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      海水養(yǎng)殖細(xì)菌性病害檢測方法研究進(jìn)展

      2014-02-03 18:06:14肖婧凡張?jiān)d雷霽霖
      中國工程科學(xué) 2014年9期
      關(guān)鍵詞:弧菌細(xì)菌性水產(chǎn)

      肖婧凡,王 玥,張?jiān)d,雷霽霖

      (1.華東理工大學(xué)生物反應(yīng)器工程國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海200237;2.中國水產(chǎn)科學(xué)院黃海水產(chǎn)研究所,山東青島266071)

      1 前言

      21世紀(jì)人類社會(huì)面臨著“人口劇增、資源匱乏、環(huán)境惡化”三大問題的嚴(yán)峻挑戰(zhàn),隨著陸地資源的日益減少及天然漁業(yè)的日漸枯竭,水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)顯得日益重要。由于水土資源有限,從提高養(yǎng)殖面積來增加產(chǎn)量難以持續(xù)發(fā)展。因此,規(guī)?;?、集約化、高密度養(yǎng)殖模式逐漸成為我國海水魚類養(yǎng)殖業(yè)的發(fā)展主流。工廠化養(yǎng)殖模式和高密度網(wǎng)箱養(yǎng)殖模式也成為今后海水養(yǎng)殖的一個(gè)必然趨勢。

      隨著海水養(yǎng)殖業(yè)的不斷發(fā)展,各種病害問題日益突出,對(duì)養(yǎng)殖的產(chǎn)量及成長造成嚴(yán)重影響。目前,我國的海水養(yǎng)殖水產(chǎn)動(dòng)物的病害種類達(dá)200余種,常年養(yǎng)殖病害發(fā)病率達(dá)50%以上,損失率30%左右,估計(jì)每年因水產(chǎn)養(yǎng)殖病害問題而造成的直接經(jīng)濟(jì)損失就達(dá)百億元,并且還有上升的趨勢,病害問題已成為制約海水養(yǎng)殖業(yè)健康發(fā)展的重要因素[1]。根據(jù)2006年統(tǒng)計(jì)的我國水產(chǎn)養(yǎng)殖疾病種類的檢測結(jié)果可知:在128種病害中病毒性疾病17種,細(xì)菌性疾病61種,真菌性疾病4種,寄生蟲疾病28種,藻類性疾病6種,其他病害3種,不明病因9種[2],細(xì)菌性疾病的比例約占一半。由此可見,由細(xì)菌性感染引起的養(yǎng)殖魚類病害已成為造成我國水產(chǎn)養(yǎng)殖魚種經(jīng)濟(jì)損失的一個(gè)主要原因。

      2 國內(nèi)外海水養(yǎng)殖主要細(xì)菌性病害

      水產(chǎn)養(yǎng)殖病害研究一直是世界各國學(xué)者關(guān)注的熱點(diǎn),國外對(duì)養(yǎng)殖魚類病害的研究歷史較早,也較深入,其中針對(duì)水產(chǎn)養(yǎng)殖細(xì)菌性病害的研究占到很大比例,主要集中在造成較大經(jīng)濟(jì)損失的致病性弧菌、嗜水氣單胞菌、假單胞菌、愛德華氏菌等細(xì)菌性病原[3]。

      2.1 弧菌病

      弧菌病是國內(nèi)外海水養(yǎng)殖業(yè)中常見的疾病,常見的致病菌有鰻弧菌(Vibrio anguillarum)、副溶血弧菌(V.parahaemolyticus)、創(chuàng)傷弧菌(V.vulnificus)、哈維氏弧菌(V.harveyi)、溶藻弧菌(V.alginolyticus)、殺鮭弧菌(V.salmonicida)等,其中鰻弧菌是弧菌病的典型病原菌,在國內(nèi)外均對(duì)重要的經(jīng)濟(jì)養(yǎng)殖品種造成嚴(yán)重的病害。殺鮭弧菌為冷水弧菌病的病原,主要出現(xiàn)在加拿大和北歐國家(主要是挪威和英國),對(duì)大馬哈魚和鱈魚養(yǎng)殖造成了很大危害[4~6]。此外,哈維氏弧菌、創(chuàng)傷弧菌及溶藻弧菌也是海水養(yǎng)殖中常見的致病菌,對(duì)花鱸魚、石斑魚、鰻鱺、對(duì)蝦和大黃魚養(yǎng)殖造成巨大經(jīng)濟(jì)損失[7~9]。

