• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      高效液相色譜法測(cè)定紫蘇中5 種有機(jī)酸和黃酮的含量

      2014-03-08 11:01:53秦紅英周光明彭貴龍李俊平
      食品科學(xué) 2014年14期
      關(guān)鍵詞:草素木犀紫蘇

      秦紅英,周光明*,彭貴龍,李俊平

      (西南大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,發(fā)光與實(shí)時(shí)分析教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,重慶 400715)

      高效液相色譜法測(cè)定紫蘇中5 種有機(jī)酸和黃酮的含量

      秦紅英,周光明*,彭貴龍,李俊平

      (西南大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,發(fā)光與實(shí)時(shí)分析教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,重慶 400715)

      目的:建立以甲醇溶液為萃取劑,結(jié)合超聲輔助萃取,利用高效液相色譜法同時(shí)分離測(cè)定紫蘇中的咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素5 種有效成分的方法。方法:采用Phenomenex C18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相為甲醇-0.1%冰醋酸溶液,采用梯度洗脫程序;流速1 mL/min;紫外檢測(cè)波長(zhǎng)320 nm;柱溫35 ℃。結(jié)果:該方法對(duì)咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素分別在0.001 22~61.00(r=0.999 99)、0.001 06~53.00(r=0.999 99)、0.001 28~64.00(r=0.999 91)、0.001 20~60.00(r=0.999 94)、0.001 12~56.00 μg/mL(r=0.999 95)范圍內(nèi)線(xiàn)性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)(r)均大于0.999 91,檢出限(RSN=3)依次是:0.101 9、0.392 6、0.355 9、0.286 2、0.202 5 ng/mL;樣品回收率為95.79%~101.41%。結(jié)論:本法操作簡(jiǎn)單快速、定量準(zhǔn)確、靈敏度高、成本低、且對(duì)環(huán)境友好,為紫蘇中咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素的分離檢測(cè)提供了一個(gè)有效的方法。

      黃酮;有機(jī)酸;超聲輔助萃取;高效液相色譜法;紫蘇

      紫蘇(Perilla frutescens)為唇形科紫蘇屬(Perilla frutescens (L.) Britton)植物紫蘇全草,又名白蘇、赤蘇等,氣清香,味微辛,具有止咳平喘、解表散寒、行氣和胃、理氣寬中、止痛安胎等功效,主要用于痰壅氣逆、咳嗽嘔惡、風(fēng)寒感冒、妊娠嘔吐、胃脘疼痛、胸膈痞悶、魚(yú)蟹中毒等病癥[1]?,F(xiàn)代藥理學(xué)研究證明,紫蘇是一種極具營(yíng)養(yǎng)價(jià)值的保健資源[2],主要含有黃酮類(lèi)化合物、迷迭香酸、咖啡酸、阿魏酸等多種生物活性成分[3-5],具有良好的抗氧化[6-7]、抗癌[8]、抗炎[9]、抗菌[10]、抗過(guò)敏、保肝[11-12]、降血脂[13]、調(diào)節(jié)血糖[14]等藥理作用。目前雖已有紫蘇中相關(guān)活性成分的測(cè)定研究報(bào)道,如Chen等[15]報(bào)道了高效液相色譜法分析紫蘇中的三萜類(lèi)化合物的方法,馬堯等[16]報(bào)道了紫外分光光度法測(cè)定紫蘇中總黃酮含量的方法,黃亮輝等[17]報(bào)道了高速逆流色譜分離純化紫蘇葉中迷迭香酸的方法;但同時(shí)分離測(cè)定紫蘇中有機(jī)酸和黃酮的方法尚未見(jiàn)報(bào)道,本研究采用超聲輔助萃取及高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)法分離同時(shí)測(cè)定了紫蘇中咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素5 種有效成分。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      紫蘇原藥材(經(jīng)西南大學(xué)周光明教授鑒定) 當(dāng)?shù)厮幏?;咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素?duì)照品(純度均≥99%) 上海晶純實(shí)業(yè)有限公司;1-丁基-3-甲基咪唑六氟磷酸鹽(純度≥99%) 中國(guó)科學(xué)院蘭州化學(xué)物理研究所;甲醇、乙醇、冰醋酸(均為分析純) 重慶川東化工有限公司化學(xué)試劑廠;磷酸(分析純) 成都市科龍化工試劑廠。

