李 霜， 王圓圓， 劉麗榮， 石 磊， 石明雋， 肖 瑛， 張國忠， 郭 兵

(貴陽醫(yī)學(xué)院病理生理學(xué)教研室，貴州 貴陽550004)

糖尿病(diabetes mellitus，DM)作為一組遺傳和環(huán)境相互作用引起的代謝綜合征，患病率正逐年上升。糖尿病腎病(diabetic nephropathy，DN)已成為導(dǎo)致終末期腎衰竭及DM 病死率增加的重要原因，但DN 的發(fā)生機(jī)制仍未充分闡明。近來研究表明，黏著斑激酶(focal adhesion kinase，F(xiàn)AK)作為一種非受體型蛋白酪氨酸激酶，在肝纖維化及心肌纖維化組織中表達(dá)增多和磷酸化增強(qiáng)，而FAK 的內(nèi)源性抑制因子FRNK(FAK-related non-kinase)的表達(dá)卻減少，提示FAK 在臟器纖維化過程中可能發(fā)揮重要作用［1-3］。但在2 型糖尿病(the type 2 diabetes mellitus，T2DM)中，腎組織中FAK 蛋白的表達(dá)變化及意義仍不清楚。我們前期研究發(fā)現(xiàn)，DM 大鼠血糖、血肌酐、血甘油三酯、血總膽固醇及24 h 尿蛋白量較對照組均顯著升高，但血清胰島素水平與對照組相比無明顯差異;HE 染色下見正常組腎小球形態(tài)完整，輪廓清晰，腎小管未見異常;DM 16 周組大鼠腎小球體積增大和系膜基質(zhì)增多，腎小管管腔擴(kuò)張，上皮細(xì)胞脫落，部分腎小管基底膜不完整，間質(zhì)可見炎癥細(xì)胞浸潤［4］。為此，本研究采用高脂高糖飲食加小劑量鏈脲佐菌素(streptozocin，STZ)腹腔注射的方法，復(fù)制大鼠T2DM 模型，并觀察FAK 在T2DM 大鼠腎組織中的動(dòng)態(tài)變化，探討FAK 在DN 發(fā)病機(jī)制中的作用及可能機(jī)制。

材 料 和 方 法

1 材料

1.1 動(dòng)物 SD 大鼠30 只，雄性，體重(200 ±20)g，由貴陽醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供，清潔級。

1.2 主要試劑 STZ 購自Sigma;纖維連接蛋白(fibronectin，F(xiàn)N)兔多克隆抗體、FAK 兔多克隆抗體、轉(zhuǎn)化生長因子β1(transforming growth factor beta 1，TGF-β1)兔多克隆抗體和細(xì)胞外信號調(diào)節(jié)激酶1/2(extracellular signal-regulated kinase 1/2，ERK1/2)兔多克隆抗體購自武漢博士德公司;p-FAK(Tyr397)兔多克隆抗體購自博奧森生物技術(shù)有限公司;p-ERK1/2 兔多克隆抗體購自Santa Cruz;總RNA 提取試劑盒、2 ×Taq PCR MasterMix、1 500 bp DNA Marker 購自天根生化科技有限公司;RevertAidTMFirst Strand cDNA Synthesis Kit(Fermentas);胰島素測定試劑盒購自天津九鼎生物醫(yī)學(xué)工程有限公司;考馬斯亮藍(lán)測定試劑盒購自南京建成生物工程研究所;血糖、血肌酐、甘油三酯和總膽固醇測定試劑盒購自四川邁克科技有限公司;FAK 及β-actin 引物均由大連寶生物工程技術(shù)有限公司合成。兩步法免疫組化檢測試劑購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;Western 印跡用PVDF 膜和Whatman 3 mm 濾紙購自Millipor;超敏ECL 化學(xué)發(fā)光試劑盒購自碧云天生物研究所。

1.3 主要器材 強(qiáng)生穩(wěn)步倍加型血糖儀(強(qiáng)生公司)，超低溫冰箱(Sanyo)，高速低溫離心機(jī)(Beckman)，電泳系統(tǒng)及電轉(zhuǎn)移裝置(Amersham)，凝膠成像系統(tǒng)(Bio-Rad)，梯度PCR 擴(kuò)增儀(Bio-Rad)，超凈工作臺(tái)(蘇州凈化設(shè)備有限公司)，瞬時(shí)離心機(jī)(上海捷瑞公司)，Olympus 圖象采集系統(tǒng)(Olympus)。