      2.2 愛德華氏菌病

      由遲鈍愛德華氏菌(E.tarda)引起的愛德華氏菌病是一種危害巨大的魚類病害,在世界許多國家都有相關(guān)病例的報(bào)道,可感染多種魚類。目前遲鈍愛德華氏菌病已成為鰻鱺養(yǎng)殖中危害最大的一種病,2002年在中國北方大菱鲆養(yǎng)殖區(qū)出現(xiàn)E.tarda感染病例。到2004年,該病已呈頻繁暴發(fā)態(tài)勢,給大菱鲆養(yǎng)殖帶來巨大經(jīng)濟(jì)損失。據(jù)報(bào)道,大連地區(qū)養(yǎng)殖的大菱鲆由于E.tarda感染而引發(fā)的出血性腹水病的發(fā)病率高達(dá)70%~80%,體長10~15 cm的病魚死亡率高達(dá)90%~95%[10]。

      2.3 假單胞菌病

      鰻敗血假單胞菌(Pseudomonas anguilliseptica)被認(rèn)為是養(yǎng)殖魚種的重要病原。該菌在1972年被描述為紅點(diǎn)病的發(fā)病病原,造成養(yǎng)殖日本鰻大量死亡[11]。此后,該菌在臺(tái)灣、蘇格蘭和丹麥的歐洲鰻的養(yǎng)殖場被報(bào)道[12]。除感染鰻魚,該菌還是大菱鲆和黑斑小鯛魚種的新發(fā)病原[13],主要在冬季時(shí)低溫條件下發(fā)?。?6℃以下),感染此敗血癥的魚腹部膨大、表皮和內(nèi)臟出現(xiàn)出血潰瘍點(diǎn)。

      2.4 細(xì)菌性腎?。╞acterial kidney disease,BKD)

      BKD是由鮭魚腎桿菌(Renibacterium salmoninarum)造成的,對(duì)于淡水和海水養(yǎng)殖魚種有很高的致死率[14~16]。BKD在北美、日本、西歐和智利已有所報(bào)道,對(duì)太平洋鮭魚的經(jīng)濟(jì)效益影響尤其大。在出現(xiàn)感染的臨床癥狀前該病原菌能通過有性垂直傳播給下一代,目前主要的治療手段對(duì)此疾病都基本無效。

      3 國內(nèi)外海水養(yǎng)殖品種主要病害檢測方法

      針對(duì)以上養(yǎng)殖魚種主要細(xì)菌性病害,各國研究人員為開發(fā)快速、準(zhǔn)確、有效的診斷方法廣泛開展工作。筆者等將目前已報(bào)道的國內(nèi)、國外主要海水養(yǎng)殖細(xì)菌性病害檢測方法總結(jié)為以下幾種類型進(jìn)行敘述。

      3.1 基于微生物生理生化檢測的方法

      針對(duì)養(yǎng)殖魚種細(xì)菌性病原的檢測,最經(jīng)典的鑒定方法是對(duì)病原進(jìn)行分離純化,基于形態(tài)學(xué)檢測、生理學(xué)和通過一系列的生理生化實(shí)驗(yàn)實(shí)現(xiàn)對(duì)微生物的初步鑒定[17]。然而,這種方法耗時(shí)長、操作繁瑣,不利于細(xì)菌性病害的快速診斷。法國生物梅里埃公司于1970年開發(fā)出一系列微生物鑒定用生理生化檢測試劑盒,使細(xì)菌鑒定更簡單快捷。該系列試劑盒已成為國際公認(rèn)的鑒定細(xì)菌的參考標(biāo)準(zhǔn),目前在海水養(yǎng)殖魚類細(xì)菌性病害的診斷中,已將API系列試紙條檢測結(jié)果作為鑒定的輔助手段之一。Abdel-Aziz等[18]采用API 20NE生理生化檢測試劑盒與分子鑒定相結(jié)合,對(duì)導(dǎo)致埃及沿海養(yǎng)殖金頭鯛和歐洲海鱸大量死亡的病原進(jìn)行了鑒定,確定了溶藻弧菌、副溶血弧菌和美人魚發(fā)光桿菌殺魚亞種造成病害的主要病原。潘曉藝等[19]根據(jù)API20E結(jié)果結(jié)合16S rDNA和gyrB基因序列比對(duì),確定從發(fā)病養(yǎng)殖中華鱉肝臟分離得到的一株致病菌為遲鈍愛德華氏菌。

