胡曉嵐,湯麗倩,張 翀,朱金梁,馮乾健,陳青俊,虞英民,安 然,歐菊芳
(1.杭州澳醫(yī)保靈藥業(yè)有限公司,浙江杭州310022;2.國家輕工業(yè)食品質(zhì)量監(jiān)督檢測杭州站,浙江杭州310009)
蜂花粉為工蜂采集花粉,用唾液和花蜜混合后形成,包括工蜂采集而成的團(tuán)粒和人工粉碎而成的粉末[1]。蜂花粉中含有豐富的營養(yǎng)成分,如必需氨基酸、不飽和脂肪酸、維生素、多酚類和黃酮類、多糖等活性物質(zhì)。蜂花粉具有多種保健功能,能增強(qiáng)機(jī)體免疫力,防止動脈硬化、高血脂、高血壓、靜脈曲張等疾?。?]。蜂花粉的生物活性與其含有的豐富的黃酮類成分有關(guān)[3]。對蜂花粉的總黃酮含量進(jìn)行檢測,目前主要的方法有:電導(dǎo)滴定法[4]、毛細(xì)管電泳法[5]、液相色譜法[6]、比色法[7]、分光光度法[8]。本文以分光光度法測定蜂花粉中的總黃酮含量,以探索國產(chǎn)不同產(chǎn)地、不同品種蜂花粉中總黃酮含量的差別。
在2008~2011年期間采集的79份不同產(chǎn)地、不同品種的蜂花粉。采集的花粉保存于-18℃的冷庫中;無水乙醇、亞硝酸鈉、硝酸鋁、氫氧化鈉 分析純;蘆丁對照品 中國藥品生物制品檢定所,純度92.5%。
UV2550紫外分光光度計 蘇州島公司;FA2004電子天平 上海電子天平廠。
1.2.1 試液制備 精確稱取蜂花粉樣品1~3g(精確至0.0001g),加70%乙醇40m L,加熱回流2h提取樣品中的黃酮,冷卻,濾過,將濾液置于50m L容量瓶中,以70%乙醇洗滌殘渣,將洗滌液并入容量瓶,用70%乙醇定容至刻度,搖勻,從中精確吸取2m L,置于10m L容量瓶,用70%乙醇稀釋至刻度,搖勻,待測。
1.2.2 建立標(biāo)準(zhǔn)曲線 精密量取200μg/m L蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品使用液0、1、2、3、4、5、6m L,分別置于 25m L 容量瓶中,各加水至6.0m L,加5%亞硝酸鈉溶液和10%硝酸鋁溶液各1m L,搖勻,放置6分鐘,加氫氧化鈉試液10m L,加水至刻度,搖勻,放置15min,510nm作為測定波長,分光光度法測定標(biāo)準(zhǔn)溶液的吸光值,以吸光值為縱坐標(biāo),以標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.3 試液測定 精確量取按“1.2.1”所示方法制備的試液2m L,置于25m L容量瓶中,實驗方法同1.2.2,將結(jié)果帶入標(biāo)準(zhǔn)曲線,求得試液中的黃酮濃度。
1.2.4 分析方法的確定
1.2.4.1 波長的確定 黃酮與亞硝酸鈉和硝酸鋁反應(yīng)形成絡(luò)合物,在可見光區(qū)具有吸收峰[8]。本文按照“1.2.2”所述的方法使標(biāo)準(zhǔn)溶液顯色,在400~600nm的波長范圍內(nèi)對溶液進(jìn)行掃描。
1.2.4.2 黃酮提取方法 精確稱取油菜花粉樣品1~3g(精確至0.0001g),分別采用“70%乙醇,加熱回流2h”、“70%乙醇,加熱回流4h”、“無水乙醇,加熱回流2h”和“無水乙醇,超聲30min”4種方法進(jìn)行提取,加熱回流的溫度為90℃,超聲波功率為100W,再按前述方法對提取液中的黃酮含量進(jìn)行測定。
表1 黃酮的不同提取方法Table 1 Protocols for extracting of flavones
1.2.4.3 絡(luò)合物穩(wěn)定性 按“1.2.1”配制樣品溶液,按照“1.2.3”所述的方法使溶液顯色,經(jīng)過 5、10、15、20、30m in的放置后分別測定溶液的吸光值。
1.2.5 方法精密度 選擇油菜花蜂花粉和玉米花蜂花粉,分別對其中的黃酮含量進(jìn)行測定,以6次測定結(jié)果的標(biāo)準(zhǔn)誤來衡量測定方法的精密度。
1.2.6 方法回收率 選擇油菜花蜂花粉,分別按本底值1.5、1.0、0.8倍的量加入蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品,每一加量重復(fù)3次,分別測定提取液中的黃酮含量,根據(jù)測定結(jié)果計算回收率。
2.1.1 測定波長 實驗結(jié)果表明,絡(luò)合反應(yīng)的生成物在波長510.40nm處吸光值最大,故本實驗選定510nm作為測定波長。
圖1 絡(luò)合物紫外掃描圖Fig.1 UV scan of the conjugate
2.1.2 黃酮提取方法 從表2可以看出,不同方法對黃酮提取率高低影響順序依次為:4>1>3>2,但是“方法4”的提取液有時會含有沉淀。綜合考慮,本文最終選擇“方法1”作為整個實驗的提取方法。
