邢 茜,陳思宇
(上海交通大學醫(yī)學院附屬新華醫(yī)院腫瘤科,上海200092)
microRNA與肝癌研究進展
邢 茜,陳思宇
(上海交通大學醫(yī)學院附屬新華醫(yī)院腫瘤科,上海200092)
microRNA;肝癌;表達上調(diào);表達下調(diào);臨床意義
隨著人類后基因組計劃的進一步開展,占人類基因組99%的非編碼序列日益引起科學家的關注,其中最引人注目的是microRNA(以下簡稱miRNA)的發(fā)現(xiàn)。miRNA是一類全長為18~25個核苷酸的單鏈小分子RNA,通過與靶標基因3'非翻譯區(qū)(3'UTR)結(jié)合在轉(zhuǎn)錄后對靶標基因的表達水平進行調(diào)控[1]。
原發(fā)性肝癌的發(fā)病率居全球第5位,原發(fā)性肝癌中有80%~90%是肝細胞性肝癌(以下簡稱肝癌)[2]。肝癌侵襲力強、死亡率高。早期肝癌手術切除、肝移植治療后術后5 a生存率僅為70%。進展期肝癌治療手段更為有限,由于已發(fā)生血行轉(zhuǎn)移,多數(shù)患者喪失手術機會,而化療作用不大且有藥物毒性,因此早期診斷是肝癌有效治療的關鍵。
隨著分子技術的不斷進步,有研究[3]利用一些高通量檢測方法分析不同人類腫瘤的miRNA表達譜,已經(jīng)證實在乳腺癌、肝癌、肺癌、胃癌、卵巢癌等多種腫瘤中發(fā)現(xiàn)特異性miRNA的差異表達,腫瘤特異性的miRNA表達譜揭示miRNA與腫瘤之間存在密切聯(lián)系。miRNA與肝癌的發(fā)生有關,miRNA的指標變化對早期發(fā)現(xiàn)、診斷肝癌和判斷肝癌預后有著重要意義,同時也為肝癌治療提供新的思路和研究方向。本文就近年關于miRNA與肝癌的相關研究進展作一綜述。
1993年,Lee等[4]在秀麗新小桿線蟲中意外地發(fā)現(xiàn)一種定時調(diào)控胚胎后期發(fā)育的基因Lin-4,其編碼一種小分子RNA,這種小分子RNA通過與靶基因Lin-4的mRNA的3'UTR特定區(qū)域結(jié)合以抑制Lin-4的翻譯。后來這種相似的小分子在線蟲、果蠅、小鼠和人類細胞中不斷被發(fā)現(xiàn),并被命名為miRNA,至今已被鑒定出上千種之多。
研究[5-8]表明,miRNA基因由RNA聚合酶Ⅱ轉(zhuǎn)錄成初級轉(zhuǎn)錄物Pri-miRNA,此Pri-miRNA是包含Drosha酶(具有核糖核酸酶Ⅲ活性的酶)的多蛋白復合物,Pri-miRNA后經(jīng)Drosha酶剪切形成長度約為80 bp的發(fā)卡狀結(jié)構(gòu)的miRNA前體Pre-miRNA,并由Fxportin-5/Ran-GTP轉(zhuǎn)運至胞漿,最后在胞漿中Dicer內(nèi)切酶將其加工成長度約為22個堿基的雙鏈RNA,雙鏈中的一條則與一種RNA沉默復合物(RISC)結(jié)合成RISC-miRNA復合物,再互補結(jié)合至靶基因mRNA的3'UTR,從而誘導其靶點mRNA的降解或翻譯抑制,在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控靶基因的表達。
3.1 miRNA與腫瘤發(fā)生miRNA參與生命過程中一系列的重要進程,與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展、凋亡、轉(zhuǎn)移有密切的關系。乳腺癌、卵巢癌、胃癌、肺癌中均有miRNA的異常表達。目前認為,miRNA在腫瘤發(fā)生中的作用主要在于3個方面:1)有些miRNA在正常組織表達下調(diào),在腫瘤組織表達上調(diào),可能起著癌性miRNA的作用;2)有些miRNA則在正常組織表達上調(diào),在腫瘤組織表達下調(diào),可能起著抑癌性miRNA的作用;3)一些致癌病毒編碼的miRNA也可能參與相關腫瘤的發(fā)生。