      除了API系列檢測試劑盒,針對(duì)一些特殊的細(xì)菌性病原還可以采取更為簡便的顯色培養(yǎng)技術(shù)[20]。該技術(shù)在培養(yǎng)基中加入細(xì)菌特異性酶的顯色底物,使菌落出現(xiàn)不同顏色而達(dá)到分離鑒定的目的,如硫檸膽蔗瓊脂(thiosulfate citrate bile salts sucrose agar,TCBSagar)已經(jīng)被廣泛用于霍亂弧菌和副溶血弧菌的分離鑒定。近年來還有很多新型顯色培養(yǎng)基被開發(fā)出來,如選擇性顯色弧菌培養(yǎng)基(vibriobiochrome medium,BCVM),副溶血弧菌在其上生長形成的菌落呈紫色,而其他弧菌則呈藍(lán)綠色,可以更有效的將副溶血弧菌與其他致病性弧菌區(qū)分開來。目前這種方法不僅被廣泛用于人類病原菌的初步分離鑒定,也越來越多地被應(yīng)用到水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)病害檢測中。

      3.2 基于分子生物學(xué)技術(shù)的檢測方法

      基于分子生物學(xué)技術(shù)的養(yǎng)殖魚類細(xì)菌性病害的檢測方法在已有報(bào)道文獻(xiàn)中占到50%以上,該方法與傳統(tǒng)的生理生化檢測方法相比簡潔、快速、靈敏度高、特異性強(qiáng),可用于細(xì)菌性病害疾病的預(yù)警和診斷。

      3.2.1 聚合酶鏈反應(yīng)技術(shù)

      聚合酶鏈反應(yīng)或稱多聚酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR),是根據(jù)生物信息學(xué)等方法尋找特定病原菌特異性基因序列設(shè)計(jì)特異性引物,擴(kuò)增后產(chǎn)生特異性片段從而達(dá)到檢測病原菌的目的[21]。目前多數(shù)文獻(xiàn)針對(duì)不同細(xì)菌性病害的特異性基因序列設(shè)計(jì)引物,建立了靈敏有效的檢測方法。Pinto等[22]以toxR,tlh,tdh和trh作為目的基因?qū)崿F(xiàn)了副溶血弧菌的檢測;Lee等[23]以創(chuàng)傷弧菌溶血素為靶標(biāo),設(shè)計(jì)特異性引物建立其PCR檢測方法。隨著PCR技術(shù)的成熟,基于多種病菌的同時(shí)檢測的多重PCR技術(shù)逐漸發(fā)展起來。Kong等[24]建立了一種以嗜水氣單胞菌的氣單胞菌溶素基因、弗氏志賀菌ipaH基因、鼠傷寒沙門氏菌ipaB基因、霍亂弧菌epsM基因和副溶血弧菌16 S-23 S rDNA為目標(biāo)基因,設(shè)計(jì)六對(duì)擴(kuò)增后可產(chǎn)生6種不同長度的片段的特異性引物來快速同時(shí)檢測水產(chǎn)品中這6種致病菌。此檢測方法可在12 h內(nèi)完成,檢測限可以達(dá)到100~102CFU/m L。

      3.2.2 環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(loop-mediated isothermal amplification, LAMP)

      由于傳統(tǒng)的PCR技術(shù)需要精確控制擴(kuò)增反應(yīng)各階段溫度,一定程度上限制了其在水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)中的應(yīng)用。Notomi等[25]于2000年提出的一種只需在恒溫條件下就可以進(jìn)行核酸擴(kuò)增的LAMP技術(shù)。LAMP通過設(shè)計(jì)兩對(duì)特別的引物(內(nèi)引物和外引物)在一種有鏈置換活性的DNA聚合酶作用下進(jìn)行的一種自動(dòng)鏈置換DNA合成反應(yīng)。因?yàn)镈NA在65℃左右處于動(dòng)態(tài)平衡狀態(tài),任何一個(gè)引物向雙鏈DNA的互補(bǔ)部位進(jìn)行堿基配對(duì)延伸時(shí),另一條鏈就會(huì)解離成為單鏈,所以該技術(shù)在恒溫下就可以進(jìn)行核酸擴(kuò)增[26],已被用于多種水產(chǎn)養(yǎng)殖細(xì)菌性病害的檢測。Yeh等[27]根據(jù)鯰魚愛德華氏菌eip18基因設(shè)計(jì)引物進(jìn)行LAMP擴(kuò)增,在65℃反應(yīng)60m in后可得到鯰魚愛德華氏菌基因特異性條帶,檢測限可達(dá)到20 CFU/m L,可以從養(yǎng)殖水體樣本中實(shí)現(xiàn)鯰魚愛德華氏菌的檢出。Surasilp等[28]將LAMP與橫向流動(dòng)試紙條分析相結(jié)合,以rpoS基因?yàn)榘谢蚪⒘艘环NLAMP-LFD方法來檢測創(chuàng)傷弧菌,對(duì)于純培養(yǎng)檢測限可達(dá)到1.5×103CFU/m L。

