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      GC-EI/MS同時測定水中9種N-亞硝胺

      2013-11-15 07:35:18鮮啟鳴
      中國測試 2013年4期
      關(guān)鍵詞:椰殼亞硝基亞硝胺

      李 婷,鮮啟鳴

      (污染控制與資源化研究國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,南京大學(xué)環(huán)境學(xué)院,江蘇 南京 210023)

      0 引 言

      飲用水中的N-亞硝胺不僅與人類膀胱癌的發(fā)生有關(guān)[1-2],還可能誘導(dǎo)食管和肝臟等器官產(chǎn)生腫瘤[3-4]。目前水中發(fā)現(xiàn)的N-亞硝胺包括:N-亞硝基二甲胺(NDMA)、N-亞硝基甲基乙基胺(NMEA)、N-亞硝基二乙基胺(NDEA)、N-亞硝基二丙基胺(NDPA)、N-亞硝基二丁基胺(NDBA)、N-亞硝基吡咯烷(NPyr)、N-亞硝基嗎啉(NMor)、N-亞硝基哌啶(NPip)和N-亞硝基二苯胺(NDPhA)。美國加利福尼亞州規(guī)定飲用水中NDMA、NDEA和NDPA的濃度限制均為10 ng/L[5],遠(yuǎn)低于US EPA中對常規(guī)消毒副產(chǎn)物THM4和HAA5的濃度限值:80μg/L和60μg/L。因此,檢測水中痕量的N-亞硝胺,對于評價(jià)飲用水質(zhì),進(jìn)一步研究去除水中的N-亞硝胺以提高飲用水的安全性具有重要意義。

      目前,水中N-亞硝胺的提取方法主要有固相萃?。⊿PE)和固相微萃?。⊿PME)。測定儀器主要有GC-NCD[6]、GC-NPD[7]、GC/MS[8]、GC/HRMS[9]、GC/MS/MS、LC/MS/MS[10]、LC/MS/HRMS[11]和 UPLC/MS/MS[12],一般選用CI源為離子源。對于不同的前處理,固相微萃取影響因素多、靈敏度低,僅適用廢水中N-亞硝胺的檢測[13]。對于不同的進(jìn)樣方式,采用LC進(jìn)樣時,檢測低分子量的N-亞硝胺易受雜質(zhì)的影響[10],采用GC進(jìn)樣效果較好。對于不同的檢測器,MS檢測的效果優(yōu)于 NCD和NPD[6,14],與 HRMS和 MS/MS相比也可以滿足分析要求[8-9,15]。因此本實(shí)驗(yàn)采用固相萃取、GC/MS測定9種N-亞硝胺,確定了水樣前處理和采用EI作為離子源、GC/MS檢測N-亞硝胺的條件,并應(yīng)用于測定自來水廠水樣中9種N-亞硝胺的含量。

      1 材料與方法

      1.1 儀器、材料與試劑

      儀器材料:TRACE GC ULTRa型氣相色譜與FINNIGAN Polaris Q型質(zhì)譜聯(lián)用儀(美國Thermo ELECTRON CORPORATION公司);PTA-5型色譜柱(美國 Supelco公司):30m×0.25mm×0.5μm;12管防交叉污染固相萃取裝置(美國Supelco公司);RV10 basic型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(德國IKA集團(tuán));SE812型氮吹儀(北京帥恩科技有限責(zé)任公司);SPE小柱(2g椰殼活性炭/6mL,美國Restek公司);高純氮?dú)猓暇┨鞚蓺怏w有限責(zé)任公司);MILLI-Q A10超純水機(jī)(美國Millipore公司)。

      試劑:2 000 mg/L 9種N-亞硝胺的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液(美國Supelco公司);NDMA-d6和 NDPA-d14(98%,美國 Cambridge Isotope Laboratories公司);二氯甲烷(HPLC級,美國ROE Scientific公司);甲醇(HPLC級,美國Tedia公司);無水硫酸鈉(分析純,南京化學(xué)試劑有限公司);硫代硫酸鈉(分析純,南京化學(xué)試劑有限公司);超純水(經(jīng)紫外燈照射后使用);蒸餾水。

      1.2 標(biāo)準(zhǔn)溶液

      以二氯甲烷為溶劑,配置9種N-亞硝胺及NDMA-d6的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,濃度依次為:2,5,10,20,50,100,200,500,1000μg/L,每一濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液中定量內(nèi)標(biāo)NDPA-d14的濃度均為250μg/L。