3.2 miRNA與肝癌的關系miRNA在肝癌發(fā)生過程中,既可通過調(diào)節(jié)細胞凋亡或細胞周期,也可經(jīng)調(diào)節(jié)癌基因或抑癌基因參與腫瘤發(fā)生途徑,其作用具有網(wǎng)絡化、雙向性及組織特異性的特點,從而調(diào)控肝癌細胞的增殖凋亡、血管生成、細胞轉(zhuǎn)移和耐藥性等。
3.2.1 在肝癌中表達上調(diào)的miRNA 1)miRNA-21:miRNA-21是目前研究最多的miRNA之一,參與多種腫瘤的發(fā)生和一系列病理生理改變,與肝臟再生、肝細胞代謝、肝臟免疫反應及肝癌發(fā)生和發(fā)展有著密切聯(lián)系。miRNA-21在肝癌組織中的表達約為正常肝組織中相對表達量的10倍,目前關于其調(diào)控肝癌細胞的機制有以下3種研究結(jié)論:基因PTFN是一種抑癌基因,其表達增加可減少腫瘤細胞的增生、遷移和侵襲。然而miRNA-21通過作用于PTFN激活RTKS、P13K,進而激活AKT路徑,促進腫瘤細胞生長增殖,增加其侵襲力[9]。RHOB基因已知具有腫瘤抑制作用,肝癌細胞中的miRNA-21,通過直接靶向RHOB的3'URT壓制RHOB表達從而促進腫瘤細胞增殖[10]。此外,在肝癌細胞中,miRNA-21主要通過影響一些信號通路中的分子,如基質(zhì)金屬蛋白酶-2(MMP-2)和MMP-9來抑制其靶基因細胞凋亡基因(PDCD)的mRNA和蛋白水平,從而抑制肝癌細胞凋亡[11],越來越多的研究表明miRNA-21-PDCD環(huán)路異常在肝癌發(fā)生中具有重要的作用,相信關于miRNA-21-PDCD環(huán)路作為肝癌治療靶點的可能性會備受關注;2)miRNA-221:miRNA-221與腫瘤發(fā)生密切相關,其在膠質(zhì)母細胞瘤、前列腺癌等多種腫瘤中表達異常,高表達miRNA-221的腫瘤進展快、存活率差、復發(fā)率高。諸多研究[12-14]表明miRNA-22l在肝癌組織中高表達。近年來很多學者進行關于miRNA-221致癌機制的研究:Gramantieri等[12]在體外將肝癌細胞株分為miRNA-221轉(zhuǎn)染及抑制組,通過熒光素酶基因檢測法發(fā)現(xiàn)miRNA-221抑制組可促進腫瘤細胞凋亡,Bmf基因具有促進細胞凋亡的作用,進一步研究發(fā)現(xiàn)miRNA-221正是通過與Bmf基因mRNA的3'UTR結(jié)合抑制其表達從而促進肝癌的發(fā)生、發(fā)展。亦有研究[13-14]闡述其作用機制可能為高表達miRNA-221抑制細胞周期蛋白依賴性激酶抑制劑P27、P57的表達從而調(diào)控細胞周期促進細胞增殖。2010年Pineau等[15]利用肝癌小鼠模型,發(fā)現(xiàn)miRNA-221的過表達刺激致瘤小鼠的肝祖細胞的生長。同時確定miRNA-221的作用靶點為mTOR通路的調(diào)節(jié)劑:DNA損傷誘導轉(zhuǎn)錄因子4(DDIT4)。因此,使用miRNA-221合成的抑制劑可能是一種很有前途的肝癌治療方法。在去年Yuan等[16]應用2/3手術誘導部分肝切除的肝再生模型中,證實過表達的miRNA-221加速小鼠體內(nèi)肝細胞增殖。miRNA-221過表達導致肝細胞迅速進入S期從而實現(xiàn)肝再生。芳香烴核易位(ARNT)信使RNA是miRNA-221的一個作用靶點,與miRNA-221的促細胞增殖活性有關。因此,miRNA-221過表達促進肝細胞增殖,作用于miRNA-221的藥物可通過防止細胞凋亡、誘導肝臟再生來治療肝衰竭;3)miRNA-224:miRNA-224是一個新近被提出的在肝癌組織中表達上調(diào)的小分子 RNA。