      1.2 儀器與設(shè)備

      LC-20AT液相色譜輸液泵、SPD-20A紫外檢測(cè)器、CTO-10AS柱溫箱、LC-Solution色譜數(shù)據(jù)處理系統(tǒng) 日本島津公司;KH-3200B型超聲波清洗器 昆山禾創(chuàng)超聲儀器有限公司;TGL-16G高速離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器廠;SZ-2自動(dòng)雙重純化水蒸餾器 上海瀘西分析儀器廠有限公司;LIDA pH計(jì) 上海理達(dá)儀器廠;FA2004A型分析天平 上海精天電子儀器有限公司。

      1.3 方法

      1.3.1 色譜條件

      色譜柱為Phenomenex C18(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相:A為體積分?jǐn)?shù)0.1%冰醋酸溶液,B為甲醇;梯度洗脫程序:0~5 min,45%~53% B;5~10 min,53%~55% B;10~15 min,55%~60% B;15~20 min,60%~45% B。流速1 mL/min;進(jìn)樣量20 μL;檢測(cè)波長(zhǎng)320 nm;柱溫35 ℃。

      1.3.2 對(duì)照品溶液的配制

      對(duì)照品溶液的制備:分別精密稱(chēng)取咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素對(duì)照品適量,甲醇溶解,分別配制成610 μg/mL咖啡酸、530 μg/mL阿魏酸、640 μg/mL迷迭香酸、600 μg/mL木犀草素、560 μg/mL芹菜素的溶液對(duì)照品儲(chǔ)備液,避光保存,待用。

      混合對(duì)照品溶液:分別準(zhǔn)確吸取3 種對(duì)照品儲(chǔ)備液適量,用流動(dòng)相配制成一系列不同質(zhì)量濃度的混合對(duì)照品溶液,置于冰箱(4 ℃)內(nèi)避光保存?zhèn)溆谩?/p>

      1.3.3 供試品溶液的制備

      將紫蘇于60 ℃干燥至恒質(zhì)量后粉碎,過(guò)60 目篩(0.5~1.2 mm),干燥條件下保存?zhèn)溆?。?zhǔn)確稱(chēng)取0.1 g紫蘇粉末,加入10 mL甲醇,浸泡4 h,超聲萃取30 min,過(guò)濾取濾液,離心10 min(3 500 r/min),取上清液經(jīng)0.45 μm有機(jī)濾膜過(guò)濾,進(jìn)樣分析。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 色譜條件的選擇

      為選擇最佳的檢測(cè)條件,本實(shí)驗(yàn)比較了CH3OHH2O、CH3OH-CH3COOH、CH3CN-CH3COOH,CH3CNH3PO4體系對(duì)5 種目標(biāo)分析物的分離效果。當(dāng)流動(dòng)相為CH3OH-H2O體系時(shí),調(diào)節(jié)流動(dòng)相比例,咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸3 種組分峰不能完全分離,且木犀草素、芹菜素2 種組分峰拖尾嚴(yán)重。當(dāng)流動(dòng)相為CH3OH-CH3COOH時(shí),在合適的梯度條件下,5 種目標(biāo)物出峰時(shí)間適宜,分離度良好,且峰形對(duì)稱(chēng)性好。在以CH3CN-CH3COOH、CH3CN-H3PO4為流動(dòng)相時(shí),不斷改變梯度條件,5 種組分峰峰形和分離度均未有較大改善,且CH3CN毒性遠(yuǎn)大于甲醇,而H3PO4易損壞色譜柱,故選擇CH3OHCH3COOH體系為流動(dòng)相。在色譜柱允許的pH值范圍內(nèi),考察了醋酸比例對(duì)峰形的影響,當(dāng)醋酸比例為0.1%時(shí),峰形最佳,分離度均大于2.0(圖1),故最終選擇CH3OH-0.1% CH3COOH體系為流動(dòng)相。

