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      血根堿清除自由基及抑制生物大分子氧化的作用

      2014-01-20 10:52:31楊天衡劉學(xué)波
      食品科學(xué) 2014年9期
      關(guān)鍵詞:羰基化甲醇溶液過氧化

      姚 雯,楊天衡,劉學(xué)波

      血根堿清除自由基及抑制生物大分子氧化的作用

      姚 雯,楊天衡,劉學(xué)波*

      (西北農(nóng)林科技大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,陜西 楊凌 712100)

      目的:評(píng)價(jià)血根堿的體外抗氧化活性,為血根堿作為天然抗氧化劑的應(yīng)用提供理論依據(jù)。方法:采用DPPH自由基清除法測(cè)定血根堿的體外抗氧化能力;采用Cu2+/H2O2和AAPH體系誘導(dǎo)牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)氧化損傷和羰基化損傷模型,研究血根堿對(duì)上述損傷的保護(hù)作用;采用TBA法分別測(cè)定血根堿對(duì)FeSO4誘導(dǎo)的大豆卵磷脂氧化損傷的抑制作用,及AAPH誘導(dǎo)的鯡魚精DNA氧化損傷的抑制作用。結(jié)果:血根堿可有效清除DPPH自由基,且呈濃度依賴性,在100 μmol/L時(shí)清除率為85.94%;1~100 μmol/L的血根堿可顯著保護(hù)Cu2+/H2O2及AAPH體系誘導(dǎo)的BSA損傷;10~100 μmol/L的血根堿可顯著保護(hù)由Cu2+/H2O2體系誘導(dǎo)的BSA蛋白羰基化,當(dāng)濃度為0.1~100 μmol/L時(shí)可顯著保護(hù)由AAPH誘導(dǎo)的BSA蛋白羰基化;血根堿濃度在6.25~100 μmol/L范圍內(nèi)均可顯著抑制由FeSO4及AAPH誘導(dǎo)的大豆卵磷脂及鯡魚精DNA的氧化損傷。結(jié)論:血根堿可有效清除自由基及保護(hù)蛋白氧化損傷和羰基化損傷,亦可顯著抑制脂質(zhì)及DNA氧化損傷。

      血根堿;自由基;氧化損傷;羰基化;抗氧化

      活性氧(reactive oxygen species,ROS)是需氧生物體正常的代謝產(chǎn)物,在正常生理狀態(tài)下,機(jī)體可維持ROS的動(dòng)態(tài)平衡,從而對(duì)細(xì)胞 及胞內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和組織生長(zhǎng)發(fā)育起到積極的作用。在應(yīng)激情況下,生物體會(huì)產(chǎn)生過量的ROS,體內(nèi)的抗氧化劑無法與之抗衡,造成機(jī)體的氧化損傷,如蛋白質(zhì)氧化、脂質(zhì)過氧化和DNA氧化損傷等[1],進(jìn)而誘發(fā)多種疾病,如阿爾茲海默癥、帕金森癥[2]、亨廷頓舞蹈癥和肌萎縮性脊髓側(cè)索硬化癥等[3]。為了降低過度氧化對(duì)機(jī)體造成的損傷,一些天然抗氧化劑已受到研究者的廣泛關(guān)注,如VC、白藜蘆醇和茶多酚等[4]。血根堿(sanguinarine,SAN)屬苯菲啶型芐基異喹啉類生物堿,主要存在于罌粟科、藍(lán)堇科和蕓香科的植物中。研究表明,血根堿具有抗菌消炎、抑制多種病原菌及抗腫瘤等多種藥理作用[5],而對(duì)于其抗氧化作用效果的研究鮮有報(bào)道。Zhong Ming等[6]報(bào)道博落回屬的8種生物堿的抗氧化活性隨著產(chǎn)地的變化各異,但對(duì)于血根堿的抗氧化活性未見分析。本實(shí)驗(yàn)從血根堿對(duì)1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl radical 2,2-diphenyl-1-(2,4,6-trinitrophenyl)hydrazyl,DPPH)自由基的清除,以及對(duì)生物大分子氧化損傷的保護(hù)來評(píng)價(jià)血根堿的抗氧化作用。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      血根堿(純度≥98%)、2,2’-偶氮二(2-甲基丙基咪)二鹽酸鹽(2,2’-azobis(2-methylpropionamidine)dihydrochloride,AAPH)、DPPH自由基 美國(guó)Sigma公司;牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA) 西安沃爾森生物技術(shù)有限公司;鯡魚精DNA 北京百瑞金生物科技有限公司;抗脫氧核糖核蛋白抗體 (anti-DNP)、羊抗兔抗體 (goat anti-rabbit) 美國(guó)Santa Cruz公司;2,4-二硝基苯肼(2,4-dinitrophenylhydrazine,DNPH) 美國(guó)Amresco公司。