2008年,Wang等[17]在19例肝癌患者中進行miRNA表達譜檢測,發(fā)現(xiàn)miRNA-224在肝癌患者中有顯著上調(diào),還發(fā)現(xiàn)miRNA-224通過抑制ALP-5基因的轉(zhuǎn)錄和表達以增加肝癌細胞的增殖。2012年Scisciani等[18]通過RT-PCR方法和芯片檢測發(fā)現(xiàn)p65/NFκB蛋白復合物是miR-224表達的直接轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子,并與miRNA-224在肝癌中上調(diào)有關;4)miRNA-10:Yan等[19]從細胞黏附實驗中發(fā)現(xiàn)miRNA-10a在肝癌中表達上調(diào),并促進肝癌細胞的體外遷移和侵襲,厄酪氨酸激酶受體FphA4被認定為miRNA-10a的靶基因,F(xiàn)phA4通過調(diào)控上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化過程和β1整合素通路影響細胞浸潤和粘連。miRNA-10b最近報道在肝癌中表達上調(diào),其上調(diào)與肝癌細胞侵襲和轉(zhuǎn)移有關。研究[20]結(jié)果證實,CADM1受miRNA-10b的過表達抑制,而CADM1的沉默導致細胞運動性和侵襲顯著增加。這些結(jié)果表明miRNA-10b可通過積極地靶向CADM1來調(diào)節(jié)肝癌的侵襲和轉(zhuǎn)移。
3.2.2 在肝癌中表達下調(diào)的miRNA 1)miRNA-122:miRNA-122只在肝細胞中表達,約占肝細胞總miRNA量的70%,每個細胞內(nèi)約有50 000個拷貝,不僅參與肝臟分化的調(diào)節(jié),還參與維持肝臟正常功能,是一種調(diào)節(jié)肝臟發(fā)育的肝特異性miRNA,所以關于miRNA-122的研究也逐漸成為熱點[21]。Gramantieri等[22]利用含有381個人類miRNA探針的基因芯片檢測17例原發(fā)性肝癌組織及21例肝硬化組織內(nèi)miRNA的表達水平,發(fā)現(xiàn)miRNA-122a表達下調(diào),進一步研究發(fā)現(xiàn)cyclin G1的mRNA為其作用靶點之一。miRNA-122a可能是通過抑制cyclin G1的表達達到維持染色體穩(wěn)定、抑制細胞增殖、促進細胞凋亡的作用,在肝癌發(fā)生發(fā)展中扮演著腫瘤抑制物的角色[23]。近年來,大量研究[24-26]發(fā)現(xiàn)miRNA-122在肝癌組織中表達下調(diào),并通過負反饋作用于抗凋亡基因Bcl-w家族和促進血管增生、細胞轉(zhuǎn)移的ADAM-1基因,正反饋作用于促進細胞凋亡的Wnt-1信號通路從而調(diào)節(jié)肝癌細胞的血管生成、細胞凋亡和轉(zhuǎn)移;2)miRNA-199:miRNA-199在肝癌和其他惡性腫瘤組織中均有許多表達下調(diào)的報道。Fornari等[27]將39例肝癌標本及10例正常肝組織標本篩選后,發(fā)現(xiàn)miRNA-199轉(zhuǎn)染組可以使細胞周期阻滯于G1期,減少肝癌細胞侵襲力,提高肝癌細胞對缺氧誘導凋亡及阿霉素的敏感性,并最終證實mTOR和C-Met基因均為其作用靶點。mTOR基因在細胞生長、侵襲、凋亡及蛋白翻譯、代謝等過程中起著重要作用,抑制其表達可以使細胞周期阻滯于G1期,從而促發(fā)細胞凋亡。C-Met基因有促進新生血管形成和內(nèi)皮細胞運動、保護細胞免受各種誘導細胞凋亡因子影響的作用。miRNA-199正是通過抑制上述2種基因的表達從而促進肝癌細胞凋亡、減少其侵襲力,增加其對誘導因素的敏感性。同時miRNA-199可抑制PAK4從而抑制癌細胞的增殖,PAK蛋白是的Rho GTP酶對細胞骨架重組和核信號的關鍵激酶,能夠促進細胞增殖[28]。