王晨楓,左玉柱,裴麗華,楊 震,范京惠
(河北農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院,河北保定071001)
豬流行性腹瀉(Porcine epidemic diarrhea,PED)是由冠狀病毒科冠狀病毒屬的豬流行性腹瀉病毒(Porcine epidemic diarrhea virus,PEDV)[1]引起的以嚴(yán)重腹瀉和仔豬高致死率為主要特征的傳染病。該病首次報(bào)道于英國,隨后許多國家相繼報(bào)道[2],我國于1976年發(fā)現(xiàn)此病[3]。目前該病已成為中國甚至亞洲最常見的豬腹瀉性傳染病之一[4]。因此,PED的防控研究具有重要的意義。PED呈地方流行性,PEDV在流行的過程中為更好地適應(yīng)環(huán)境,會(huì)發(fā)生變異,不同地區(qū)的毒株有顯著差異,地區(qū)相距越遠(yuǎn)、環(huán)境差異越大的地方毒株差異越大。研究發(fā)現(xiàn),S基因相比較于其他基因更易發(fā)生變異[5-8],S蛋白是誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生中和抗體和提供免疫保護(hù)作用的主要結(jié)構(gòu)蛋白[9-10],具有高度免疫原性,此外,感染PEDV豬血清中的抗S蛋白抗體持久,可在長時(shí)間中檢測到S蛋白的抗體。這些特性使其成為豬流行性腹瀉的主要早期診斷蛋白。本研究對PEDV S基因抗原性較高的片段進(jìn)行克隆并測序,利用大腸埃希菌表達(dá)系統(tǒng)對重組S蛋白進(jìn)行表達(dá)和純化,為建立PEDV的快速、敏感、特異的免疫學(xué)檢測方法提供物質(zhì)基礎(chǔ)。
1.1.1 毒株與實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 豬流行性腹瀉病毒華北撫寧株(HB/FN)由河北農(nóng)業(yè)大學(xué)獸醫(yī)微生物實(shí)驗(yàn)室保存;6周齡~8周齡SPF級(jí)Balb/c小鼠購于北京東大實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。
1.1.2 主要試劑 Trizol為GIBCO公司產(chǎn)品;MMLV反轉(zhuǎn)錄酶、Taq DNA聚合酶、T4DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶BamHⅠ、XhoⅠ、pMD19-T載體、250bp DNA Marker、DNA Marker DL 5 000等為寶生物工程(大連)有限公司產(chǎn)品;DNA膠回收試劑盒、小量質(zhì)粒純化試劑盒、HRP標(biāo)記的羊抗兔IgG羊及抗鼠IgG為CWBIO公司產(chǎn)品;E.coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞和蛋白Marker為TransGen公司產(chǎn)品;蛋白純化試劑盒B-PER(r)6×His Spin Purification kit為PIERCE公司產(chǎn)品;TMB、完全弗氏佐劑(FCA)和不完全弗氏佐劑(FCIA)為SIGMA公司產(chǎn)品;pET-28a(+)載體、pET-32a(+)載體、pGEX-6p-1載體、Vero細(xì)胞、E.coli BL21(DE3)以及兔抗PEDV的陽性血清由河北農(nóng)業(yè)大學(xué)獸醫(yī)微生物實(shí)驗(yàn)室制備。
1.2.1 引物的設(shè)計(jì)與合成 參照GenBank中發(fā)表的PEDV中國LZC株S基因序列(登錄號(hào)EF185992.1),并且根據(jù)pMD 19-T 克隆載體的特點(diǎn),用Primer5.0軟件設(shè)計(jì)了一對引物,在上游引物引入BamHⅠ酶切位點(diǎn),下游引入XhoⅠ酶切位點(diǎn),預(yù)期擴(kuò)增產(chǎn)物大小為1 080bp。引物序列為:SP1:5′-ATGTATTCTGTTACGCCATG-3′;SP2:5′-TTATACGGTAAGTTGGGTCA-3′。