      1.2 儀器與設(shè)備

      PowerWave XS 全波長(zhǎng)酶標(biāo)儀 美國(guó)Bio-Tek公司;65-8001垂直電泳槽、ChemiDoc XRS化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)美國(guó)Bio-Rad公司;AUW120D萬分之一天平 日本島津Shimadzu公司;微量移液槍 德國(guó)Eppendorf公司。

      1.3 方法

      1.3.1 DPPH自由基清除能力的測(cè)定

      稱取7.80 mg的DPPH溶于100 mL甲醇溶液,配制濃度為200 μmol/L的DPPH溶液,避光保存。向離心管中分別加入500 μL DPPH甲醇溶液和500 μL血根堿稀釋梯度液,充分混合,避光靜置30 min,記為Ai;同時(shí)將等體積甲醇溶液和血根堿稀釋梯度液混合記為Aj;將等體積甲醇溶液和DPPH甲醇溶液混合記為A;甲醇溶液記為A0。在517 nm測(cè)定吸光度,每個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次,按式(1)計(jì)算清除率。

      1.3.2 血根堿對(duì)Cu2+/H2O2及AAPH誘導(dǎo) 的蛋白氧化損傷的保護(hù)作用

      參考喬燕[7]的方法略有改動(dòng)。分別用1 mmol/L的磷酸鹽緩沖液(phosphat buffered saline,PBS)配制質(zhì)量濃度為1 mg/mL的BSA蛋白溶液,用蒸餾水配制濃度為10 mmol/L的CuSO4溶液,用PBS配制濃度為25 mmol/L的H2O2(注意避光保存),用蒸餾水配制濃度為500 mmol/L的AAPH溶液,37 ℃水浴下熱分解2 min備用。

      向離心管中加入50 μL BSA蛋白溶液、10 μL甲醇溶液和40 μL PBS混合均勻,作為空白組;實(shí)驗(yàn)組先加入50 μL BSA蛋白溶液、10 μL血根堿稀釋梯度液,混合均勻后室溫放置30 min,再分別加入CuSO4、H2O2各10 μL或20 μL AAPH,之后各加入20 μL PBS補(bǔ)齊反應(yīng)體系;對(duì)照組將樣品梯度液換為10 μL甲醇。加樣完畢后混合均勻,在37 ℃水浴反應(yīng),Cu2+/H2O2和AAPH的反應(yīng)時(shí)間分別為90 min和6 h。反應(yīng)結(jié)束后加入25 μL十二烷基硫酸鈉(sodium dodecylsulfate,SDS),95 ℃水浴5 min制備成蛋白樣品。經(jīng)10%聚丙烯酰胺凝膠電泳(polyacrylamide gel electrophoresis,PAGE)后,1%考馬斯亮藍(lán)R-250染色20 min[8],脫色過夜,BSA蛋白條帶用Quantity One 4.6.2軟件進(jìn)行定量分析。每實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

