH升高,pH變化的程度與脲酶活性大小相關(guān),因此可以用其與空白溶液的差值表示脲酶活性高低。

      取0.200 g試樣,裝入比色管中,加入10 mL尿素緩沖液,迅速蓋上蓋子,劇烈搖動(dòng)。將比色管置于(30±0.5)°C的恒溫水浴鍋中,準(zhǔn)確保持30 min。另稱取等量試樣放入另一支比色管中,加入10 mL磷酸緩沖液,迅速蓋上蓋子,將試樣與緩沖液混合均勻,置于水浴鍋保持30 min,作為空白試驗(yàn)。每隔5 min將水浴鍋中比色管中的試樣搖勻一次。每個(gè)比色管保持30 min后,從水浴鍋中取出,將上清液倒入小燒杯中。并在從水浴鍋中取出恰好5 min時(shí),用酸度計(jì)測(cè)出pH。

      計(jì)算公式:UA=pH1-pH2

      式中:UA為脲酶活性(ΔpH);pH1為樣品使尿素分解后樣液的pH;pH2為空白樣液的pH。

      4 結(jié)果與分析

      4.1 提取方法及粗酶液的添加量不同對(duì)黃豆脲酶活性的影響

      通過(guò)對(duì)3種方法提取的脲酶粗酶液活性進(jìn)行比較,結(jié)果見圖1和圖2。

      圖1 不同的提取方法對(duì)脲酶液酶活性的影響Fig.1 Effect of different extraction methods on the enzyme activity of soybean urease

      圖2 不同的添加量對(duì)脲酶酶活性的影響Fig.2 Effect of different addition amount on the enzyme activity of soybean urease

      由圖1和圖2實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:無(wú)論活性測(cè)定時(shí)添加的粗酶液量多或少,采用32%丙酮提取出的粗酶液活性始終最差;采用30%乙醇和70%甘油提取出的粗酶液活性較高;對(duì)活性測(cè)定時(shí)的粗酶液添加量從0.2 mL進(jìn)行至5倍、10倍的量的增加后,脲酶活性隨之增高,即脲酶活性與測(cè)定時(shí)粗酶液濃度成正比;另外,同等添加量的粗脲酶液以70%甘油提取出的脲酶活性略高于以30%乙醇提取的脲酶活性考,慮到二者數(shù)值相差甚微,而甘油提取的操作較繁瑣、所需試劑用量大,而乙醇提取則更為簡(jiǎn)便,故實(shí)驗(yàn)選用30%乙醇對(duì)黃豆脲酶進(jìn)行提取。

      4.2 乙醇分級(jí)沉淀過(guò)程中,不同終體積分?jǐn)?shù)對(duì)脲酶活性的影響

      4.2.1 黃豆粗酶液經(jīng)一級(jí)沉淀(8 000 r/min)后,不同終體積分?jǐn)?shù)的酶液活性

      一級(jí)沉淀(8 000 r/min)后不同終體積分?jǐn)?shù)的脲酶酶液活性,結(jié)果見圖3。

      圖3 一級(jí)沉淀(8 000 r/min)后不同終體積分?jǐn)?shù)的脲酶酶液Fig.3 Enzyme activity of soybean urease for different terminal volume after first-degree precipitation(8 000 r/min)

      由圖3可知,當(dāng)加入預(yù)冷乙醇至終體積分?jǐn)?shù)為10%時(shí),收集到的上清液酶活性達(dá)到最高。當(dāng)終體積分?jǐn)?shù)到達(dá)40%時(shí),隨著酶被沉淀下來(lái),上清液中酶活降低。故從以上四個(gè)體積分?jǐn)?shù)梯度來(lái)看,冷凍乙醇一級(jí)沉淀終體積分?jǐn)?shù)選擇在10%時(shí)收集到的上清液酶活性最佳。

      4.2.2 黃豆酶液經(jīng)二級(jí)沉淀(15 000 r/min)后,不同終體積分?jǐn)?shù)的酶液活性

      二級(jí)沉淀(15 000 r/min)后不同終體積分?jǐn)?shù)酶液活性對(duì)比結(jié)果見圖4。

      圖4 二級(jí)沉淀(15 000 r/min)后不同終體積分?jǐn)?shù)的脲酶酶液活性Fig.4 The enzyme activity of soybean urease for different terminal volume after second-degree precipitation(15 000 r/min)

      由圖4可知,經(jīng)二級(jí)沉淀(15000r/min)后,終體積分?jǐn)?shù)為40%時(shí)的酶液活性遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于終體積分?jǐn)?shù)為50%的酶液酶活。即終體積分?jǐn)?shù)達(dá)到50%時(shí)沉淀中殘留的酶很少,基本為0,故其酶活性很低。所以在冷凍乙醇的二級(jí)沉淀過(guò)程中,應(yīng)使終體積分?jǐn)?shù)為40%,以保留較多的酶。

      4.3 黃豆脲酶在分級(jí)沉淀過(guò)程中的活性變化

      大豆脲酶在各階段酶液活性對(duì)比結(jié)果見圖5。

      圖5 大豆脲酶在提取各階段的酶液活性Fig.5 The enzyme activity of soybean urease at different extraction stages