2 方法

2.1 糖尿病模型的制備和分組 將SD 大鼠隨機(jī)分成正常對照組(NC，n =6)和高脂高糖組(HG，n =24)。大鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1 周后，HG 組以高脂高糖飼料喂養(yǎng)，飼料組成如下:67%常規(guī)飼料、20% 蔗糖、10%豬油、2%膽固醇、1%蛋黃。喂養(yǎng)12 周時(shí)，稱體重，測空腹血糖，尾動(dòng)脈取血測血清胰島素水平;HG組飼養(yǎng)12 周后又隨機(jī)分為高脂高糖對照組(HC，n=6)和糖尿病組(DM，n =18)，DM 組大鼠按30 mg/kg劑量腹腔注射STZ (以pH 4.5、0.01 mol/L 無菌檸檬酸緩沖液配成1%濃度)。72 h 后測空腹血糖，血糖≥13.8 mmol/L 作為2 型糖尿病大鼠，18 只大鼠全部建模成功，成模大鼠隨機(jī)分為糖尿病8 周組(DM8，n =6)、12 周組(DM12，n =6)和16 周組(DM16，n =6)。NC 組以常規(guī)飼料喂養(yǎng)，各組大鼠均自由飲水。

2.2 動(dòng)物標(biāo)本的采集 分別于實(shí)驗(yàn)的第20 周、24周和28 周(即糖尿病8、12 和16 周)處死DM8、DM12 和DM16 各組大鼠，于第28 周處死NC 和HC組大鼠。處死前1 d 代謝籠收集24 h 尿液，記錄尿量。禁食6 ～8 h，麻醉后稱體重，股動(dòng)脈放血、收集血液，4 ℃離心，分離血清，-20 ℃保存;處死大鼠，開腹取腎臟，稱重，一側(cè)腎臟固定于4%多聚甲醛供制作石蠟切片用，另一側(cè)腎臟于-80 ℃保存供Western blotting 和RT-PCR 檢測。

2.3 免疫組化染色 采用免疫組化SP 法檢測TGFβ1(1 ∶50)、FN(1 ∶100)、FAK(1 ∶50)、ERK1/2(1∶100)和p-ERK1/2(1∶100)在各組大鼠腎組織的分布和表達(dá)，PBS 作為陰性對照，DAB 顯色，蘇木素復(fù)染。蛋白陽性表達(dá)計(jì)數(shù)方法參考本實(shí)驗(yàn)室既往的研究［6］，計(jì)數(shù)10 個(gè)高倍視野(400 倍)，取均值。

2.4 Western blotting 檢測 取-80 ℃保存的各組大鼠腎皮質(zhì)，每組100 mg，分別加入組織蛋白提取液后勻漿、離心、取上清，用BCA 試劑盒(碧云天)測定各組蛋白質(zhì)濃度，按所測得濃度計(jì)算每泳道所需體積，加入加樣緩沖液煮沸10 min。經(jīng)10% SDSPAGE 凝膠電泳分離，再轉(zhuǎn)移至PVDF 膜上，脫脂奶粉室溫封閉1 h，加入FAK、p-FAK (Tyr397)或β-actinⅠ抗，工作濃度分別為1∶150、1∶100 和1∶300，4℃孵育過夜。次日用TBST 洗膜后，加入相應(yīng)的辣根過氧化物酶標(biāo)記的Ⅱ抗(濃度均為1∶5 000)室溫孵育1 h，ECL 化學(xué)發(fā)光試劑，暗室曝光，Bio-Rad 凝膠成像系統(tǒng)掃描膠片，Quantity One 軟件分析各條帶的面積和灰度值，兩者乘積為積分灰度值，每個(gè)樣本重復(fù)操作3 次。以同一張膠上 FAK 和 p-FAK(Tyr397)與相應(yīng)的β-actin 條帶所測積分灰度值的比值，即相對積分灰度值對FAK 和p-FAK (Tyr397)蛋白進(jìn)行半定量。