      1.3.3 血根堿對(duì)Cu2+/H2O2及AAPH誘導(dǎo)的蛋白羰基化的保護(hù)作用

      參考Dalle-Donne[9]和Levine[10]等的方法略有改動(dòng)。將已制備好的Cu2+/H2O2及AAPH體系的蛋白樣品經(jīng)10%聚丙烯酰胺凝膠電泳后,10 V,25 min半干轉(zhuǎn)印至PVDF膜上,將該P(yáng)VDF膜與20 mmol/L的DNPH-鹽酸溶液避光衍生30 min,衍生完畢后依次以濃度為2 mol/L的HCl洗滌3 次,每次5 min,甲醇洗滌5 次,每次5 min,5%脫脂奶粉封閉2 h,1×TBST洗滌3 次,每次5 min,生成的2,4-二硝基苯腙(2, 4-dinitrobenzene hydrazone,2,4-DNP)衍生物,利用抗DNP抗體4 ℃過夜孵育,次日用1×TBST洗滌后以anti-rabbit抗體孵育2.5 h,經(jīng)1×TBST洗滌后利用ChemiDoc XRS化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)檢測(cè)蛋白的表達(dá),并用Quantity one 4.6.2軟件對(duì)蛋白條帶進(jìn)行定量分析。每實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。

      1.3.4 血根堿對(duì)FeSO4誘導(dǎo)的脂質(zhì)過氧化的抑制作用

      參照黃曉坤等[11]的方法并略加修改。用PBS配制質(zhì)量濃度為2 mg/mL的大豆卵磷脂,充氮?dú)夥饪?,超?0 min,制備成脂質(zhì)體。以250 μL脂質(zhì)體、40 μL的500 μmol/L FeSO4及10 μL血根堿稀釋梯度液混合記為Ai,對(duì)照組以PB代替樣品記為A0,考慮到樣品本身的顏色,將樣品本底值記為As,加樣完畢后將樣品組 和對(duì)照組避光37 ℃水浴1 h,用TBA法檢測(cè)氧化程度。即加入700 μL三氯乙酸(trichloroacetic acid,TCA)-硫代巴比妥酸(thiobarbituric acid,TBA)- HCl混合液(15 g TCA,0.375 g TBA,2.1 mL濃鹽酸,依序加入100 mL雙蒸水中),100 ℃水浴15 min,迅速冷卻,4 000 r/min離心10min,取上清,點(diǎn)入96孔板,在波長(zhǎng)532 nm處測(cè)定吸光度。每實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次,按式(2)計(jì)算脂質(zhì)過氧化抑制率。

      1.3.5 血根堿對(duì)AAPH誘導(dǎo)的DNA氧化損傷的抑制作用

      在AAPH熱分解產(chǎn)生的烷氧自由基攻擊下,DNA形成的裂解產(chǎn)物(活性羰基化合物)在酸性條件下與TBA反應(yīng)后的產(chǎn)物硫代巴比妥酸反應(yīng)物(thiobarbituric acid reactive substance,TBARS)在532 nm波長(zhǎng)處出現(xiàn)明顯的吸收峰[12-13]。配制質(zhì)量濃度為8 mg/mL的鯡魚精DNA及500 μmol/L的AAPH溶液。以250 μL鯡魚精DNA、10 μL血根堿稀釋梯度液及50 μL AAPH溶液混合記為Ai,對(duì)照組以PBS代替樣品記為A0,將樣品本底值記為As,加樣完畢后將樣品組和對(duì)照組避光37 ℃水浴12 h,TBA法檢測(cè)DNA氧化程度,每個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次,并按式(3)計(jì)算DNA氧化抑制率。

      1.4 數(shù)據(jù)處理

      實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用 Microsoft Excel 2007處理,通過SPSS 16.0軟件進(jìn)行One-Way ANOVA分析,并采用Duncan’s多重比較,P<0.05為差異顯著。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 血根堿對(duì)DPPH自由基的清除能力

      圖1 血根堿對(duì)DPPH自由基的清除 作用Fig.1 Scavenging effect of sanguinarine on DPPH radical

      由圖1可知,血根堿對(duì)DPPH自由基的清除率隨著濃度增加而顯著升高,依 次為21.45%、36.38%、58.55%、75.80%、85.94%(P<0.05),IC50值為47.09 μmol/L,即15.65 mg/L。從實(shí)驗(yàn)結(jié)果看,血根堿具有較強(qiáng)的清除DPPH自由基的能力,徐東艷[14]和嚴(yán)建剛[15]等報(bào)道VC清除DPPH自由基的IC50值分別為7.43 mg/L和9.1 mg/L,可見血根堿清除DPPH自由基的能力弱于VC。