      由圖5可看出,黃豆經(jīng)30%乙醇溶液提取后得到的粗酶液活性在分級(jí)沉淀過(guò)程中最高。經(jīng)過(guò)3 000 r/min離心15 min后的粗酶液中還殘留有較多的豆殼、豆渣,而這些殘留物中或多或少存在著部分脲酶,因此所測(cè)出的粗酶液活性也就相應(yīng)的高,但雜質(zhì)含量也高;經(jīng)一級(jí)沉淀(8 000 r/min)后,黃豆酶液活性大大降低??赡苁怯捎诮?jīng)過(guò)離心,此時(shí)上清液中的豆渣殘留量大幅減少,同時(shí)加入的冷凍乙醇稀釋了酶液的濃度,故測(cè)出的上清液酶活性偏低;經(jīng)過(guò)二級(jí)沉淀(15 000 r/min)后,黃豆酶液活性比一級(jí)沉淀的略高。因?yàn)榇藭r(shí)收集到的沉淀中脲酶的含量較高,且除去上清液后冷凍乙醇對(duì)酶活的影響甚微;雖然收集的脲酶沉淀中溶入了少量的磷酸緩沖液(pH=6.8),但因其量少對(duì)酶液濃度影響不大。

      黃豆脲酶經(jīng)過(guò)葡聚糖凝膠G-150過(guò)濾后,活性再次降低,約為0.12。造成該過(guò)程酶活偏低的原因可能是此階段需加入大量磷酸緩沖液(pH=6.8)進(jìn)行洗脫,因此所收集酶液中摻雜了大量的磷酸緩沖液,從而稀釋了脲酶的濃度,故所測(cè)出的活性偏低。

      經(jīng)過(guò)冷凍干燥后,酶液中的磷酸緩沖液等水分得以去除,脲酶得到濃縮,純度進(jìn)一步提高,干黃豆脲酶的活性得到增加。

      5 結(jié)論

      本實(shí)驗(yàn)主要研究不同方法提取黃豆脲酶,并對(duì)所提取的脲酶進(jìn)行分離純化,同時(shí)測(cè)定其活性,以確定脲酶的最佳提取、分離、純化方法。實(shí)驗(yàn)利用不同溶劑從干鮮黃豆中提取出黃豆脲酶,對(duì)脲酶的酶活進(jìn)行測(cè)定,并進(jìn)行分析比較。結(jié)果表明,從操作的簡(jiǎn)便性和所提取出酶液的活性等綜合方面考慮,用30%乙醇溶液作為提取劑,要優(yōu)于70%甘油和32%丙酮溶液。脲酶粗酶液加預(yù)冷乙醇至終體積分?jǐn)?shù)為10%,以8 000 r/min冷凍離心10 min進(jìn)行一級(jí)沉淀;再將上清液加預(yù)冷乙醇至終體積分?jǐn)?shù)40%,15 000 r/min冷凍離心10 min進(jìn)行二級(jí)沉淀;收集脲酶沉淀進(jìn)行G-150凝膠過(guò)濾;最后將經(jīng)過(guò)洗脫收集到的酶液進(jìn)行冷凍干燥,即得到較純且活性相對(duì)較高的脲酶。

      [1]周東凱,劉瑩,馬學(xué)良,等.大豆脲酶的提取及其影響因素研究[J].大豆科學(xué),2008,27(4):704-707

      [2]鄒菁,喻德忠,楊先進(jìn),等.黃豆脲酶的提取及其在緩釋肥料中尿素態(tài)氮測(cè)定中的應(yīng)用[J].分析科學(xué)學(xué)報(bào),2004,20(2):178-180

      [3]邱玉華.生物分離與純化技術(shù)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2007:20-72

      [4]郭勇.酶工程[M].北京:中國(guó)輕工業(yè)出版社,1994:50-89

      [5]陳守文.酶工程[M].北京:科學(xué)出版社,2008:32-62

      [6]楊奇慧,舒璐,鐘劍鋒.不同方法測(cè)定大豆脲酶活性的比較研究[J].飼料廣角,2008,21(21):30-32

      Study on the Extraction and Enzyme Activity Determination of Urease from Soybean

      LIN Li-yun,DONG Xiao-jie,CHEN A-wei
      (Biology Department,Hanshan Normal University, Chaozhou 521000,Guangdong,China)

      Abstract:Method of extraction and activity determination for the urease from soybean was investigated and the best method to gain highest activity urease was proposed as follows:dry soybean was extracted by 30%alcohol.The urease solution was separated by Sephadex G-150 column chromatography and concentrated by vacuum freezing dry.

      Key words:soybean;urease;ethanol fractional precipitation;gel filtration;freeze dry

      DOI:10.3969/j.issn.1005-6521.2013.09.023

      韓山師范學(xué)院青年基金項(xiàng)目(LQ200811)

      林麗云(1982—),女(漢),實(shí)驗(yàn)師,碩士,主要從事生物資源高值利用。

      2012-10-08

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