1.2.2 S基因的克隆與序列測定 豬流行性腹瀉病毒HB/FN株于Vero細(xì)胞上培養(yǎng)72h,反復(fù)凍融3次。取250μL病毒培養(yǎng)液,加入750μL Trizol抽提RNA并進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,得到的產(chǎn)物進(jìn)行PCR擴(kuò)增。將PCR產(chǎn)物與pMD19-T經(jīng)T4連接酶連接,轉(zhuǎn)化到E.coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞,挑取白色菌落,接種于氨芐LB培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng)12h后用小量質(zhì)粒提取試劑盒提取質(zhì)粒,對該質(zhì)粒進(jìn)行PCR及酶切鑒定和測序。
1.2.3 優(yōu)勢抗原表位的選取和重組表達(dá)載體的構(gòu)建 測序結(jié)束后,將基因序列登陸于GenBank。對擴(kuò)增片段進(jìn)行抗原性分析,選取抗原性較高的一段設(shè)計(jì)對應(yīng)的引物:SP1(Bam2145)5′-GGATCCATGGTTATTTCTAGTTTG -3;SP2(Xol2800)5′-CTCGAGTTAGACTAGATCTGCCA-3,擴(kuò)增得到一段655bp的基因序列,同樣連到pMD19-T載體上,命名為SFN-T。分別將SFN-T和表達(dá)載體用限制性內(nèi)切酶BamHⅠ和XhoⅠ雙酶切后回收帶有相互匹配黏性末端的SFN和表達(dá)載體,經(jīng)T4DNA連接酶連接,構(gòu)建出重組表達(dá)載體pET-28a(+)-SFN、pET-32a(+)-SFN、pGEX-6p-1-SFN。將表達(dá)載體轉(zhuǎn)化Rosetta(DE3)感受態(tài)細(xì)胞后,用小量質(zhì)粒提取試劑盒提取質(zhì)粒并進(jìn)行電泳檢測和酶切鑒定。
1.2.4 PEDV S基因的表達(dá)及表達(dá)產(chǎn)物的SDSPAGE分析 將表達(dá)載體空載體菌種分別接于LB培養(yǎng)基中,200r/min振搖培養(yǎng)12h,取500μL菌液轉(zhuǎn)接于50mL LB培養(yǎng)基中,37℃振搖培養(yǎng)至對數(shù)生長期(OD 600nm值=0.6~1.0),加入終濃度為1 mmol/L的IPTG,在20℃振搖誘導(dǎo)培養(yǎng),分別于誘導(dǎo)后0、2、3、4、5h取樣1mL,12 000r/min離心1 min,棄上清。沉淀用50μL PBS重懸后,加入等體積的上樣緩沖液,變性儀變性5min,12 000r/min離心1min取上清進(jìn)行SDS-PAGE電泳。
1.2.5 重組蛋白的純化及 Western blot分析 將在28℃條件下用終濃度為1mmoL IPTG誘導(dǎo)5h后的菌體離心,PBS重懸后進(jìn)行超聲波裂解,分別收集上清沉淀進(jìn)行SDS-PAGE檢測。按PIERCE公司的B-PER(r)6×His spin purification kit蛋白純化試劑盒的純化程序?qū)w蛋白進(jìn)行純化。將純化的蛋白進(jìn)行SDS-PAGE電泳,采用濕轉(zhuǎn)法將蛋白及Marker轉(zhuǎn)印到NC膜,將NC膜放入封閉液中37℃慢搖封閉1h,用PBST洗膜3次,每次10min;加入為1∶100的兔抗PEDV的陽性血清。室溫下輕搖1h,用PBST洗膜3次,每次10min;然后加1∶1 000稀釋的HRP標(biāo)記的羊抗兔IgG,室溫下輕搖1 h,再用PBST洗滌2次,每次10min;最后置于DAB顯色液中避光顯色15min后用蒸餾水終止反應(yīng)。
1.2.6 ELISA檢測方法的建立 取PEDV HB/FN毒株在Vero細(xì)胞上的培養(yǎng)72h的培養(yǎng)液反復(fù)凍融3次后,8 000r/min離心15min后沉淀,上清液以20 000r/min超速離心2h,把上清液濃縮,測定蛋白濃度后分裝。按常規(guī)ELISA程序進(jìn)行試驗(yàn)確定最適工作條件。
1.2.7 純化蛋白的免疫原性分析 純化的S蛋白經(jīng)SDS-PAGE和Western blot分析后,使用超微量紫外分光光度計(jì)(Micro-Spectrophotometer)測定蛋白濃度。將純化的S蛋白分別用弗氏完全佐劑和弗氏不完全佐劑按1∶1比例混合乳化,接種6周齡~8周齡SPF級(jí)Balb/c小鼠5只,并設(shè)對照組。分別于免疫前、首免后7d、14d、21d和30d時(shí)測定小鼠抗體水平以確定純化蛋白的免疫原性。
接種程序:弗氏完全佐劑首免,以后每隔7d用弗氏不完全佐劑免疫小鼠。