      2.2 血根堿對(duì)Cu2+/H2O2及AAPH誘導(dǎo)的蛋白氧化損傷的保護(hù)作用

      Cu2+/H2O2體系產(chǎn)生的·OH及AAPH產(chǎn)生的OOH·會(huì)攻擊BSA氨基酸側(cè)鏈,造成氨基酸殘基被修飾,導(dǎo)致蛋白質(zhì)構(gòu)象發(fā)生改變[16-18]。由圖2、3可知,Cu2+/H2O2和AAPH體 系均可誘導(dǎo)BSA發(fā)生氧化損傷,加入濃度為1、10、100 μmol/L的血根堿均可顯著保護(hù)這兩種體系誘導(dǎo)的BSA蛋白氧化損傷(P<0.05),且血根堿濃度為100 μmol/L時(shí), 對(duì)Cu2+/H2O2和AAPH誘導(dǎo)的BSA蛋白損傷的保護(hù)率分別達(dá)到84.17%和75.94%。

      圖2 血根堿對(duì)Cu2+/H2O2誘導(dǎo)的蛋白氧化損傷的保護(hù)作用Fig.2 Protective effect of sanguinarine on against Cu2+/H2O2-induced BSA damage

      圖3 血根堿對(duì)AAPH誘導(dǎo)的蛋白氧化損傷的保護(hù)作用Fig.3 Protective effect of sanguinarine on against AAPH-induced BSA damage

      2.3 血根堿對(duì) Cu2+/H2O2及AAPH誘導(dǎo)的蛋白羰基化的保護(hù)作用

      羰基的 生成是ROS攻擊氨基酸側(cè)鏈的結(jié)果,羰基化是蛋白質(zhì)經(jīng)自由基修飾造成氧化損傷的重要標(biāo)記物[16]。蛋白質(zhì)羰基化也是評(píng)價(jià)蛋白質(zhì)總氧化水平 的常用方法。Cu2+/H2O2和AAPH體系均可顯著誘導(dǎo)BSA發(fā)生羰基化,由圖4可知,加 入0.1、1 μmol/L血根堿趨于降低Cu2+/H2O2體系誘導(dǎo)的BSA羰基化程度(P>0.05),當(dāng)血根堿濃度為10、100 μmol/L時(shí)可顯著降低Cu2+/H2O2體系誘導(dǎo)的BSA蛋白羰基化程度(P<0.05),并使BSA蛋白羰基化程度恢復(fù)至空白組水平(P>0.05)。

      圖4 血根堿C對(duì)u2+/H2O2誘導(dǎo)的蛋白羰基化的保護(hù)作用Fig.4 Inhibitory effect of sangui narine on Cu2+/H2O2-induced protein carbonylation

      圖5 血根堿對(duì)AAPH誘導(dǎo)的蛋白羰基化的保護(hù)作用Fig.5 Inhibitory effect of sanguinarine on AAPH-induced prote in carbonylation

      由圖5可知,加入0.1、1、10、100 μmol/L血根堿均可顯著保護(hù)由AAPH誘導(dǎo)的BSA蛋白羰基化(P<0.05),但100 μmol/L血根堿組對(duì)AAPH誘導(dǎo)的BSA蛋白羰基化仍未恢復(fù)至空白組水平(P<0.05)。本實(shí)驗(yàn)表明,與Cu2+/H2O2體系相比,AAPH誘導(dǎo)的BSA蛋白羰基化程度較高。

      2.4 血根堿對(duì)FeSO4誘導(dǎo)的脂質(zhì)過氧化的抑制作用

      圖6 血根堿eS對(duì)O4誘導(dǎo)的脂質(zhì)過氧化的抑制作用Fig.6 Effect of sanguinarine on FeSO4-induced soy lecithin peroxidation

      卵磷脂中的多不飽和脂肪酸在金屬離子催化下形成的烷過氧自由基(ROO·)與脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物作用,發(fā)生生物膜的脂質(zhì)過氧化,導(dǎo)致膜損傷與組織損傷[19-20]。由圖6可知,隨著血根堿濃度的增加,脂質(zhì)過氧化的抑制率也有一定程度的提高,加入6.25、12.5、25 μmol/L的血根堿趨于增加脂質(zhì)過氧化的抑制率(P>0.05),當(dāng)血根堿濃度為50、100 μmol/L時(shí)可顯著提高其抑制率(P<0.05)。