此外,caveolin-2是參與重要的細胞功能,包括信號轉(zhuǎn)導、脂質(zhì)代謝、細胞的生長控制和凋亡的一種蛋白質(zhì),最近幾年,以caveolin-2為靶點來進行腫瘤抑制已經(jīng)成為研究熱門,研究[29]表明miRNA-199在肝癌細胞中通過抑制蛋白caveolin-2的功能以抑制腫瘤細胞增殖分化。盤狀結(jié)構(gòu)域受體1(DDR1)參與細胞侵襲相關信號轉(zhuǎn)導通路,研究[30]表明miRNA-199抑制DDR1從而抑制肝癌細胞轉(zhuǎn)移。目前晚期肝癌順鉑化療患者由于耐藥性問題在臨床治療中療效欠佳,研究[31]表明順鉑肝癌化療中miRNA-199表達下調(diào),促進自噬基因ATG7表達的自噬活動,這一研究為解決順鉑化療的耐藥性問題提出新的解決途徑;3)miRNA-101:Su等[32]利用含有308個人類miRNA的芯片,分析肝癌細胞株、手術切除肝癌組織和正常肝細胞中miRNA的表達譜,發(fā)現(xiàn)miRNA-101明顯下調(diào),達94. 1%,轉(zhuǎn)染miRNA-101組腫瘤細胞在體外克隆和體內(nèi)生長均受抑制,并且轉(zhuǎn)染組腫瘤細胞對饑餓及化療藥物更加敏感。進一步試驗發(fā)現(xiàn)miRNA-101的靶基因為McL-1,McL-1是Bcl-2家族中的一種抗細胞凋亡基因,其主要致癌機制是保護細胞免受各種刺激細胞凋亡的因素的影響,降低其表達可以促進腫瘤細胞凋亡。miRNA-101通過與McL-1的3'UTR結(jié)合抑制其表達,進而抑制肝癌的發(fā)生及發(fā)展。Zhang等[33]研究發(fā)現(xiàn)miRNA-101的靶基因為SOX-9基因,SOX-9基因?qū)儆赪nt/β-catenin信號通路負性調(diào)控因子SOX家族,miRNA-101通過抑制SOX-9基因表達,促進肝癌細胞凋亡;4)miRNA-214:Shih等[34]的研究表明miRNA-214的下調(diào),活化肝癌衍生生長因子HDGF旁分泌途徑,有助于腫瘤血管生成,從而導致肝癌的血管增生。同年,Wang等[35]證實miRNA-214在肝癌細胞標本表達下調(diào),進一步的研究揭示miRNA-214可以直接靶向3'-UTR的β-連環(huán)蛋白的mRNA,抑制其蛋白質(zhì)的表達,β-連環(huán)蛋白表達下調(diào)抑制細胞生長,這些發(fā)現(xiàn)表明miRNA-214可作為腫瘤抑制物,通過抑制β-連環(huán)蛋白來抑制肝癌發(fā)生。鑒于這些,miRNA-214可以作為肝癌治療的靶標。
3.2.3 miRNA與HBV相關性肝癌 miRNA-602是與HBV相關性肝癌關系密切的一種miRNA。我國是“乙肝大國”,與HBV感染相關的原發(fā)性肝癌愈發(fā)被重視,越來越多的學者開展miRNA與HBV相關性肝癌的研究,Yang等[36]分別檢測慢性乙型肝炎肝組織、乙肝病毒陽性肝硬化組織、乙肝病毒陽性肝癌組織及正常肝組織的miRNA,發(fā)現(xiàn)miRNA-602在3種異常肝組織中的表達明顯高于正常肝臟組織。進一步研究發(fā)現(xiàn),miRNA-602的靶基因為腫瘤抑制基因RASSFlA,表達上調(diào)的miRNA-602抑制RASSFlA的表達。研究[37]指出miRNA-602在HBV感染早期階段即過度表達,并通過抑制抑癌基因RASSFlA的表達以介導慢性乙型肝炎發(fā)展到HBV相關性肝癌的這一過程。他們還發(fā)現(xiàn),miRNA-602定位于9q34.3,是常見乙肝病毒基因整合位點,推測乙肝病毒在該區(qū)域的插入是導致miRNA-602過度上調(diào)表達的原因。miRNA-602可能作為HBV相關性肝癌的早期檢測物,在癌變前的肝炎、肝硬化階段作為治療靶點。