2.5 RT-PCR 檢測腎組織FAK mRNA 的表達(dá)

TRIzol一步法提取大鼠腎皮質(zhì)的總RNA，核酸蛋白儀測RNA 的濃度和純度(A260/A280均在1.8 ～2.0 之間)，取4 μg 腎組織總RNA 按RevertAidTMFirst Strand cDNA Synthesis Kit 說明進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄，合成cDNA，-20 ℃保存?zhèn)溆?。以cDNA 為模板進(jìn)行FAK和β-actin(作為內(nèi)參照)共同擴(kuò)增。FAK 上游引物5'-ACTTGGACGCTGTATTGGAG-3'，下游引物5'-CCTGTTGCCTTTCTGGATAC-3'，產(chǎn)物985 bp;β-actin 上游引物5’-GAAATCGTGCGTGACATTAAG-3’，下游引物5’-CTAGAAGCATTTGCGGTGGA-3’，產(chǎn)物490 bp。擴(kuò)增條件:94 ℃預(yù)變性5 min，進(jìn)入循環(huán):94 ℃45 s，59.2 ℃45 s，72 ℃60 s，35 個(gè)循環(huán)后，再72 ℃10 min。反應(yīng)產(chǎn)物做1. 5% 瓊脂糖凝膠電泳，Bio-Rad 凝膠成像系統(tǒng)掃描，應(yīng)用Quantity One 軟件將各FAK 條帶的吸光度值與β-actin 條帶吸光度值的比值作為FAK 相對表達(dá)水平參數(shù)，進(jìn)行半定量分析。

3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean ± SD )表示，采用SPSS19.0 軟件處理，多組數(shù)據(jù)差異比較用ANOVA分析，兩組間數(shù)據(jù)相關(guān)性比較用直線相關(guān)分析。以P ＜0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

結(jié) 果

1 大鼠一般情況

實(shí)驗(yàn)過程中，糖尿病大鼠呈現(xiàn)明顯多尿、多飲、多食，生長緩慢，血糖維持在較高水平(≥13. 8 mmol/L)。單純高脂高糖組大鼠無上述表現(xiàn)，體重增長顯著，血糖無明顯升高。

2 免疫組化結(jié)果

各組大鼠腎小管上皮細(xì)胞胞漿均可見FAK 蛋白表達(dá)，DM12 和DM16 組FAK 蛋白表達(dá)較NC 組和HC 組顯著增加(P ＜0.05)，見圖1。

TGF-β1在NC 和HC 組腎組織幾乎無表達(dá)。DM8 組腎小管上皮細(xì)胞TGF-β1表達(dá)較NC 組和HC組顯著增多(P ＜0.05)，表達(dá)隨病程進(jìn)展明顯升高且持續(xù)高表達(dá)至DM16 組，見圖1。

NC 和HC 組ERK1/2 在腎小管上皮細(xì)胞胞漿內(nèi)表達(dá)，且有少量p-ERK1/2 表達(dá)，并可見核表達(dá)。隨糖尿病進(jìn)展ERK1/2 表達(dá)無明顯增加，但DM8 組p-ERK1/2 在腎小管上皮細(xì)胞胞漿內(nèi)的表達(dá)較NC 組和HC 組顯著增多(P ＜0.05)，且核內(nèi)表達(dá)也明顯增多，并持續(xù)高表達(dá)到糖尿病形成后16 周，見圖1。

各組大鼠腎組織中FN 沿腎小管基底膜呈線性分布。在NC 和HC 組腎組織中，F(xiàn)N 可見少量表達(dá)。DM8 組FN 表達(dá)增多且較NC 組和HC 組明顯增加(P ＜0.05)，隨病程發(fā)展逐漸增多，至DM16 組達(dá)到高峰，見圖1。

3 Western blotting 結(jié)果

NC 組和HC 組大鼠腎組織有FAK 總蛋白和p-FAK(Tyr397)表達(dá)，兩組無顯著差異，DM8 組FAK和p-FAK(Tyr397)表達(dá)無明顯增加(P ＞0. 05)，DM12 組和DM16 組FAK 和p-FAK(Tyr397)表達(dá)較NC 組、HC 組及DM8 組顯著增多(P ＜0.05)，且p-FAK(Tyr397)與FAK 總蛋白表達(dá)趨勢一致，見圖2。

4 RT-PCR 結(jié)果

NC 和HC 組有FAK mRNA 表達(dá)，DM8 組無明顯增加，DM12 和DM16 組FAK mRNA 比NC、HC 組及DM8 組表達(dá)明顯增加(P ＜0.05)，見圖3。