以加入限制性內(nèi)切酶BamHⅠ和XhoⅠ酶切位點(diǎn)的SP1/SP2為引物,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,得到的DNA于10mg/L瓊脂糖凝膠中電泳觀察結(jié)果,在約1 000 bp處出現(xiàn)一條特異的DNA帶,與預(yù)期擴(kuò)增的S基因大小相符。將此片段用試劑盒回收,回收產(chǎn)物連入pMD19-T,構(gòu)建重組質(zhì)粒。參照pMD19-T載體圖譜,用限制性內(nèi)切酶BamHⅠ和XhoⅠ對重組質(zhì)粒進(jìn)行進(jìn)行雙酶切,出現(xiàn)一條1 080bp左右的目的片段和一條2 692bp左右的pMD19-T載體片段,與預(yù)期結(jié)果相符(圖1)。將陽性重組質(zhì)粒進(jìn)行序列測序,測序結(jié)果表明,擴(kuò)增基因片段長1 080bp,與GenBank參考株的PEDV S基因進(jìn)行Blast序列比對,同源性一致。將克隆得到的S基因登陸于Gen-Bank,獲得序列號(hào)JQ862712。
對S基因進(jìn)行抗原性分析,選取抗原性較高的655bp基因作為連入表達(dá)載體的目的基因,同樣連到pMD19-T載體上,命名為SFN-T。用限制性內(nèi)切酶BamHⅠ和XhoⅠ對重組質(zhì)粒進(jìn)行進(jìn)行雙酶切,出現(xiàn)一條約655bp的目的條帶和一條約2 692bp的pMD19-T載體片段,與預(yù)期結(jié)果相符(圖2)。
圖1 重組質(zhì)粒的雙酶切鑒定Fig.1 Identification of the recombinant plasmid by double enzyme digestion
圖2 重組質(zhì)粒SFN-T的雙酶切鑒定Fig.2 Identification of the plasmid SFN-T by double enzyme digestion
用BamHⅠ、XhoⅠ對重組質(zhì)粒pET-28a(+)-SFN進(jìn)行雙酶切及PCR鑒定(圖3),分別出現(xiàn)一條5 000bp和650bp左右的條帶,說明目的基因正確插入到表達(dá)載體。將含有陽性重組載體的大腸埃希菌在IPTG誘導(dǎo)下,不同誘導(dǎo)時(shí)間的產(chǎn)物經(jīng)SDSPAGE檢測,結(jié)果在約25ku處可見表達(dá)條帶,與預(yù)期蛋白大小相一致(圖4),而未誘導(dǎo)菌和空載體菌均沒有出現(xiàn)此蛋白條帶,與誘導(dǎo)前對照菌相比,誘導(dǎo)5h時(shí)表達(dá)量最高。
圖3 重組質(zhì)粒pET-28a(+)-SFN的雙酶切鑒定Fig.3 Identification of the plasmid pET-28a(+)-SFN by double enzyme digestion
圖4 誘導(dǎo)不同時(shí)間重組菌的SDS-PAGE分析Fig.4 SDS-PAGE of the expressed recombinant protein induced in different time
收集誘導(dǎo)5h后的菌體沉淀進(jìn)行超聲波裂解,對裂解上清和裂解沉淀進(jìn)行SDS-PAGE分析可知蛋白是以包涵體形式進(jìn)行表達(dá)。對裂解沉淀進(jìn)行處理后用His標(biāo)簽純化試劑盒對菌體裂解蛋白進(jìn)行對純化。SDS-PAGE分析可知純化效果較好,洗脫峰1和2蛋白量較大(圖5)。用兔抗PEDV的陽性血清作為一抗,HRP標(biāo)記的羊抗兔IgG作為二抗,對洗脫峰2進(jìn)行Western blot檢測。結(jié)果顯示,在一抗為1∶100和二抗為1∶1 000時(shí)pet-28a(+)-SFN陽性菌表達(dá)產(chǎn)物就可出現(xiàn)大小約25ku的特異性反應(yīng)條帶(圖6),表明重組蛋白可被PEDV陽性免疫血清識(shí)別。
經(jīng)過多次試驗(yàn)分析,最終確定了ELISA檢測方法的條件:HB/FN病毒抗原經(jīng)4℃包被過夜,洗滌;用封閉液(含50mL/L犢牛血清的PBST)37℃封閉1h;加入用封閉液進(jìn)行1∶100倍稀釋的待檢血清100μL,于37℃反應(yīng)1h,洗滌;加入用封閉液進(jìn)行1∶1 000倍稀釋的二抗100μL,于37℃反應(yīng)45 min,洗滌;加入100μLTMB顯色液避光顯色15 min;加入終止液50μL后測定OD450nm值。
純化的S蛋白用SDS-PAGE和 Western blot分析后用超微量紫外分光光度計(jì)測蛋白濃度,重復(fù)5次。分別為0.409,0.413,0.391,0.399,0.402 mg/mL,取其平均值約為0.4mg/mL。將純化的S蛋白分別用弗氏完全佐劑和弗氏不完全佐劑按1∶1比例混合乳化,接種6周齡~8周齡SPF級(jí)Balb/c小鼠5只,每只250μL,對照組不接種。分別于免疫前、首免后7、14、21d時(shí)尾靜脈采血,檢測小鼠抗體(表1)。在第14天時(shí)小鼠的抗體水平明顯超過對照組,在免疫后21d血清OD450nm值達(dá)到1.0以上。