      1.3 樣品制備

      向棕色采樣瓶中預(yù)先加入濃度為100mg/L的硫代硫酸鈉,以脫去水樣中的氯。采樣時,水樣充滿采樣瓶。采樣后水樣在4℃下避光保存,在14d內(nèi)完成分析。水樣分析前NDMA-d6加標(biāo)濃度為20ng/L。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 氣質(zhì)聯(lián)用儀分析條件的優(yōu)化

      采用GC/MS分析9種N-亞硝胺,EI為電離源,高純氦氣為載氣,不分流進(jìn)樣1μL。

      實(shí)驗(yàn)就不同的進(jìn)樣口溫度(140,200,250℃)、傳輸線溫度(170,280℃)、離子源溫度(150,170,210℃)和不同的載氣流速(1.0,1.5,2.0 mL/min)對 N-亞硝胺分離及響應(yīng)的影響分別進(jìn)行了比較。結(jié)果發(fā)現(xiàn):進(jìn)樣口溫度、傳輸線溫度和離子源溫度對N-亞硝胺的分離及響應(yīng)的影響不大。從防止污染的角度考慮,最終選擇進(jìn)樣口溫度為250℃,傳輸線溫度為280℃,離子源溫度為210℃。較低的載氣流速有利于N-亞硝胺的分離,但會降低響應(yīng),因此選擇了較高的載氣流速2.0mL/min。同時,通過分析柱溫對9種N-亞硝胺分離的影響,確定了N-亞硝胺的GC/MS程序升溫條件:初始柱溫設(shè)為35℃,保持4min,以8℃/min的速度升至220℃,再以40℃/min的速度升至280℃,保持2min。采用保留時間和特征碎片離子定性,選擇離子檢測法(SIM)定量,N-亞硝胺的峰形見圖1,具體參數(shù)見表1。

      圖1 2mg/L 9種N-亞硝胺、NDMA-d6及250μg/L NDPA-d14標(biāo)準(zhǔn)溶液的色譜圖

      2.2 樣品前處理?xiàng)l件的選擇

      2.2.1 固相萃取材料的選擇與活化

      N-亞硝胺固相萃取常用的材料有椰殼活性炭、Ambersorb572及Ambersorb 572與LiChrolut EN的組合材料。不同的填充材料對不同N-亞硝胺的萃取效果不同。椰殼活性炭對NDMA的萃取回收率遠(yuǎn)高于Ambersorb 572和Ambersorb 572+LiChrolut EN,分別為 88%[9],43%[9]和 60%[16],而 NDMA 是毒性較大、研究較為廣泛的N-亞硝胺之一,因此選用椰殼活性炭作為固相萃取材料。采用椰殼活性炭萃取前,依次用6mL二氯甲烷、12mL甲醇和15mL超純水活化。

      表1 N-亞硝胺的GC/MS分析條件

      2.2.2 水樣體積及濃縮倍數(shù)的選擇

      根據(jù)已有的研究,水樣的體積一般選取0.25,0.5,1 L,由于自來水樣中N-亞硝胺的濃度低至ng/L級別,而GC/MS分析時選用的是EI源,響應(yīng)較CI源低,因此,水樣體積選為1L,以提高方法的檢出性能。

      不同N-亞硝胺在GC-EI/MS上檢出的最低濃度為2~20μg/L,因此要將水樣濃縮。已有研究一般將水樣濃縮500倍、1000倍和2500倍,即當(dāng)提取液濃縮后的濃度為20μg/L時,對應(yīng)水樣中N-亞硝胺的濃度分別為40,20,8 ng/L,而目前N-亞硝胺的濃度限值一般為10ng/L,因此應(yīng)盡量降低N-亞硝胺的檢出限。據(jù)此,水樣的濃縮倍數(shù)選為5000倍,即1L水樣應(yīng)濃縮至0.2mL。

      2.2.3 水樣的萃取、洗脫與干燥

      試驗(yàn)分別比較了5,10 mL/min的水樣萃取流速,結(jié)果N-亞硝胺的回收率無顯著差異。為縮短樣品處理時間,以10mL/min為最終萃取流速。水樣萃取后,用15mL二氯甲烷洗脫,洗脫液經(jīng)6 g無水硫酸鈉(預(yù)先用二氯甲烷清洗濕潤)干燥,再用6mL二氯甲烷淋洗無水硫酸鈉,收集流出液。