      圖1 混合對(duì)照品溶液HPLC圖Fig.1 Chromatogram of standard solution mixture

      2.2 提取溶劑的選擇

      為了選擇合適的提取劑提高萃取率,本實(shí)驗(yàn)分別采用離子液體[BMIm]PF6、[OMIm]PF6、[HMIm]PF6以及甲醇、乙醇溶液為提取劑,在相同萃取條件下比較對(duì)目標(biāo)分析物的提取效果。結(jié)果表明,以乙醇和離子液體為萃取劑時(shí),5 種目標(biāo)分析物的提取率下降,且離子液體會(huì)影響HPLC分析時(shí)的分離度;當(dāng)以甲醇溶液作為提取劑時(shí),咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素的提取率均明顯提高。故本實(shí)驗(yàn)最終采用甲醇溶液作為萃取劑。此外,本實(shí)驗(yàn)還考察了不同浸泡時(shí)間對(duì)提取效果的影響,通過(guò)浸泡不同時(shí)間后提取分析比較,表明浸泡4 h提取效果最佳。

      2.3 固液比的選擇

      為了得到最佳的提取效果,本實(shí)驗(yàn)考察不同的固液比對(duì)提取率的影響。固液比分別為1∶20、1∶30、1∶50、1∶80、1∶100(g/mL)時(shí),當(dāng)固液比為1∶80(g/mL)時(shí)5 種目標(biāo)分析物的提取率顯著提高,因此,本實(shí)驗(yàn)以1∶80(g/mL)為最佳固液比(圖2)。

      圖2 紫蘇供試品溶液HPLC圖Fig.2 Chromatogram of Perilla frutescens sample

      2.4 線(xiàn)性關(guān)系的考察

      分別精密量取1.3.2節(jié)混合對(duì)照品溶液,用甲醇稀釋至不同質(zhì)量濃度。從低質(zhì)量濃度到高質(zhì)量濃度,依次進(jìn)樣,每個(gè)質(zhì)量濃度進(jìn)樣3 次,每次20 μL,按1.3.1節(jié)色譜條件進(jìn)行HPLC分析,以峰面積(Y)為縱坐標(biāo),對(duì)照品質(zhì)量濃度(X)為橫坐標(biāo),進(jìn)行線(xiàn)性回歸?;貧w方程、相關(guān)系數(shù)和線(xiàn)性范圍見(jiàn)表1。

      表1 線(xiàn)性關(guān)系實(shí)驗(yàn)結(jié)果(n=3)Table 1 Regression equations, linear ranges and LODs (n=3)

      2.5 精密度實(shí)驗(yàn)

      精密吸取咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素的質(zhì)量濃度分別為12.2、10.6、12.8、12.0、11.2 μg/mL的對(duì)照品混合液20 μL,按照1.3.1節(jié)色譜條件進(jìn)行HPLC分析。重復(fù)進(jìn)樣6 次,測(cè)定各個(gè)對(duì)照品的峰面積,結(jié)果咖啡酸峰面積相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(relative standard deviation,RSD)為1.05%,阿魏酸峰面積RSD為1.32%,迷迭香酸峰面積RSD為1.84%,木犀草素峰面積RSD為1.72%,芹菜素峰面積RSD為1.33%,表明儀器精密度良好。

      2.6 穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)

      精密吸取1.3.3節(jié)供試品溶液20 μL,在避光條件下,于0、4、8、12、16、20、24、48 h分別進(jìn)樣,測(cè)定咖啡酸的峰面積RSD為0.97%,阿魏酸的峰面積RSD為1.72%,迷迭香酸的峰面積RSD為1.68%,木犀草素的峰面積RSD為1.79%,芹菜素的峰面積RSD為1.29%,表明該方法穩(wěn)定性良好。

      2.7 重復(fù)性實(shí)驗(yàn)

      精密稱(chēng)取同一批紫蘇樣品6 份,按照1.3.3節(jié)方法制備,1.3.1節(jié)色譜條件測(cè)定。結(jié)果咖啡酸峰面積RSD為1.34%,阿魏酸峰面積RSD為2.25%,迷迭香酸峰面積RSD為1.18%,木犀草素峰面積RSD為1.96%,芹菜素峰面積RSD為2.48%,表明該方法重復(fù)性良好。

      2.8 回收率實(shí)驗(yàn)

      精密稱(chēng)取已知含量的同一批紫蘇樣品0.1 g 9 份,分成3 組,每組按照低、中、高3 個(gè)標(biāo)準(zhǔn)準(zhǔn)確加入對(duì)照品混合液,按1.3.3節(jié)方法制備,1.3.1節(jié)色譜條件測(cè)定??Х人帷⑽核?、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素的回收率測(cè)定結(jié)果,見(jiàn)表2。

      表2 回收率實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 2 Recoveries of five compounds in spiked samples