      3.2.3 實(shí)時(shí)定量PCR技術(shù)(quantitative real-time polymerase chain reaction, qRT-PCR)

      qRT-PCR目前也被廣泛用于水產(chǎn)養(yǎng)殖病害的定量檢測。該技術(shù)特異性強(qiáng)、靈敏度高、重復(fù)性好,可同時(shí)檢測同一樣本中不同靶序列。Blackstone等[29]以TaqMan探針為基礎(chǔ),采用qRT-PCR技術(shù)以副溶血弧菌特異性tdh基因來檢測副溶血弧菌,檢測限可達(dá)到每PCR體系1 CFU。Panicker等[30]針對(duì)vvh基因設(shè)計(jì)寡核苷酸引物,建立了以SYBRGreen I染料為基礎(chǔ)的qRT-PCR快速、特異性地檢測牡蠣組織勻漿和墨西哥灣水體中的創(chuàng)傷弧菌。該方法對(duì)于純基因組DNA的最低檢測量為1 pg,水體中檢測限可達(dá)10CFU/m L。許龍巖等[31]根據(jù)副溶血弧菌toxR基因和tdh基因設(shè)計(jì)引物對(duì)副溶血弧菌建立了一種基于TaqMan探針的雙重?zé)晒釶CR檢測法。該方法具有良好的特異性,水體中常見非副溶血弧菌細(xì)菌均呈陰性,副溶血弧菌的菌濃度與Ct值的反向線性關(guān)系良好,檢測限為3.6×102CFU/m L。

      3.2.4 基因探針技術(shù)

      自1975年DNA探針雜交技術(shù)被首次提出,基因探針技術(shù)已得到了很大的進(jìn)步和發(fā)展。該技術(shù)的基本依據(jù)是核酸雜交,針對(duì)決定病原菌生物體特性的DNA序列設(shè)計(jì)特異性標(biāo)記的DNA或RNA探針,就可以通過樣品與探針雜交是否形成雜交分子來檢測是否存在目標(biāo)病原菌?;蛱结樀臉?biāo)記方法主要有放射性標(biāo)記法和非放射性標(biāo)記法兩種。目前常用的標(biāo)記物為堿性磷酸酶(AP)和地高辛(DIG)。該技術(shù)除用于人類病原診斷,也被用于水產(chǎn)養(yǎng)殖病原檢測中。周鳳麗等[32]針對(duì)溶藻弧菌膠原蛋白酶基因和外膜蛋白基因設(shè)計(jì)了兩對(duì)引物對(duì)溶藻弧菌進(jìn)行PCR擴(kuò)增,對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物以DIG標(biāo)記制備基因探針用于檢測溶藻弧菌,發(fā)現(xiàn)膠原蛋白酶基因探針有較高特異性,可用于對(duì)溶藻弧菌的檢測鑒定分析。Raghunath等[33]用AP來標(biāo)記基因探針檢測海洋食品中的trh+副溶血弧菌,對(duì)40株副溶血弧菌、45株其他弧菌和55株非弧菌進(jìn)行探針雜交,特異性達(dá)100%,檢測限達(dá)到5.0×102~3.4×103CFU/g。

      3.3 基于免疫學(xué)相關(guān)技術(shù)的檢測方法

      除分子生物學(xué)技術(shù)外,免疫學(xué)相關(guān)技術(shù)也被廣泛用于水產(chǎn)養(yǎng)殖品種病害診斷?;诿庖邔W(xué)相關(guān)的檢測方法利用抗原抗體特異性結(jié)合的原理,目前應(yīng)用較多的有酶聯(lián)免疫吸附法和免疫層析技術(shù)。

      3.3.1 酶聯(lián)免疫吸附法(enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)

      ELISA技術(shù)最早出現(xiàn)于1971年,該技術(shù)的基礎(chǔ)是抗原抗體特異性反應(yīng),常用的ELISA方法有競爭法測抗原、間接法測抗體和雙抗體夾心法,其特異性取決于抗體的特異性[34]。Sm ith等[35]最早將ELISA應(yīng)用于魚癤病的診斷,靈敏度達(dá)102CFU/m L。Kumar等[36]建立了快速檢測水產(chǎn)品中副溶血弧菌的ELISA方法。吳曉春等[37]以魚腸道弧菌為抗原制備多克隆抗體,用ELISA法來檢測對(duì)海水魚造成危害的弧菌屬致病菌,靈敏度可達(dá)到每孔105CFU/m L。