      2.2.4 提取液濃縮條件的優(yōu)化

      由于N-亞硝胺為揮發(fā)性物質(zhì),為減少在提取液濃縮時N-亞硝胺的損失,在濃縮前向提取液中加入500 μL 甲醇,同時加入 50 ng NDPA-d14混勻,采用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)在室溫下濃縮至1mL,再加入2mL二氯甲烷沖洗內(nèi)壁,在25℃水浴下緩慢氮吹至0.2mL。由于甲醇的沸點(diǎn)略高于二氯甲烷,加入甲醇可以盡量減少N-亞硝胺在氮吹時隨二氯甲烷揮發(fā)而造成的損失。旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)可以極大縮短液體濃縮的時間,21mL洗脫液濃縮至1mL只需6~8min,而3mL預(yù)濃縮液氮吹至0.2mL需要1h。實(shí)驗(yàn)表明:21mL洗脫液旋蒸發(fā)預(yù)濃縮再氮吹至0.2 mL與直接氮吹濃縮至0.2 mL相比,N-亞硝胺的回收率可以增大4%~12%。

      2.3 方法的線性、檢出限、回收率和精密度

      采用內(nèi)標(biāo)法繪制2~1 000 μg/L不同N-亞硝胺的標(biāo)準(zhǔn)曲線,r2范圍為 0.9976~0.9996,見表 2。

      表2 N-亞硝胺的標(biāo)準(zhǔn)曲線

      在選定的儀器條件下,分別用標(biāo)準(zhǔn)偏差(SD)法和信噪比(S/N)法測定N-亞硝胺的檢出限(LOD)。SD法是配制7份加標(biāo)濃度為10ng/L的水樣,測定N-亞硝胺的濃度,計(jì)算標(biāo)準(zhǔn)偏差,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)偏差計(jì)算檢出限。S/N法是取儀器響應(yīng)信噪比為3時對應(yīng)水樣中N-亞硝胺的濃度。SD法和S/N法的檢出限分別為 0.8~4.3ng/L 和 0.2~5.0ng/L,詳見表 3。

      表3 N-亞硝胺的檢出限

      實(shí)驗(yàn)分別測定了蒸餾水加標(biāo)10,50,200 ng/L N-亞硝胺的回收率,分別平行測定7次,計(jì)算相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)。結(jié)果加標(biāo)10ng/L N-亞硝胺的回收率為75%~103%,加標(biāo)50ng/L N-亞硝胺的回收率為62%~101%,加標(biāo)200 ng/L N-亞硝胺的回收率為48%~97%,詳見表4。除加標(biāo)50ng/L和200ng/L NDPhA的回收率低于70%外,其余回收率結(jié)果均在70%~130%范圍內(nèi),滿足EPA 521的要求。

      表4 N-亞硝胺蒸餾水加標(biāo)回收率

      2.4 實(shí)際樣品的測定

      選取以江水、河水、湖水為水源的3家水廠I、II、III的進(jìn)水、出水和管網(wǎng)水分別進(jìn)行測試,結(jié)果見表5。水樣NDMA-d6加標(biāo)的回收率均在70%以上。其中水廠III的進(jìn)水、出水和管網(wǎng)水中檢測的NDEA的色譜圖見圖2。

      不同水廠檢出N-亞硝胺的種類和濃度不同,表明N-亞硝胺與源水水質(zhì)以及水廠的處理工藝有關(guān)。水廠進(jìn)水中檢出的N-亞硝胺種類多、濃度較高,而管網(wǎng)水檢出的N-亞硝胺種類少且濃度低,表明飲用水廠的處理工藝可有效去除部分N-亞硝胺。

      NDMA在水廠Ⅲ的進(jìn)水、出水和管網(wǎng)水中的濃度逐漸升高,可能是源水中含有的NDMA前驅(qū)物,在水處理過程中難以去除,在管網(wǎng)中與消毒劑繼續(xù)反應(yīng)生成。NDMA在水廠III的管網(wǎng)水中濃度達(dá)45.3ng/L,低于上海報(bào)道的管網(wǎng)水濃度78.93ng/L[17]。

      圖2 水廠Ⅲ檢出的NDEA色譜圖

      表5 不同水廠不同水樣中N-亞硝胺的濃度1)

      3 結(jié)束語

      本方法采用椰殼活性炭固相萃取、建立了GC-EI/MS測定水中9種N-亞硝胺的定性定量方法,該方法靈敏度高、回收率好。能適用于自來水廠中N-亞硝胺的痕量分析。

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