5 相關(guān)性分析

腎皮質(zhì)中FAK 與TGF-β1、p-ERK1/2、FN 陽性蛋白表達(dá)隨DM 病情進(jìn)展呈增多趨勢，相關(guān)性分析結(jié)果顯示，DM12 和DM16 組FAK 與TGF-β1、p-ERK1/2、FN 呈顯著正相關(guān)(r 值分別為0. 792、0. 558 和0.593，P ＜0.01)。

Figure 1. Expression of FAK，TGF-β1，ERK1/2，p-ERK1/2 and FN proteins in renal tubular cells of rats in each group (immunohistochemical staining，×400). Mean±SD. * P ＜0.05 vs NC group;△P ＜0.05 vs HC group.圖1 FAK、TGF-β1、ERK1/2、p-ERK1/2 和FN 蛋白在各組大鼠腎小管上皮細(xì)胞中的表達(dá)情況

Figure 2. The expression levels of total FAK and p-FAK(Tyr397)in rat kidney tissues in each group detected by Western blotting. Mean ± SD. n = 6. * P ＜0.05 vs NC group;△P ＜0.05 vs HC group.圖2 Western blotting 檢測總FAK 和p-FAK(Tyr397)蛋白在各組大鼠腎組織中的表達(dá)

Figure 3. Expression of FAK mRNA in rat renal cortex in each group detected by RT-PCR. Mean ± SD. n =6. * P ＜0.05 vs NC group;△P ＜0.05 vs HC group.圖3 RT-PCR 檢測各組大鼠腎皮質(zhì)FAK mRNA 的表達(dá)

討 論

本實(shí)驗(yàn)采用高脂高糖飲食加小劑量STZ 的方法復(fù)制2 型糖尿病動(dòng)物模型，DN 發(fā)展為慢性腎衰竭的最終通路是腎小球硬化及腎小管-間質(zhì)纖維化，但其發(fā)病機(jī)制尚未充分闡明。TGF-β1是目前已知的致腎纖維化作用最強(qiáng)的多肽因子之一，它能誘導(dǎo)腎臟固有細(xì)胞表型轉(zhuǎn)化及促進(jìn)胞外基質(zhì)(extracellular matrix，ECM)增生，在腎小管-間質(zhì)纖維化進(jìn)行性發(fā)展中起關(guān)鍵作用。TGF-β1主要通過激活Smad 通路發(fā)揮其致纖維化效應(yīng)［5-6］，同時(shí)也可激活其它非Smad通路來促進(jìn)纖維化病變的發(fā)生發(fā)展。黏著斑激酶FAK 是一種胞質(zhì)非受體酪氨酸激酶，有多個(gè)酪氨酸磷酸化位點(diǎn)，其中Tyr397 是其自主磷酸化位點(diǎn)，不同的酪氨酸位點(diǎn)的磷酸化可為其它信號轉(zhuǎn)導(dǎo)分子提供位點(diǎn)［7］。體外研究表明，TGF-β1刺激人腎小管上皮細(xì)胞HK-2 能呈時(shí)間依賴性促進(jìn)FAK 總蛋白及p-FAK(Tyr397)的表達(dá)，且p-FAK(Tyr397)表達(dá)趨勢與FAK 相同［8-9］，Shikano 等［10］也發(fā)現(xiàn)1 型糖尿病大鼠腎小球內(nèi)磷酸化FAK 與樁蛋白(paxillin，PL)表達(dá)增多，胰島素治療后，腎小球FAK 與PL 的表達(dá)明顯減少，提示FAK 可能與糖尿病的發(fā)病有關(guān)。本研究結(jié)果顯示，T2DM 大鼠成模后12 周腎小管上皮細(xì)胞中FAK 蛋白及mRNA 表達(dá)增加(P ＜0.05)且持續(xù)到16 周，p-FAK(Tyr397)表達(dá)趨勢與總FAK 一致，同時(shí)DM12、DM16 組的腎小管上皮細(xì)胞中FAK 蛋白表達(dá)量與TGF-β1呈顯著正相關(guān)(P ＜0.01)，提示FAK 可能參與TGF-β1致腎小管間質(zhì)纖維化的過程。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)，F(xiàn)AK 可能參與TGF-β1介導(dǎo)的腎小管上皮細(xì)胞向間質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)分化(epithelial-mesenchymal transition，EMT)的發(fā)生和發(fā)展［9］，促進(jìn)α-平滑肌肌動(dòng)蛋白(α-smooth muscle actin，α-SMA)表達(dá)增多、E-鈣粘蛋白(E-cadherin)減少，使腎小管上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)分化成為肌成纖維細(xì)胞從而介導(dǎo)腎間質(zhì)纖維化。Ding等［11］用TGF-β1刺激人及大鼠肺成纖維細(xì)胞后促使FAK、p-FAK(Tyr397)和α-SMA 表達(dá)增多，而用FAK的內(nèi)源性抑制因子FRNK 轉(zhuǎn)染肺成纖維細(xì)胞后，α-SMA 的蛋白表達(dá)量下降了約85%。本研究結(jié)果亦發(fā)現(xiàn)T2DM 大鼠腎組織的FAK 隨著病程進(jìn)展在蛋白和轉(zhuǎn)錄水平表達(dá)均明顯增多的同時(shí)，腎間質(zhì)ECM 主要成分FN 表達(dá)顯著增多，提示在DN 病變過程中FAK 的表達(dá)增加，促進(jìn)了TGF-β1介導(dǎo)腎間質(zhì)ECM的沉積，使DN 的纖維化病變加重。