3.3 miRNA在肝癌中的臨床意義
3.3.1 miRNA作為腫瘤標志物 miRNA可作為輔助肝癌診斷和評估肝癌預后的腫瘤標志物,如前文,下調(diào)的miRNA-122、miRNA-199、miRNA-101、miRNA-214,與腫瘤侵襲、復發(fā)的風險增高有關,同樣,上調(diào)的miRNA-21、miRNA-221、miRNA-224,miRNA-10亦與預后不良有關。研究[38]表明,血漿或血清中的miRNA并不被RNA酶裂解,因此通過外周血檢測miRNA,可以用于惡性腫瘤的篩查和診斷,且外周血樣本來源比活檢標本簡便,操作易行,傷害輕,對于腫瘤的早期發(fā)現(xiàn)具有重要意義,外周血檢測miRNA對肝癌等血運豐富器官的惡性腫瘤更有意義。研究發(fā)現(xiàn)超過20種血漿或血清中的miRNA檢測與肝癌相關聯(lián)。此外,Zhou等[39]的研究證明miRNA-122、miRNA-192、miRNA-21、miRNA-223、miRNA-26a、miRNA-27a和 miRNA-801a對檢測早期肝癌精確度較高。當然外周血檢測到的miRNA相對于組織仍具有一定局限性,包括血清中的miRNA并不能完全直接反映組織中miRNA的表達水平;血清中miRNA含量較少,更適于研究高表達的miRNA而非低表達的miRNA等。對此仍需要進一步的研究和驗證,提高檢測方法的靈敏性和特異性。
3.3.2 miRNA作為治療靶點 miRNA不僅有利于肝癌的診斷,對靶向治療和基因治療等也具有提示作用。目前研究miRNA用于腫瘤的治療主要為2種思路:1)促進或補充在腫瘤組織中異常低表達的抑癌性miRNA(補充替代療法),或抑制該腫瘤miRNA的癌性靶基因以減緩腫瘤發(fā)展,延長生存期。前者(miRNA-26a[40]、miRNA-122[41]、miRNA-124[42])在小鼠肝癌模型中被證實有效,但這種假設尚未在肝癌患者中進行測試;2)抑制腫瘤中異常高表達的癌性miRNA,通過應用反義寡核苷酸技術沉默腫瘤組織中高表達的miRNA,進而抑制腫瘤細胞生長和或轉(zhuǎn)移,有研究[43]設計出取自寡核苷酸序列的小分子,作用于miRNA-96發(fā)夾前體并抑制其生物合成,從而抑制其表達,誘導癌細胞凋亡。目前反義寡核苷酸技術在體內(nèi)如何發(fā)揮效應最為關鍵,還需要進一步的研究。
肝癌是侵襲力強、死亡率高的惡性腫瘤。其早期診斷困難,治療手段有限,總體預后較差,嚴重危害人民健康。miRNA作為一類新的分子靶標,自發(fā)現(xiàn)之日便一直是科學研究的熱點所在,其在很多惡性腫瘤中的作用得到證實,也有越來越多的miRNA被應用于腫瘤的診斷、治療及預后判斷等。許多相關的科學研究都為miRNA應用于肝癌的基因診斷、治療及預后判斷提供良好的依據(jù),具有廣闊的前景。但目前miRNA與肝癌關系的研究仍處于起步階段,很多機制仍無法闡述,在臨床的應用仍需更進一步的探索和更多證據(jù)的支持。
[1] Bartel DP.MicroRNAs:genomics,biogenesis,mechanism,and function[J].Cell,2004,116(2):281-297.
[2] Wang B,Majumder S,Nuovo G,et al.Role of microRNA-155 at early stages of hepatocarcinogenesis induced by choline-deficient and amino acid-defined diet in C57BL/6 mice[J].Hepatology,2009,50(4):1152-1161.
[3] 田玲,王沖.MicroRNA與腫瘤研究進展[J].分子診斷與治療雜志,2013,5(3):200-205.