      3.3.2 免疫層析技術(shù)

      傳統(tǒng)ELISA技術(shù)操作繁瑣、耗時(shí)長,限制了其在養(yǎng)殖場現(xiàn)場檢測中的應(yīng)用。目前,研究工作者將免疫層析技術(shù)應(yīng)用于快速檢測,如側(cè)向?qū)游黾夹g(shù)(lateral-flow technology,LFT)被用于快速檢測試紙條的研發(fā)。與傳統(tǒng)檢測方法相比,該檢測技術(shù)具有快速、簡便、價(jià)格低廉等優(yōu)點(diǎn)。LFT的原理與ELISA相似,以固定了捕獲蛋白(通常為抗體或抗原)的硝酸纖維素膜作為基板,采用乳膠、膠體金、碳以及新型材料(上轉(zhuǎn)磷光或量子點(diǎn))作為標(biāo)記物對(duì)抗體或抗原進(jìn)行標(biāo)記,其檢測結(jié)果可以用肉眼直接觀測。目前已商業(yè)化用于診斷的免疫層析試紙產(chǎn)品大多為以納米級(jí)膠體金顆粒為標(biāo)記材料。此技術(shù)操作簡便,一般5~15min就可得到結(jié)果,已廣泛用于藥殘檢測、食品安全、臨床診斷中,也有用于水產(chǎn)養(yǎng)殖品種病害檢測的報(bào)道。Sithigorngul等[38]制備了抗哈維氏弧菌的鼠單克隆抗體和羊多克隆抗體,將這兩種抗體用于膠體金免疫層析試紙條的制備,結(jié)果表明樣品檢測量只需100μL,針對(duì)哈維氏弧菌的檢測限可達(dá)106CFU/m L以上,而檢測時(shí)間小于15m in。秦璞等[39]利用膠體金免疫層析技術(shù)研制了一種快速檢測遲鈍愛德華氏菌的試紙條,該試紙條對(duì)遲鈍愛德華氏菌有良好特異性,5~10m in就可以得到檢測結(jié)果,敏感度達(dá)到105CFU/m L。

      近年來,出現(xiàn)了基于新型材料和免疫層析技術(shù),如目前報(bào)道較多的有量子點(diǎn)(quantum dots,QDs)、上轉(zhuǎn)磷光(up-converting phosphor,UCP)、納米磁珠、熒光微球等標(biāo)記抗體的免疫層析。其中量子點(diǎn)與抗體偶聯(lián)后用于免疫層析顯示出良好的穩(wěn)定性和熒光強(qiáng)度,在人類病原菌檢測上已經(jīng)有所應(yīng)用。Tully等[40]初步建立了一種以量子點(diǎn)標(biāo)記抗體檢測李斯特單增桿菌(Listeria monocytogenes)表面蛋白InlB,檢測限可以達(dá)到12 ng/m L。上轉(zhuǎn)磷光材料則因其背景干擾小、靈敏度高等特點(diǎn),被應(yīng)用于耶爾森氏菌和布魯氏菌[41,42]的檢測中,其靈敏度是膠體金免疫層析技術(shù)的10倍。目前,以上新型材料還未見用于魚類病原菌檢測的報(bào)道,但這些材料在未來檢測試紙條研制中顯示出良好的應(yīng)用前景。

      3.4 芯片技術(shù)

      隨著近年來生物芯片技術(shù)的發(fā)展,以及病害檢測對(duì)大規(guī)模、高通量的要求,芯片技術(shù)越來越多被用到病原菌的檢測中。其中,應(yīng)用最多的是基因芯片和蛋白芯片技術(shù)?;蛐酒夹g(shù)可以高通量、平行化對(duì)多種靶基因進(jìn)行準(zhǔn)確鑒定,為菌種鑒定提供了技術(shù)平臺(tái)。Panicker等[43]也通過多重PCR與DNA芯片相結(jié)合建立了一種主要針對(duì)創(chuàng)傷弧菌、霍亂弧菌和副溶血弧菌檢測沿海水域和甲殼類動(dòng)物中的致病弧菌的方法,檢測靈敏度為102~103CFU/m L。

      蛋白芯片又稱蛋白微陣列,蛋白芯片是將各蛋白有序排列固定在載體上,之后用特異性標(biāo)記的抗體或抗原蛋白與微陣列作用,經(jīng)過掃描后確定蛋白間是否有相互作用。與基因芯片相比,蛋白芯片的研究仍處于摸索階段。究其原因是由于蛋白質(zhì)分子本身結(jié)構(gòu)功能的復(fù)雜性與特殊性造成的。目前蛋白芯片用于水產(chǎn)養(yǎng)殖細(xì)菌性病害檢測的報(bào)道較少。