但TGF-β1究竟通過何種機(jī)制誘導(dǎo)了FAK 表達(dá)增加，目前尚不清楚。Walsh 等［12］用TGF-β1刺激IEC-6 細(xì)胞(大鼠空腸細(xì)胞)和Caco-2BBE 細(xì)胞(人結(jié)腸細(xì)胞)導(dǎo)致FAK 及p-FAK(Tyr397)的蛋白表達(dá)量增多后，運(yùn)用siRNA 技術(shù)降低了Smad2 蛋白的表達(dá)，使TGF-β1促進(jìn)FAK 蛋白總量表達(dá)增多的效應(yīng)被阻斷。同樣使用p38 MAPK siRNA 降低p38MAPK蛋白的表達(dá)也抑制了TGF-β1誘導(dǎo)的FAK 蛋白總量表達(dá)增多的效應(yīng)。這提示Smad 和p38 MAPK 信號通路在TGF-β1誘導(dǎo)的FAK 蛋白總量增加的過程中起到很重要的作用。而在2 種細(xì)胞類型的培養(yǎng)液中同時(shí)添加p38 MAPK 阻滯劑SB203580，Smad2/3 依然能被TGF-β1最大程度活化，提示p38 MAPK 并不是Smad 信號通路的上游分子，p38 MAPK 與Smad信號通路是獨(dú)立的。推測TGF-β1通過p38 MAPK與Smad 信號通路促進(jìn)FAK 蛋白的表達(dá)。有研究表明，當(dāng)FAK 活化后可進(jìn)入Ras 途徑激活位于胞漿內(nèi)的ERK1/2，被活化的ERK1/2(p-ERK1/2)迅速進(jìn)入胞核內(nèi)，可以使轉(zhuǎn)錄因子如AP-1 磷酸化進(jìn)而增強(qiáng)FN 基因的轉(zhuǎn)錄活性，最終導(dǎo)致FN 的產(chǎn)生［13-14］。在本實(shí)驗(yàn)中，隨著FAK 及其磷酸化水平的上調(diào)，雖然ERK1/2 總蛋白在NC、HC 和DM 各組大鼠腎小管上皮細(xì)胞中的表達(dá)無顯著差異，但DM 各組大鼠腎組織中p-ERK1/2 的表達(dá)卻顯著升高(P ＜0.01)，進(jìn)一步證實(shí)DM 腎組織中的ERK1/2 的活性明顯高于正常對照組，但蛋白含量無明顯變化［15］。DM 腎小管上皮細(xì)胞中p-ERK1/2 表達(dá)增多，可使AP-1 活化繼而誘導(dǎo)腎間質(zhì)FN 的生成增多，增加ECM 成分的表達(dá);同時(shí)由于T2DM 大鼠腎組織中p-ERK1/2 與TGF-β1呈顯著正相關(guān)(P ＜0. 01)，提示p-ERK1/2還可增強(qiáng)TGF-β1/Smads 信號通路的活性，參與了TGF-β1介導(dǎo)的腎間質(zhì)纖維化的發(fā)?。?6］。