      2.9 樣品含量的測(cè)定

      取同一批紫蘇樣品3 份,按照1.3.3節(jié)方法制備,1.3.1節(jié)色譜條件測(cè)定,樣品含量測(cè)定結(jié)果見(jiàn)表3。記錄紫蘇樣品色譜圖,見(jiàn)圖2。

      表3 樣品含量測(cè)定結(jié)果 (n=3)Table 3 Results of determination of samples (n=3)

      3 結(jié) 論

      3.1 本實(shí)驗(yàn)采用分析純的甲醇作為流動(dòng)相,與使用色譜純的甲醇作流動(dòng)相的文獻(xiàn)報(bào)道相比,目標(biāo)分析物峰形良好,且無(wú)雜質(zhì)干擾峰,大大降低了實(shí)驗(yàn)研究成本。

      3.2 為了選擇合適的流動(dòng)相體系,本實(shí)驗(yàn)選擇了CH3OH-H2O、CH3OH-CH3COOH、CH3CN-CH3COOH、CH3CN-H3PO44 種流動(dòng)相體系對(duì)5 種目標(biāo)分析物的分離效果進(jìn)行比較。在不斷調(diào)節(jié)流動(dòng)相比例的前提下,以CH3OH-H2O為流動(dòng)相時(shí),咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸3 種組分峰不能完全分離,且木犀草素、芹菜素2 種組分峰拖尾嚴(yán)重;而其他3 種流動(dòng)相體系在合適的梯度條件下,5 種目標(biāo)分析物分析時(shí)間短,且分離度均達(dá)到2.0以上,但乙腈比甲醇的毒性和成本更高,而磷酸對(duì)色譜柱的損害較大,故最終選擇CH3OH-CH3COOH作流動(dòng)相。黃亮輝等[18]在對(duì)不同采收期的紫蘇葉和白蘇葉中迷迭香酸的含量研究中,采用了甲醇-0.1%磷酸水溶液作流動(dòng)相,迷迭香酸出峰時(shí)間在25 min左右,而本實(shí)驗(yàn)中5 種目標(biāo)分析物的出峰時(shí)間均在16 min以?xún)?nèi)。

      3.3 由于目標(biāo)分析物易溶于甲醇、乙醇等有機(jī)溶劑及溶解性能良好的離子液體,本實(shí)驗(yàn)分別采用離子液體[BMIm]PF6、[OMIm]PF6、[HMIm]PF6以及甲醇、乙醇溶液為提取劑,在相同萃取條件下比較對(duì)目標(biāo)分析物的提取效果,與以甲醇作萃取劑相比,以離子液體為萃取劑時(shí),5 種目標(biāo)分析物的提取率明顯降低,且離子液體黏度太大不利于色譜分析;以乙醇作萃取劑,雖然能夠降低毒性,但5 種目標(biāo)分析物的總提取率顯著低于甲醇,故最終采用甲醇作萃取劑。與榮維燕等[19]用乙醇超聲輔助提取紫蘇葉黃酮的研究相比,本實(shí)驗(yàn)中總黃酮提取率更高,并有效提取了紫蘇中的有機(jī)酸。

      3.4 相關(guān)紫蘇中有機(jī)酸和黃酮的文獻(xiàn)報(bào)道不一,如張蕾蕾等[20]采用微波法提取測(cè)定紫蘇中的黃酮,亦有采用HPLC測(cè)定紫蘇中有機(jī)酸的含量[21],但鮮有關(guān)于紫蘇中咖啡酸、阿魏酸、芹菜素的報(bào)道,且尚未有對(duì)于紫蘇中黃酮和有機(jī)酸的同時(shí)分離測(cè)定。本實(shí)驗(yàn)建立了以甲醇溶液為萃取劑,結(jié)合超聲輔助萃取,利用HPLC同時(shí)分離測(cè)定紫蘇中的咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素5 種有效成分的方法。在優(yōu)化的最佳實(shí)驗(yàn)條件下,5 種目標(biāo)成分萃取率高,分離完全。該方法操作簡(jiǎn)便、檢出限低、定量準(zhǔn)確,為紫蘇的有效成分的質(zhì)量評(píng)價(jià)和控制提供了科學(xué)依據(jù)。

      [1] 國(guó)家藥典委員會(huì). 中華人民共和國(guó)藥典: 一部[M]. 北京: 中國(guó)醫(yī)藥科技出版社, 2010.