      4 現(xiàn)有海水養(yǎng)殖細(xì)菌性病害檢測方法的利弊及發(fā)展方向

      綜上所述,目前已報(bào)道多種海水養(yǎng)殖細(xì)菌性病害的檢測方法,這些方法各有優(yōu)缺點(diǎn),相比較而言,基于細(xì)菌富集培養(yǎng)及生理生化指標(biāo)檢測的方法耗時(shí)、費(fèi)力、精度和可靠性有限;基于分子生物學(xué)技術(shù)的檢測方法雖然靈敏度高、特異性強(qiáng)、快速準(zhǔn)確,能夠檢測出樣品中的微量核酸,但是需要特定儀器設(shè)備并由專業(yè)技術(shù)人員操作,無法應(yīng)用于基層養(yǎng)殖單位;基于免疫學(xué)技術(shù)ELISA檢測方法操作流程耗時(shí)繁瑣,無法實(shí)現(xiàn)對(duì)樣品的實(shí)時(shí)檢測。目前廣泛采用的膠體金免疫層析技術(shù)雖然操作簡便、耗時(shí)短、不需要專業(yè)技術(shù)人員操作,可以用于基層養(yǎng)殖場現(xiàn)場檢測,但靈敏度不夠高,導(dǎo)致一些發(fā)病癥狀不明顯或特異的病害無法在感染初期檢出并采取有效措施;基因芯片可高通量并行檢測,人為操作的誤差小,然而也存在價(jià)格昂貴等缺點(diǎn)。蛋白芯片技術(shù)雖然有著高特異性、高通量的特點(diǎn),然而蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)復(fù)雜,合成困難,且蛋白較DNA更脆弱,易變性失活從而影響其性質(zhì)和功能。

      如何選擇有效的水產(chǎn)病害檢測方法,應(yīng)根據(jù)施用單位的情況而異。對(duì)于具有一定實(shí)驗(yàn)室條件的水產(chǎn)品檢驗(yàn)檢疫單位或大型養(yǎng)殖企業(yè),可以采用分子生物學(xué)技術(shù),輔助以生理生化檢測手段,實(shí)現(xiàn)常規(guī)樣品的檢測。對(duì)于大量樣品,則可采用芯片技術(shù)進(jìn)行高通量檢測,用于病害預(yù)警或附加值較高的水產(chǎn)品食品安全檢測。由于芯片制備復(fù)雜且檢測設(shè)備成本較高,影響了該技術(shù)的推廣。開發(fā)低成本芯片制備技術(shù)同時(shí)降低檢測設(shè)備成本是今后的發(fā)展方向。針對(duì)基層養(yǎng)殖單位或個(gè)體養(yǎng)殖戶,免疫層析試紙條因其操作簡單快速,攜帶方便而顯示出極大的優(yōu)勢,但該技術(shù)靈敏度有限,無法實(shí)現(xiàn)病害感染早期診斷,限制了其在海水養(yǎng)殖細(xì)菌性病害檢測方面的進(jìn)一步應(yīng)用。制備具有更好親和力的單克隆抗體,采用新型抗體標(biāo)記材料配合相應(yīng)的便攜式熒光讀取器,不僅有助于免疫層析試紙條靈敏度的提高,還可以用于病害的半定量分析及多元化檢驗(yàn)。目前已有研究人員研制出靈敏度是膠體金免疫層析試紙條10~100倍的免疫層析試紙條,雖然還處于實(shí)驗(yàn)室階段,且生產(chǎn)成本還有待進(jìn)一步降低,但相信未來此類產(chǎn)品將成為廣大養(yǎng)殖基層單位病害檢測的主流產(chǎn)品。

      [1] 董 波.我國海水養(yǎng)殖動(dòng)物病害發(fā)生現(xiàn)狀及其基礎(chǔ)研究進(jìn)展[J].生物技術(shù)世界,2005(4):29-30.

      [2] 鄒瑗徽.我國水產(chǎn)養(yǎng)殖病害問題研究[J].科技經(jīng)濟(jì)市場,2006(8):44.

      [3] Toranzo A E,Magarinos B,Romalde JL.A review of the main bacterial fish diseases in mariculture systems[J].Aquaculture,2005,246(1):37-61.

      [4] Bruno DW.Histopathology of bacterial kidney disease in laboratory infected rainbow trout,Salmo gairdneri Richardson,and Atlantic salmon,Salmo salar L.,with reference to naturally infected fish[J].Journal of Fish Diseases,1986,9(6):523-537.