總之，本研究表明，在2 型糖尿病時(shí)，F(xiàn)AK 可能作為TGF-β1的下游分子之一表達(dá)增多以及被活化，并通過活化ERK1/2 使FN 表達(dá)增多，從而參與了糖尿病腎病的發(fā)生發(fā)展。然而在DN 的發(fā)展過程中，F(xiàn)AK 表達(dá)的上調(diào)受哪些因素的影響以及TGF-β1究竟通過何種機(jī)制誘導(dǎo)FAK 表達(dá)增加，有待進(jìn)一步研究證實(shí)。

［1］ 張曉嵐，霍曉霞，申建剛，等. 黏著斑激酶酪氨酸磷酸化促大鼠肝纖維化形成［J］. 基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與臨床，2007，27(2):143-147.

［2］ 劉小菁，傅 華，楊 麗，等. 肝纖維化大鼠肝竇內(nèi)皮細(xì)胞整合素α6β1及粘著斑激酶表達(dá)的變化［J］. 中華肝臟病雜志，2001，9(6):349-351.

［3］ Taylor JM，Rovin JD，Parsons JT. A role for focal adhesion kinase in phenylephrine-induced hypertrophy of rat ventricular cardiomyocytes［J］. J Biol Chem，2000，275(25):19250-19257.

［4］ 崔 龍，劉瑞霞，李曉穎，等.糖尿病大鼠腎臟病變及其SnoN 蛋白表達(dá)的變化［J］. 貴陽醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào)，2009，34(1):16-20.

［5］ Hills CE，Al-Rasheed N，Al-Rasheed N，et al. C-peptide reverses TGF-β1-induced changes in renal proximal tubular cells:implications for treatment of diabetic nephropathy［J］. Am J Physiol Renal Physiol，2009，296(3):F614-F621.

［6］ 楊 勤，謝汝佳，張國忠，等. 轉(zhuǎn)化生長因子胞內(nèi)信號蛋白Smad2/3 在糖尿病大鼠腎臟表達(dá)的動(dòng)態(tài)觀察及意義研究［J］. 中國病理生理雜志，2006，10(22):1879-1884.

［7］ Wong VW，Rustad KC，Akaishi S，et al. Focal adhesion kinase links mechanical force to skin fibrosis via inflammatory signaling［J］. Nat Med，2011，18(1):148-152.

［8］ 孫 勇，劉建國. 整合素與鈣通道協(xié)同調(diào)節(jié)人腎小管上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)分化過程及其機(jī)制［J］. 山東醫(yī)藥，2007，47(8):7-9.

［9］ 鄧冰清，朱忠華，張 春，等. 黏著斑激酶在轉(zhuǎn)化生長因子β1 誘導(dǎo)的人腎小管上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)分化中的作用［J］. 中華腎臟病雜志，2009，25(10):771-775.

［10］Shikano T，Haneda M，Toqawa M，et al. Tyrosine phosphorylation of focal adhesion kinase (p125FAK)and paxillin in glomeruli from diabetic rats［J］. Nihon Jinzo Gakkai Shi，1996，38(2):57-64.

［11］Ding Q，Gladson CL，Wu H，et al. Focal adhesion kinase(FAK)-related non-kinase inhibitis myofibroblast differentiation through differential MAPK activation in a FAK-dependent manner［J］. J Biol Chem，2008，283(40):26839-26849.

［12］Walsh MF，Ampasala DR，Hatfield J，et al. Transforming growth factor-β stimulates intestinal epithelial focal adhesion kinase synthesis via Smad-and p38-dependent mechanisms［J］. Am J Pathol，2008，173(2):385-399.

［13］Parsons JT. Focal adhesion kinase:the first ten years［J］.J Cell Sci，2003，116(Pt 8):1409-1416.

［14］Clark EA，Hynes RO. 1997 keystone symposium on signal transduction by cell adhesion receptors［J］. Biochim Biophys Acta，1997，1333(3):R9-R16.

［15］Fujita H，Omori S，Ishikura K，et al. ERK and p38 mediate high-glucose-induced hypertrophy and TGF-β expression in renal tubular cells［J］. Am J Physiol Renal Physiol，2004，286(1):F120-F126.

［16］常巨平，祝勝郎，余學(xué)清，等. ERK1/2 信號蛋白在糖尿病小鼠腎組織中的表達(dá)［J］. 中國病理生理雜志，2007，23(9):1804-1807.