      2.5 血根堿對(duì)AAPH誘導(dǎo)的DNA氧化損傷的抑制作用

      圖7 血根堿對(duì)AAPH誘導(dǎo)的DNA氧化損傷的抑制作用Fig.7 Inhibitory effects of sanguinarine on to AAPH-initiated oxidative DNA damage

      DNA攜帶機(jī)體的重要遺傳信息,氧化修飾不但會(huì)造成DNA結(jié)構(gòu)和功能的改變,甚至?xí)斐苫蛲蛔兊萚21]。由圖7可知,隨著血根堿濃度的增加,DNA氧化損傷的抑制率逐步提高,不同濃度的血根堿均可顯著抑制AAPH誘導(dǎo)的DNA氧化損傷(P<0.05),且呈濃度依賴性。

      3 結(jié) 論

      本實(shí)驗(yàn)表明,血根堿可有效清除DPPH自由基,且呈濃度依賴性,并保護(hù)Cu2+/H2O2、AAPH誘導(dǎo)的BSA蛋白氧化及羰基化損傷,亦可顯著抑制CuSO4誘導(dǎo)的脂質(zhì)過氧化及AAPH誘導(dǎo)的DNA氧化損傷,可見,血根堿可有效保護(hù)生物大分子的氧化和羰基化損傷,具有作為天然抗氧化劑的潛力。

      [1] CIRCU M L, AW T Y. Reactive oxygen species, cellular redox systems, and apoptosis[J]. Free Radical Biology and Medicine, 2010, 48(6): 749-762.

      [2] JOMOVA K, VONDRAKOVA D, LAWSON M, et al. Metals, oxidative stress and neurodegenerative disorders[J]. Molecular and Cellular Biochemistry, 2010, 345(1/2): 91-104.

      [3] MARTíNEZ A, PORTERO OTIN M, PAMPLONA R, et al. Protein targets of oxidative damage in human neurodegenerative diseases with abnormal protein aggregates[J]. Brain Pathology, 2010, 20(2): 281-297.

      [4] 趙保路. 自由基, 營(yíng)養(yǎng), 天然抗氧化劑與衰老[J]. 生物物理學(xué)報(bào), 2010, 26(1): 26-36.

      [5] DVORAK Z, SIMANEK V. Metabolism of sanguinarine: the facts and the myths[J]. Current Drug Metabolism, 2007, 8(2): 173-176.

      [6] ZHONG Ming, HUANG Kelong, ZENG Jianguo, et al. Determinationof contents of eight alkaloids in fruits of Macleaya cordata (Willd) R. Br. from different habitats and antioxidant activities of extracts[J]. Journal of Central South University of Technology, 2010, 17: 472-479.

      [7] 喬燕, 劉學(xué)波. 草質(zhì)素體外清除自由基及抑制蛋白質(zhì)氧化的作用[J].食品科學(xué), 2013, 34(17): 106-110.

      [8] MAYO J C, TAN D X, SAINZ R M, et al. Protection against oxidative protein damage induced by metal-catalyzed reaction or alkylperoxyl radicals: comparative effects of melatonin and other antioxidants[J]. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-General Subjects, 2003, 1620(1): 139-150.

      [9] DALLE-DONNE I, ROSSI R, GIUSTARINI D, et al. Protein carbonyl groups as biomarkers of oxidative stress[J]. Clinica Chimica Acta, 2003, 329(1): 23-38.

      [10] LEVINE R L, GARLAND D, OLIVER C N, et al. Determination of carbonyl content in oxidatively modified proteins[J]. Methods in Enzymology, 1990, 186: 464.

      [11] 黃曉昆, 黃曉冬, 卞美君. 南方堿蓬葉黃酮類化合物含量及其體外抗氧化活性研究[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2010, 38(3): 389-400.

      [12] AESCHBACH R, L?LIGER J, SCOTT B C, et al. Antioxidant actions o f thymol, carvacrol, 6-gingerol, zingerone and hydroxytyrosol[J]. Food and Chemical Toxicology, 1994, 32(1): 31-36.