[4] Lee RC,F(xiàn)einbaum RL,Ambros V.The C.elegans heterochronic gene lin-4 encodes small RNAs with antisense complementarity to lin-14[J].Cell,1993,75(5):843-854.
[5] Lee Y,Ahn C,Han J,et al.The nuclear RNaseⅢ Drosha initiates microRNA processing[J].Nature,2003,425(6956):415 -419.
[6] Yi R,Qin Y,Macara IG,et al.Fxportin-5 mediates the nuclear export of pre-microRNAs and short hairpin RNAs[J].Genes Dev,2003,17(24):3011-3016.
[7] Hutvágner G,McLachlan J,Pasquinelli AF,et al.A cellular function for the RNA-interference enzyme Dicer in the maturation of the let-7 small temporal RNA[J].Science,2001,293(5531):834 -838.
[8] Hutvágner G,Zamore PD.A microRNA in a multiple-turnover RNAi enzyme complex[J].Science,2002,297(5589):2056 -2060.
[9] Meng F,Henson R,Wehbe-Janek H,et al.MicroRNA-21 regulates expression of the PTFN tumor suppressor gene in human hepatocellular cancer[J].Gastroenterology,2007,133(2):647 -658.
[10]Connolly FC,Van Doorslaer K,Rogler LF,et al.Overexpression of miR-21 promotes an in vitro metastatic phenotype by targeting the tumor suppressor RHOB[J].Mol Cancer Res,2010,8(5):691-700.
[11]Zhu Q,Wang Z,Hu Y,et al.miR-21 promotes migration and invasion by the miR-21-PDCD4-AP-1 feedback loop in human hepatocellularcarcinoma[J].Oncol Rep,2012,27(5):1660-1668.
[12]Gramantieri L,F(xiàn)ornari F,F(xiàn)erracin M,et al.MicroRNA-221 targets Bmf in hepatocellular carcinoma and correlates with tumor multifocality[J].Clin Cancer Res,2009,15(16):5073-5081.
[13]Galardi S,Mercatelli N,Giorda F,et al.miR-221 and miR-222 expression affects the proliferation potential of human prostate carcinoma cell lines by targeting p27Kip1[J].J Biol Chem,2007,282(32):23716-23724.