      [2] 蒲海燕, 李影球, 李梅. 紫蘇的功能性成分及其產(chǎn)品開(kāi)發(fā)[J]. 中國(guó)食品添加劑, 2009(2): 133-135.

      [3] ZHAO Gang, QIN Guowei, WANG Jie, et al. Functional activation of monoamine transporters by luteolin and apigenin isolated from the fruit of Perilla frutescens (L.) Britt[J]. Neurochemistry International, 2010, 56(1): 168-176.

      [4] MAyUKO I, MARI O, HIROSHI T, et al. Enhanced accumulation of caffeic acid, rosmarinic acid and luteolin-glucoside in red Perilla cultivated under red diode laser and blue LED illumination followed by UV-A irradiation[J]. Journal of Functional Foods, 2010, 2(1): 66-70.

      [5] 劉娟, 雷焱霖, 唐友紅, 等. 紫蘇的化學(xué)成分與生物活性研究進(jìn)展[J].時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥, 2010, 21(7): 1768-1769.

      [6] LEE J H, KI H P, LEE M H, et al. Identification, characterisation, and quantif i cation of phenolic compounds in the antioxidant activitycontaining fraction from the seeds of Korean perilla (Perilla frutescens) cultivars[J]. Food Chemistry, 2013, 136(2): 843-852.

      [7] GU Lihua, WU Tao, WANG Zhengtao. TLC bioautography-guided isolation of antioxidants from fruit of Perilla frutescens var. acuta[J]. LWT-Food Science and Technology, 2009, 4 2(1): 131-136.

      [8] LIN Chihsheng, KUO Chaolin, WANG Juiping, et al. Growth inhibitory and apoptosis inducing effect of Perilla frutescens extract on human hepatoma HepG2 cells[J]. Journal of Ethnopharmacology, 2007, 112(3): 557-567.

      [9] LI Li, TIAN Jingwei, LIANG Xuguo. Regression of atherosclerosis by Rosmarinic acid via regulating lipid metabolism and anti-inflammatory actions[J]. Journal of Molecular and Cellular Cardiology, 2008, 44(4): 719.

      [10] 郭群群, 杜桂彩, 李榮貴. 紫蘇全草抗菌活性的研究[J]. 精細(xì)化工, 2004, 21(1): 33-34.

      [11] yANG Sungyong, HONG Chungoui, LEE G P, et al. The hepatoprotection of caffeic acid and rosmarinic acid, major compounds of Perilla frutescens, against t-BHP-induced oxidative liver damage[J]. Food and Chemical Toxicology, 2013, 55: 92-99.

      [12] KIM M K, LEE H S, KIM E J, et al. Protective effect of aqueous extract of Perilla frutescens on tert-butyl hydroperoxide-induced oxidative hepatotoxicity in rats[J]. Food and Chemical Toxicology, 2007, 45(9): 1738-1744.

      [13] FENG Lijun, yU Chenhuan, yING Kejing, et al. Hypolipidemic and antioxidant effects of total flavonoids of Perilla frutescens, leaves in hyperlipidemia rats induced by high-fat diet[J]. Food Research International, 2011, 44(1): 404-409.

      [14] HA T J, LEE J H, LEE M H, et al. Isolation and identification of phenolic compounds from the seeds of Perilla frutescens (L.) and their inhibitory activities against α-glucosidase and aldose reductase[J]. Food Chemistry, 2012, 135(3): 1397-1403.

      [15] CHEN J H, XIA Z H, TAN R X. High-performance liquid chromatographic analysis of bioactive triterpenes in Perilla frutescens[J]. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 2003, 32(6): 1175-1179.

      [16] 馬堯, 莊云. 紫蘇不同部位總黃酮含量測(cè)定[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2010, 38(33): 18775-18776.

      [17] 黃亮輝, 趙英永, 王李麗, 等. 高速逆流色譜分離純化紫蘇葉中迷迭香酸[J]. 藥物分析雜志, 2011, 31(11): 2087-2090.

      [18] 黃亮輝, 蘇琪, 張新新, 等. 不同采收期的紫蘇葉和白蘇葉中迷迭香酸的含量測(cè)定[J]. 藥物分析雜志, 2012, 32(10): 1753-1755.

      [19] 榮維燕, 郭斌. 超聲波輔助提取紫蘇葉總黃酮的工藝研究[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2009, 37(34): 17070-17071.