圖5 S蛋白純化的SDS-PAGE分析Fig.5 SDS-PAGE analysis of S protein purification
表1 抗體效價(jià)的ELISA檢測結(jié)果均值(OD450nm)Table 1 Average results of antibody titers detected by ELISA(OD450nm)
圖6 純化S蛋白的Western blot檢測Fig.6 Western blot detection of purified S protein
近年來,各類病毒引起的仔豬腹瀉極為流行,嚴(yán)重影響仔豬的生長發(fā)育,給養(yǎng)豬業(yè)帶來巨大的經(jīng)濟(jì)損失。中國農(nóng)科院哈爾濱獸醫(yī)研究所對豬的幾種腹瀉病進(jìn)行RT-PCR檢測的結(jié)果顯示[6],我國的養(yǎng)豬業(yè)因病毒感染而導(dǎo)致腹瀉的主要病毒中,PEDV占46%,豬輪狀病毒(Porcine rotavirus,PRV)占8%,豬傳染性胃腸炎病毒(Transmissible gastroenteritis virus,TGEV)占15%,可見PEDV儼然成為當(dāng)前國內(nèi)豬群腹瀉流行的最主要原因。PEDV感染無特效治療藥物,且PED與其他腹瀉類疾病在臨床上區(qū)別難度大。研究發(fā)現(xiàn),PEDV最早排毒出現(xiàn)在感染后2d到6d,在癥狀出現(xiàn)前即排毒,臨床癥狀消失后很長一段時(shí)間仍可在其糞便中要檢出[11]。因而,建立新型科學(xué)便捷的檢測方法可有效防止病毒傳染。
病毒可以作為抗原包被ELISA板建立檢測方法,但PEDV細(xì)胞培養(yǎng)病毒難度大,病毒產(chǎn)量低,一定程度限制了檢測抗原的大量制備[12-13],使得細(xì)胞毒臨床應(yīng)用價(jià)值低,僅局限于實(shí)驗(yàn)室檢測。目前,檢測PEDV抗體的主要診斷技術(shù)有病毒中和試驗(yàn)(VN)、免疫熒光抗體試驗(yàn)(IFA)和ELISA 等[1],但缺點(diǎn)是耗時(shí)和昂貴,膠體金試紙條作為新興的檢測方法,具有快速準(zhǔn)確方便等特點(diǎn),符合基層的需要。河北農(nóng)業(yè)大學(xué)獸醫(yī)微生物實(shí)驗(yàn)室已經(jīng)得到了華北地區(qū)的7段M基因[14],5段S基因,全部登陸于Gen-Bank。國內(nèi)其他實(shí)驗(yàn)室的PEDV M蛋白的單抗制備也在進(jìn)行中[15]。由于S基因全長4 152bp,編碼1 383個(gè)氨基酸殘基,完整的S基因擴(kuò)增和表達(dá)難度大,所以國內(nèi)外的抗原研究集中在M蛋白上,對于S蛋白和N蛋白等的研究還很少。S蛋白是暴露于病毒表面的纖突蛋白,且產(chǎn)生的抗體水平持續(xù)時(shí)間比M蛋白要長,用S蛋白作為檢測抗原更可靠。
綜上所述,對從PEDV HB/FN株中擴(kuò)增得到的S基因片段進(jìn)行克隆,選取其中一段抗原性較高的片 段,構(gòu) 建 pET-28a(+)-SFN、pET-32a(+)-SFN、pGEX-6p-1-SFN 3種表達(dá)系統(tǒng)。作為原核表達(dá)體系的優(yōu)化,表達(dá)的溫度和IPTG的濃度對表達(dá)水平影響也很大。一般在15℃~42℃之間都能獲得成功表達(dá),但表達(dá)每一種特定蛋白質(zhì)的最適溫度范圍則可能很窄,只有2℃~4℃的范圍[16]。經(jīng)分析,這3種表達(dá)載體在IPTG終濃度為1mmol/L,28℃誘導(dǎo)后都出現(xiàn)了對應(yīng)的目的條帶。表達(dá)載體pET-28a(+)-SFN表達(dá)的S蛋白量大,且分子質(zhì)量小,僅為25ku。利用pET-28a(+)載體帶有特異的6×His標(biāo)簽,對重組蛋白進(jìn)行純化得到了0.4 mg/mL的S蛋白。Western blot分析可看出純化的S蛋白可以與兔免疫PEDV血清反應(yīng)。將純化的S蛋白免疫小鼠,小鼠抗體水平在免疫后14d抗體水平明顯高于對照組,試驗(yàn)說明純化的S蛋白具有很好的免疫原性,可用作免疫蛋白進(jìn)行后續(xù)研究。利用親和層析純化帶有6×His的重組S蛋白,可以作為一種新型制備PEDV檢測抗原的方法。將制備基于S蛋白的PEDV免疫膠體金檢測試紙條,從而快速檢測PEDV抗體,用于豬流行性腹瀉病毒的早期檢測。