表2 與不同提取方法相對應(yīng)的黃酮含量Table 2 Content of flavones extracted by different protocols
2.1.3 絡(luò)合物穩(wěn)定性 從表3中可以看出,絡(luò)合物在15m in內(nèi)較穩(wěn)定,故將放置時間定為15m in。
表3 絡(luò)合物穩(wěn)定性實驗結(jié)果Table 3 Results of the test on stability of the complex
2.1.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線 從圖2中可以看出,蘆丁在0.2~1.2mg質(zhì)量范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,線性相關(guān)方程:y=0.525x-0.00771,R2=0.9995。
圖2 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線圖Fig.2 Standard curve of rutin
2.1.5 精密度 6次測定的結(jié)果表明油菜花蜂花粉和玉米花蜂花粉中黃酮含量的平均值分別為2.79%和0.50%;測定精密度分別為1.53%和2.36%。
表4 精密度測定結(jié)果Table 4 Results of the precision test
2.1.6 回收率 3個添加水平共9次測試的結(jié)果顯示,蘆丁在油菜花蜂花粉中的添加回收率介于94.5%~98.0%,平均回收率96.7%。
按“1.2”所述方法檢測2008~2011年收集的全國79份15個品種蜂花粉樣品,檢測結(jié)果見表6。
表5 回收率實驗結(jié)果(70%回流2h)Table 5 Results of the test on recovery
表6 不同產(chǎn)地、不同品種蜂花粉總黃酮含量測定結(jié)果Table 6 Results of the test on content of flavones in bee pollens of different varieties collected from different regions
續(xù)表
從表6中可以看出,在所有79個批次樣品中,總黃酮含量最高的來自油菜花蜂花粉(3.49%),含量最低的來自玉米花蜂花粉(0.49%)。
以品種為分析目標(biāo),對所有樣品的總黃酮含量做差異顯著性分析,發(fā)現(xiàn)含量最高的是油菜花蜂花粉(平均達(dá)到3.15%),其次是玫瑰花蜂花粉和五味子花蜂花粉(平均達(dá)到2.20%和2.04%),15個品種中總黃酮含量最低的是芝麻花蜂花粉(平均為0.52%)(表7)。
對于油菜花蜂花粉,在所涉及的6個省區(qū)內(nèi),采自青海、新疆、浙江、內(nèi)蒙古、安徽5個省區(qū)的樣品,其總黃酮含量無明顯差異,但它們均明顯高于采自甘肅省的樣品(表8)。同樣對于油菜花蜂花粉,在所涉及的4個年份內(nèi),2008~2010年采集的樣品,其總黃酮含量無明顯差異,但它們均明顯高于2011年采集的樣品(表9)。以上統(tǒng)計結(jié)果表明產(chǎn)地和采集年份對油菜花蜂花粉總黃酮含量有影響,但影響程度有限。
表7 不同品種蜂花粉總黃酮含量Table 7 Content of flavones in bee pollens of different varieties
表8 不同省區(qū)油菜花蜂花粉總黃酮含量Table 8 Content of flavones in bee pollens collected from cole in different provinces
表9 不同年份油菜花蜂花粉總黃酮含量Table 9 Content of flavones in bee pollens collected from cole in different years
如果不考慮品種和采集年份,總黃酮含量最高的蜂花粉是產(chǎn)自青海的(平均達(dá)到2.91%),其次是產(chǎn)自新疆的(平均達(dá)到2.55%),再其次是產(chǎn)自廣東的(平均達(dá)到1.93%),產(chǎn)自黑龍江和海南的蜂花粉總黃酮含量最低(兩者均為0.64%)。以產(chǎn)地為目標(biāo),對所有樣品的總黃酮含量做差異顯著性分析,發(fā)現(xiàn)盡管差異幅度較大,但大多并無統(tǒng)計學(xué)意義(表10)。
3.1 魏永生等[9]比較了索氏提取法、熱回流法、冷浸法,比較了不同提取法對于蜂花粉總黃酮的提取效果。本文對熱回流法和超聲提取法的提取率同樣做了比較。從減少有毒溶劑的使用和便于溶劑回收的角度,兩種提取均用乙醇作為溶劑,研究結(jié)果表明在預(yù)設(shè)的提取流程下超聲法對總黃酮的提取率并不低,甚至略高于熱回流提取法,但超聲法在提取時往往會產(chǎn)生沉淀而熱回流法的提取液可以直接用于測定,結(jié)合時效性方面的考慮,本文最終確認(rèn)“70%乙醇,加熱回流2h”是提取的最佳選擇。