      [5] Bruno DW,Munro A LS.Uniformity in the biochemical properties ofRenibacterium salmoninarumis olatesobtained from several sources[J].FEMSM icrobiology Letters,1986,33(3):247-250.

      [6] Egidius E,Wiik R,Andersen K,et al.Vibrio salmonicidasp.nov.,a new fish pathogen[J].International Journal of Systematic Bacteriology,1986,36(4):518-520.

      [7] 張曉君,房 海,陳翠珍,等.致病性哈氏弧菌生物學(xué)及分子特征[J].中國獸醫(yī)學(xué)報(bào),2009(9):1120-1124.

      [8] Horseman M A,Surani S.A comprehensive review ofVibrio vulnificus:an important cause of severe sepsis and skin and soft-tissue infection[J].International Journal of Infectious Diseases,2011,15(3):157-166.

      [9] 陳 強(qiáng),鄢慶枇,馬 甡.溶藻弧菌致病性研究進(jìn)展[J].海洋科學(xué),2006,30(8):83-89.

      [10] 王 斌,孫 岑,范 薇,等.養(yǎng)殖大菱鲆出血性敗血癥病原菌致病性的研究及鑒定[J].大連水產(chǎn)學(xué)院學(xué)報(bào),2006,21(2):100-104.

      [11] Wakabayashi H,Egusa S.Characteristics of aPseudomonassp.from an epizootic of pond-cultured eels(Anguilla japonica)[J].Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries,1972,38(6):577-587.

      [12] Stewart D J,Wold emariam K,Dear G,et al.An outbreak of‘Sekiten-byo’among cultured European eels,Anguilla anguillaL.,in Scotland[J].Journal of Fish Diseases,1983,6(1):75-76.

      [13] Magari?os B,Romalde JL,López-Romalde S,et al.Pathobiological characterisation ofPhotobacterium damselae subsp.piscicida isolated from cultured sole(Solea senegalensis)[J].Bulletin-European Association of Fish Pathologists,2003,23(4):183-190.

      [14] Matejusova I,Bain N,Colquhoun D J,et al.Multilocus variable-number tandem-repeatgeno typing ofRenibacterium salmoninarum,a bacterium causing bacterial kidney disease in salmonid fish[J].BMC Microbiology,2013,13:285-293.

      [15] Murraya A G,Munroa L A,Wallace IS,et al.Epidemiology ofRenibacterium salmoninarumin Scotland and the potential for compart mentalised management of salmon and trout farming areas[J].Aquaculture,2012,324:1-13.

      [16] Hall LM,Duguid S,Wallace IS,et al.Estimating the prevalence ofRenibacterium salmoninarum-infected salmonid production sites[J].Journal of Fish Diseases,2014.Doi:10.1111/jfd.12234.

      [17] 夏 凡,楊麗君,王 靜,等.病原性海洋弧菌致病機(jī)理及其快速檢測方法研究進(jìn)展[J].食品工業(yè)科技,2011,32(1):366-376.

      [18] Abdel-Aziz M,Eissa A E,Hanna M,et al.Identifying some pathogenic Vibrio/Photobacterium species during massmortalities of cultured Gilthead seabream(Sparus aurata)and European seabass(Dicentrarchus labrax)from some Egyptian coastal provinces[J].International Journal of Veterinary Science and Medicine,2013,1(2):87-95.

      [19] 潘曉藝,郝貴杰,姚嘉贇,等.中華鱉愛德華菌病病原菌的分離鑒定及致病因子研究[J].淡水漁業(yè),2011,40(6):40-45.

      [20] Duan J,Liu C,Su Y C.Evaluation of a double layer agar plate for direct enumeration ofVibrio parahaemolyticus[J].Journal of Food Science,2006,71(2):77-82.

      [21] 張世秀,張新中,謝珍玉,等.分子生物學(xué)技術(shù)在水產(chǎn)養(yǎng)殖動(dòng)物細(xì)菌性病原檢測中的應(yīng)用[J].海南大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2007,25(1):96-100.

      [22] Di Pinto A,Ciccarese G,De Corato R,et al.Detection of pathogenicVibrio parahaemolyticusin southern Italian shellfish[J].Food Control,2008,19(11):1037-041.

      [23] Lee SE,Kim SY,Kim S J,et al.Direct identification ofVibriovulnificusin clinical specimens by nested PCR[J].Journal of Clinical Microbiology,1998,36(10):2887-2892.