[14]Fornari F,Gramantieri L,F(xiàn)erracin M,et al.MiR-221 controls CDKN1C/p57 and CDKN1B/p27 expression in human hepatocellular carcinoma[J].Oncogene,2008,27(43):5651-5661.
[15]Pineau P,Volinia S,McJunkin K,et al.miR-221 overexpression contributes to liver tumorigenesis[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2010 107(1):264-269.
[16]Yuan Q,Loya K,Rani B,et al.MicroRNA-221 overexpression accelerates hepatocytep roliferation during liver regeneration[J]. Hepatology,2013,57(1):299-310.
[17]Wang Y,Lee AT,Ma JZ,et al.Profiling microRNA expression in hepatocellular carcinoma reveals microRNA-224 up-regulation and apoptosisinhibitor-5 as a microRNA-224-specific target[J].J Biol Chem,2008,283(19):13205-13215.
[18]Scisciani C,Vossio S,Guerrieri F,et al.Transcriptional regulation of miR-224 upregulatedi nh umanH CCs by NFκB inflammatory pathways[J].J Hepatol,2012,56(4):855-861.
[19]Yan Y,Luo YC,Wan HY,et al.MicroRNA-10a is involved in the metastatic process by regulating Fph tyrosine kinase receptor A4-mediatedepithelial-mesenchymal transition and adhesion in hepatoma cells[J].Hepatology,2013,57(2):667-677.
[20]Li QJ,Zhou L,Yang F,et al.MicroRNA-10b promotes migration and invasion through CADM1 in human hepatocellular carcinoma cells[J].Tumour Biol,2012,33(5):1455-1465.
[21]Shan Y,Zheng J,Lambrecht RW,et al.Reciprocal effects of micro-RNA-122 on expression of heme oxygenase-1 and hepatitis C virus genes in humanhepatocytes[J].Gastroenterology,2007,133(4):1166-1174.
[22]Gramantieri L,F(xiàn)erracin M,F(xiàn)ornari F,et al.Cyclin G1 is a target of miR-122a,a microRNA frequently down-regulated in human hepatocellular carcinoma[J].Cancer Res,2007,67(13):6092 -6099.
[23]Gordon FM,Liu PX,Chen ZH,et al.Inhibition of metastatic tumor growth in nude mice by portal vein infusions of matrix-targeted retroviral vectorsbearing a cytocidal cyclin G1 construct[J]. Cancer Res,2000,60(13):3343-3347.
[24]Tsai WC,Hsu PW,Lai TC,et al.MicroRNA-122,a tumor suppressor microRNA that regulates intrahepatic metastasis of hepatocellular carcinoma[J].Hepatology,2009,49(5):1571-1582.
[25]Lin CJ,Gong HY,Tseng HC,et al.miR-122 targets an anti-apoptotic gene,Bcl-w,in human hepatocellular carcinoma cell lines[J].Biochem Biophys Res Commun,2008,375(3):315-320.
[26]Xu J,Zhu X,Wu L,et al.MicroRNA-122 suppresses cell proliferation and induces cell apoptosis in hepatocellular carcinoma by directlytargeting Wnt/β-catenin pathway[J].Liver Int,2012,32(5):752-760.
[27]Fornari F,Milazzo M,Chieco P,et al.MiR-199a-3p regulates mTOR and c-Met to influence the doxorubicin sensitivity of human hepatocarcinoma cells[J].Cancer Res,2010,70(12):5184 -5193.
[28]Hou J,Lin L,Zhou W,et al.Identification of miRNomes in human liver and hepatocellular carcinoma reveals miR-199a/b-3p as therapeutictarget for hepatocellular carcinoma[J].Cancer Cell,2011,19(2):232-243.