表10 不同產(chǎn)地蜂花粉總黃酮含量Table 10 Content of flavones in bee pollens from different regions
3.2 本文對2008~2011年間采自23個的不同省份的15個品種共79個批次的國產(chǎn)蜂花粉中總黃酮含量進(jìn)行了測定。從品種上看,總黃酮含量最高的當(dāng)屬油菜花蜂花粉(平均達(dá)到3.15%)。張紅城等[10]和董捷等[11]分別對6個和8個品種的蜂花粉的總黃酮含量做了比較,其結(jié)果均顯示油菜花蜂花粉是總黃酮含量最高的品種。在這一點(diǎn)上,本文的研究結(jié)果與前人完全一致。按照總黃酮含量高低,本文所涉及的15個品種的排列順序為:油菜花>玫瑰花≥五味子花>雜花≥虞美人花≥向日葵花=蠶豆花≥子瓜花≥黨參花≥蕎麥花≥荷花≥玉米花=茶花≥南瓜≥芝麻花。同樣地,按照總黃酮含量高低,張紅城等[10]的6個品種的排列順序為:油菜>杏花>蕎麥>茶花>向日葵花 >荷花;董捷等[11]的8個品種的排列順序為:油菜>五味子>杏花>蕎麥>玫瑰>茶花>向日葵花>荷花。對照本文和前人的研究結(jié)果,可以認(rèn)定油菜花和五味子花的蜂花粉屬于總黃酮含量較高的品種,而茶花和荷花的蜂花粉總黃酮含量往往較低。至于玫瑰花、向日葵花和蕎麥花,本文的排列順序與前人的有所不同。本文所涉及的品種相對較多,除了在前人已經(jīng)比較過的油菜、玫瑰、五味子、向日葵花、蕎麥花、荷花、茶花等7個品種之外,本文還對虞美人、蠶豆、子瓜、黨參、玉米、南瓜、芝麻等7個品種做了比較。
3.3 本文以油菜花蜂花粉為例,分析了產(chǎn)地和采集年份對同一品種蜂花粉總黃酮含量的影響。從分析結(jié)果可以看出,蜂花粉的總黃酮含量在同一品種內(nèi)是相對穩(wěn)定,產(chǎn)地和年份因素對總黃酮含量檢測結(jié)果均有影響,但影響程度有限。這一結(jié)論建立在2008~2011年從6省區(qū)采集的15份樣品的分析上,因此具有一定的可信度。
3.4 產(chǎn)地因素對蜂花粉總黃酮含量究竟有無實質(zhì)影響,是人們一直以來感興趣的一個問題,如果不考慮品種和采集年份,正如表8所顯示的那樣,總黃酮含量盡管看似差異較大,但這種差異大多并無統(tǒng)計學(xué)意義,這是主要因為同一省區(qū)的蜂花粉中往往包含總黃酮含量差別較大的若干不同品種。更為精確的分析只有建立在更大樣品量的基礎(chǔ)上,因此今后須進(jìn)一步加大各省區(qū)的樣品采集量,這樣才能有效解答上述疑問。本文通過對不同年份從全國各省區(qū)采集的不同品種的79個批次的蜂花粉樣品的檢測,使人們對國內(nèi)市場上蜂花粉品種黃酮含量分布情況有了初步了解,為蜂花粉資源的合理開發(fā)提供了科學(xué)依據(jù)。
[1]蜜蜂產(chǎn)品術(shù)語.GB/T20573-2006[S].
[2]王開發(fā).花粉的功能與應(yīng)用[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2004.
[3]王開發(fā).花粉營養(yǎng)價值與食療[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2008.
[4]王永寧,盧挺,石玉平,等.油菜蜂花粉浸取液中黃酮含量的電導(dǎo)滴定測定[J].分析實驗室,2003,22(5):82-84.
[5]王小艷,王洪倫,盛筱,等.毛細(xì)管區(qū)帶電泳法測定油菜蜂花粉中黃酮苷元含量[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā),2008,20(6):1043-1047.
[6]鄭敏燕,魏永生.油菜蜂花粉黃酮含量的HPLC測定[J].分析測試學(xué)報,2004,23(2):95-97.
[7]董吉林,申瑞玲.油菜蜂花粉多糖和黃酮的提取研究[J].現(xiàn)代食品科技,2008,24(10):95-97.
[8]龔葉南.分光光度法測定蜂花粉中的總黃酮[J].河南大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2009,28(2):121-124.
[9]魏永生,李玉紅,李甲毅.蕎麥蜂花粉總黃酮含量測定及提取工藝研究[J].咸陽師范學(xué)院學(xué)報,2007,22(6):31-34.
[10]張紅城,董捷,李慧,等.六種蜂花粉多酚和黃酮類物質(zhì)含量測定及抗氧化性的研究[J].食品科學(xué),2007,28(9):500-504.
[11]董捷,張紅城,李潔,等.八種蜂花粉醇提物中總多酚和總黃酮含量測定[J].食品工業(yè)科技,2008,29(11):80-82.