      [13] ZHAO Feng, LIU Zaiqun, WU Di. Antioxidative effect of melatonin on DNA and erythrocytes against free-radical-induced oxidation[J]. Chemistry and Physics of Lipids, 2008, 151(2): 77-84.

      [14] 徐冬艷, 劉斌, 王偉. 基于抗氧化效應(yīng)的降脂寧質(zhì)量評(píng)價(jià)方法研究[J].中國(guó)實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志, 2010, 16(10): 44-47.

      [15] 嚴(yán)建剛, 張名位, 楊公明, 等. 芹菜黃酮的提取條件及其抗氧化活性研究[J]. 西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào): 自然科學(xué)版, 2005, 33(1): 131-135.

      [16] 李國(guó)林, 印大中. ROS介導(dǎo)的蛋白質(zhì)氧化的生化機(jī)制[J]. 生命的化學(xué), 2007, 27(6): 516-520.

      [17] 李冰冰, 趙倩, 張龍富. 活性氧與蛋白質(zhì)氧化損傷[J]. 平頂山工學(xué)院學(xué)報(bào), 2005, 14(5): 16-17.

      [18] 郁軍超, 薛連璧. 機(jī)體ROS的產(chǎn)生及對(duì)生物大分子的毒性作用[J].山東醫(yī)藥, 2012, 52(8): 94-102.

      [19] TAMPO Y. Studies on membrane factors in iron-supported lipid peroxidation[J]. Yakugaku Zasshi: Journal of the Pharmaceutical Society of Japan, 2000, 120(4): 387.

      [20] 梁俊, 李建科, 趙偉, 等. 石榴皮多酚體外抗脂質(zhì)過氧化作用研究[J].食品與生物技術(shù)學(xué)報(bào), 2012, 31(2): 159-165.

      [21] 張德莉, 朱圣姬, 羅光富, 等. 自由基與DNA氧化損傷的研究進(jìn)展[J].三峽大學(xué)學(xué)報(bào): 自然科學(xué)版, 2004, 26(6): 563-567.

      Sanguinarine Scavenges Free Radicals and Protects against Oxidative Damage of Biological Macromolecules

      YAO Wen, YANG Tian-heng, LIU Xue-bo*
      (College of Food Science and Engineering, Northwest A&F University, Yangling 712100, China)

      The purpose of this paper is to evaluate the in vitro antioxidant activity of sanguinarine (SAN). The 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging activity of SAN was measured, and the protective effect against oxidative damage and carbohylation of bovine serum albumin (BSA) induced in Cu2+/H2O2and 2,2-azobis(2-amidinopropane dihydrochloride) (AAPH) system was examined. The 2-thio-barbituric acid (TBA) method was applied to determine the protective effect of SAN against FeSO4-induced oxidative damage of soy lecithin and AAPH-induced oxidative damage of herring sperm DNA. The results showed that SAN effectively removed DPPH free radicals in a dose-dependent manner, with a clearance rate of 85.94% at a concentration of 100 μmol/L. Adding 1 to 100 μmol/L SAN could signifi cantly protect BSA against oxidative damage induced by Cu2+/H2O2and AAPH system, and adding 10 to 100 μmol/L and 0.1 to 100 μmol/L SAN could signifi cantly protect BSA against carbonylation damage induced by Cu2+/H2O2and AAPH system, respectively. SAN signifi cantly protected soy lecithin against FeSO4-induced oxidative damage and protect herring sperm DNA against AAPH-induced oxidative damage in the range of 6.25–100 μmol/L. In conclusion, SAN can effectively scavenge free radicals, inhibit oxidative protein damage and carbonylation, and suppress lipid and DNA oxidative damage.

      sanguinarine; free radical; oxidative damage; carbonylation; antioxidant activity

      TS201.4

      A

      1002-6630(2014)09-0137-05

      10.7506/spkx1002-6630-201409028

      2013-11-30

      姚雯(1989—),女,碩士研究生,研究方向?yàn)闋I(yíng)養(yǎng)與功能食品因子。E-mail:wendy0120@me.com

      *通信作者:劉學(xué)波(1975—),男,教授,博士,研究方向?yàn)闋I(yíng)養(yǎng)與功能食品因子。E-mail:xueboliu@nwsuaf.edu.cn

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