[1] 殷 震,劉景華.動(dòng)物病毒學(xué)[M].2版.北京:科學(xué)出版社,1997:439-440.
[2] 斯特勞B E.豬病學(xué)[M].8版.趙德明,張仲秋,沈建忠,譯.北京:中國農(nóng)業(yè)大學(xué)出版社,2000:181-187.
[3] 程慶華,牛小迎,葉成玉.青海地區(qū)豬流行性腹瀉病調(diào)查[J].青海畜牧獸醫(yī)雜志,1992,22(3):22-23.
[4] Sun D B,F(xiàn)eng L,Shi H Y,et al.Identification of two novel B cell epitopes on porcine epidemic diarrhea virus spike protein[J].Vet Microbiol,2008,131(1/2):73-81.
[5] Straw B E,Zimmerman J J,Allaire S D,等.豬病學(xué)[M].9版.趙德明,張仲秋,沈建忠,等,譯.北京:中國農(nóng)業(yè)大學(xué)出版社,2008:399-406.
[6] 甘振磊,湯德元,李春燕.豬流行性腹瀉流行特點(diǎn)及流行現(xiàn)狀的研究[J].豬業(yè)科學(xué),2010(12):24-28.
[7] 陳建飛,馮 力,時(shí)洪艷.豬流行性腹瀉病毒CH/S株N蛋白基因的遺傳變異及其原核表達(dá)[J].中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào),2007(11):177-181.
[8] 楊 敏.豬流行性腹瀉病毒結(jié)構(gòu)蛋白基因的克隆與特征分析[D].甘肅蘭州:甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué),2007.
[9] Chang S H,Bae J L,Kang T J,et al.Identification of the epitope region capable of inducing neut ralizing antibodies against the porcine epidemic diarrhea virus[J].Molecul Cell,2002,14:295-299.
[10] Kang T J,Seo J E,Kim D H,et al.Cloning and sequence analysis of the Korean strain of spike gene of porcine epidemic diarrhea virus and expression of its neut ralizing epitope in plants Protein[J].Exp Purification,2005,41:378-383.
[11] 徐國棟,李 峰,張廣峰.國內(nèi)豬流行性腹瀉防治概況[J].畜牧與獸醫(yī),2011,43(12):88-89.
[12] Kim O,Chae C.In situ hybridization for t he detection and localization of porcine epidemic diarrhea virus in t he intestinal tissues from naturally infected piglets[J].Vet Pathol,2000,37(1):62-67.
[13] 孫東波,馮 力,時(shí)洪艷,等.豬流行性腹瀉病毒分子生物學(xué)研究進(jìn)展[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2006,27(10):11-14.
[14] Fan J H,Zuo Y Z,Li J H,et al.Eterogeneity in membrane protein genes of porcine epidemic diarrhea viruses isolated in China[J].Virus Gen,2012,45(1):113-117.
[15] 張志榜,陳建飛,馮 力.等.豬流行性腹瀉病毒 M蛋白單克隆抗體的制備及鑒定[J].中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào),2011,33(7):569-570.
[16] 易立.犬細(xì)小病毒的分離鑒定、序列分析及VP2基因的融合表達(dá)[D].北京:中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院,2008.