[29]Shatseva T,Lee DY,Deng Z,et al.MicroRNA miR-199a-3p regulates cell proliferation and survival by targeting caveolin-2[J].J Cell Sci,2011,124(Pt 16):2826-2836.
[30]Shen Q,Cicinnati VR,Zhang X,et al.Role of microRNA-199a-5p and discoidin domain receptor 1 in human hepatocellular carcinoma invasion[J].Mol Cancer,2010,9:227.
[31]Xu N,Zhang J,Shen C,et al.Cisplatin-induced downregulation of miR-199a-5p increases drug resistance by activating autophagy in HCC cell[J].Biochem Biophys Res Commun,2012,423(4):826 -831.
[32]Su H,Yang JR,Xu T,et al.MicroRNA-101,down-regulated in hepatocellular carcinoma,promotes apoptosis and suppresses tumorigenicity[J].Cancer Res,2009,69(3):1135-1142.
[33]Zhang Y,Guo X,Xiong L,et al.MicroRNA-101 suppresses SOX9-dependent tumorigenicity and promotes favorable prognosis of humanhepatocellular carcinoma[J].FFBS Lett,2012,586(24):4362-4370.
[34]Shih TC,Tien YJ,Wen CJ,et al.MicroRNA-214 downregulation contributes to tumor angiogenesis by inducing secretion of the hepatoma-derivedgrowth factor in human hepatoma[J].J Hepatol,2012,57(3):584-591.
[35]Wang X,Chen J,Li F,et al.MiR-214 inhibits cell growth in hepatocellular carcinoma through suppression of β-catenin[J].Biochem Biophys Res Commun,2012,428(4):525-531.
[36]Yang L,Ma Z,Wang D,et al.MicroRNA-602 regulating tumor suppressive gene RASSF1A is overexpressed in hepatitis B virusinfected liver and hepatocellular carcinoma[J].Cancer Biol Ther,2010,9(10):803-808.
[37]van der Weyden L,TachibanaK K,Gonzalez MA,et al.The RASSF1A isoform of RASSF1p romotes microtubule stability and suppresses tumorigenesis[J].Mol Cell Biol,2005,25(18):8356 -8367.
[38]Chen X,Ba Y,Ma L,et al.Characterization of microRNAs in serum:a novel class of biomarkers for diagnosis of cancer and other diseases[J].Cell Res,2008,18(10):997-1006.
[39]Zhou J,Yu L,Gao X,et al.Plasma microRNA panel to diagnose hepatitis B virus-related hepatocellular carcinoma[J].J Clin Oncol,2011,29(36):4781-4788.
[40]Zhu Y,Lu Y,Zhang Q,et al.MicroRNA-26a/b and their host genes cooperate to inhibit the G1/S transition by activating the pRb protein[J].Nucleic Acids Res,2012,40(10):4615-4625.
[41]Tsai WC,Hsu PW,Lai TC,et al.MicroRNA-122,a tumor suppressor microRNA that regulates intrahepatic metastasis of hepatocellular carcinoma[J].Hepatology,2009,49(5):1571-1582.
[42]Lang Q,Ling C.MiR-124 suppresses cell proliferation in hepatocellular carcinoma by targeting PIK3CA[J].Biochem Biophys Res Commun,2012,426(2):247-252.
[43]Velagapudi SP,Gallo SM2,Disney MD3.Sequence-based design of bioactive small molecules that target precursor microRNAs[J]. Nat Chem Biol,2014,10(4):291-297.
10.3969/j.issn.1673-5412.2014.05.036
R735.7;R730.23
A
1673-5412(2014)05-0447-05
2014-03-26)
邢茜(1991-),女,碩士在讀,主要從事腫瘤內(nèi)科臨床及相關科研工作。F-mail:754968890@sjtu.edu.cn
陳思宇(1975-),女,博士,副主任醫(yī)師,碩士生導師,主要從事腫瘤內(nèi)科臨床及相關科研工作。F-mail:chensiyu@ 126.com