      [24] Kong RY C,Lee SK Y,Law TWF,et al.Rapid detection of six types of bacterial pathogens in marine waters by multiplex PCR[J].Water Research,2002,36(11):2802-2812.

      [25] Notom i T,Okayama H,Masubuchi H,et al.Loop-mediated isothermal amplification of DNA[J].Nucleic Acids Research,2000,28(12):e63.

      [26] 黃火清,郁 昂.環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)的研究進(jìn)展[J].生物技術(shù),2012,22(3):90-94.

      [27] Yeh H Y,Shoemaker C A,Klesius PH.Evaluation of a loop mediated isothermal amplification method for rapid detection of channel catfishE.ictaluruspunctatus important bacterial pathogenEdwardsiella ictaluri[J].Journal of Microbiological Methods,2005,63(1):36-44.

      [28] Surasilp T,LongyantS,Rukpratanporn S,et al.Rapid and sensitive detection ofVibrio vulnificusby loop-mediated isothermal amplification combined with lateral flow dipstick targeted torpoSgene[J].Molecular and Cellular Probes,2011,25(15):8e163.

      [29] Blackstone G M,Nordstrom J L,Vickery M C,et al.Detection of pathogenicVibrio parahaemolyticusin oyster enrich-ments by real time PCR[J].Journal of Microbiological Methods,2003,53(2):149-155.

      [30] Panicker G,Myers M L,Bej A K.Rapid detection ofVibrio vulnificusin shellfish and Gulf of Mexico water by real-time PCR[J].Applied and Environmental Microbiology,2004,70(1):498-507.

      [31] 許龍巖,袁慕云,曹際娟,等.TaqMan探針雙重?zé)晒釶CR法檢測副溶血性弧菌[J].食品科學(xué),2013,34(18):263-266.

      [32] 周鳳麗,簡紀(jì)常,吳灶和.地高辛標(biāo)記的DNA探針制備及其應(yīng)用于溶藻弧菌的檢測[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2009(4):459-462.

      [33] Raghunath P,Pradeep B,Karunasagar I,etal.Rapid detection and enumeration of trh-carryingVibrio parahae molyticuswith the alkaline phosphatase-labelled oligonucleotide probe[J].Environmental Microbiology,2007,9(1):266-270.

      [34] 張曉輝,鄧志平,何 豐,等.ELISA技術(shù)在水產(chǎn)養(yǎng)殖病害診斷和海洋生物毒素檢測中的應(yīng)用進(jìn)展[J].海洋學(xué)研究,2009,26(4):79-85.

      [35] Smith P,Davey S.Evidence for the competitive exclusion of Aeromonas salmonicida from fish with stress-inducible furunculosis by a fluorescent pseudo monad[J].Journal of Fish Diseases,1993,16(5):521-524.

      [36] Kumar B K,Raghunath P,Devegowda D,etal.Development of monoclonal antibody based sandw ich ELISA for the rapid detection of pathogenicVibrio parahae molyticusin seafood[J].Journal of Microbiological Methods,2011,145(1):244-249.

      [37] 吳曉春,鄧 燈,程順峰,等.魚腸道弧菌間接ELISA快速檢測法的建立[J].水產(chǎn)科學(xué),2013,32(5):284-288.

      [38] Sithigorngul P,Rukpratanporn S,Pecharaburanin N,et al.A simple and rapid immunochromatographic test strip for detection of pathogenic isolates ofVibrio harveyi[J].Journal of Microbiological Methods,2007,71(3):256-264.

      [39] 秦 璞,胡 曉,張?jiān)陉?,?魚類致病性遲鈍愛德華氏菌膠體金快速檢測試紙的研制[J].華東理工大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2011,37(3):330-334.

      [40] Tully E,Hearty S,Leonard P,et al.The development of rapid fluorescence-based immunoas says,using quantum dot-labelled antibodies for the detection ofListeriamonocy togenescell surface proteins[J].International Journal of Biological Macromolecules,2006,39:127-134.

      [41] Qu Qing,Zhu Ziwen,Wang Yufei,et al.Rapid and quantitative detection of Brucella by up-converting phosphor technology-based lateral-flow assay[J].Journal of Microbiology Methods,2009,79(1):121-123.

      [42] Pyo D,Yoo J.New trends in fluorescence immunochromatography[J].Journalof Immunoassay and Immuno chemistry,2012,33(2):203-222.

      [43] Panicker G,Call D R,Krug M J,etal.Detection of pathogenicVibriospp.in shellfish by using multiplex PCR and DNA microarrays[J].Applied and Environmental Microbiology,2004,70(12):7436-7444.

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