      [20] 張蕾蕾, 常雅寧, 夏鵬竣, 等. 微波法提取紫蘇黃酮類(lèi)物質(zhì)及其成分分析[J]. 食品科學(xué), 2012, 33(22): 53-57.

      [21] LIU Jing, WAN Yuklam, ZHAO Zhongzhen, et al. Determination of the content of rosmarinic acid by HPLC and analytical comparison of volatile constituents by GC-MS in different parts of Perilla frutescens (L.) Britt[J]. Chemistry Central Journal, 2013, 7(1): 61.

      Determination of Five Organic Acids and Flavonoids in Perilla frutescens by High Performance Liquid Chromatography

      QIN Hong-ying, ZHOU Guang-ming*, PENG Gui-long, LI Jun-ping
      (Key Laboratory on Luminescence and Real-Time Analysis, Ministry of Education, College of Chemistry and Chemical Engineering, Southwest University, Chongqing 400715, China)

      Objective: A simple high performance liquid chromatography (HPLC) method has been developed for the simultaneous quantif i cation of caffeic acid, ferulic acid, rosmarinic acid, luteolin and apigenin from Perilla frutescens using methanol as extractant with ultrasonic-assisted extraction. Methods: The fi ve compounds were isolated by using a Phenomenex C18column by gradient elution, and the mobile phase was methanol-0.1% acetic acid solution with a fl ow rate of 1.0 mL/min. The UV detection wavelength was performed at 320 nm. Results: The linear ranges for caffeic acid, ferulic acid, rosmarinic acid, luteolin and apigenin were determined to be 0.001 22-61.00, 0.001 06-53.00, 0.001 28-64.00, 0.001 20-60.00 and 0.001 12-56.00 μg/mL, respectively, and the correlation coeff i cients were 0.999 99, 0.999 99, 0.999 91, 0.999 94 and 0.999 95, respectively. The limits of detection (LOD) were 0.101 9, 0.392 6, 0.355 9, 0.286 2 and 0.202 5 ng/mL, respectively. The average recoveries of these compounds in spiked real samples were in the range of 95.79%-101.41%. Conclusion: The proposed method is simple, precise, specif i c, sensitive and accurate. It provides a new and scientif i c means for routine quality control of Perilla frutescens.

      organic acids; fl avonoids; ultrasonic-assisted extraction; high performance liquid chromatography; Perilla frutescens

      O652.62

      A

      1002-6630(2014)14-0102-04

      10.7506/spkx1002-6630-201414020

      2013-10-10

      國(guó)家自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目(21277110)

      秦紅英(1989—),女,碩士研究生,研究方向?yàn)樯V分析。E-mail:qinruobing@sina.cn

      *通信作者:周光明(1964—),男,教授,博士,研究方向?yàn)樯V及其聯(lián)用技術(shù)。E-mail:gmzhou@swu.edu.cn

      猜你喜歡
      草素木犀紫蘇
      歲歲紫蘇
      文苑(2020年4期)2020-05-30 12:35:30
      青青紫蘇
      青青紫蘇
      木犀草素通過(guò)上調(diào)microRNA-34a-5p誘導(dǎo)肺癌細(xì)胞株H460凋亡的研究
      青青紫蘇
      響應(yīng)面法優(yōu)化鳳尾草中木犀草素的酶法提取工藝
      中成藥(2017年12期)2018-01-19 02:06:56
      英雄降獸木犀舞
      西江月(2017年4期)2017-11-22 07:24:09
      YT星球的少年
      木犀草素抑制酪氨酸酶活性的分子機(jī)制
      木犀草素-Al3+配合物的光譜分析
      东源县| 莆田市| 保亭| 贡嘎县| 西乡县| 繁昌县| 峡江县| 息烽县| 渭南市| 伊吾县| 大田县| 黄梅县| 工布江达县| 苗栗县| 杭锦后旗| 凤翔县| 志丹县| 平原县| 万盛区| 阳新县| 道孚县| 德兴市| 鄄城县| 永州市| 广汉市| 嘉祥县| 湘乡市| 高州市| 佳木斯市| 泽州县| 和田县| 鄄城县| 池州市| 琼中| 太仆寺旗| 宜兰市| 乐业县| 苍南县| 鹤庆县| 钟祥市| 锦州市|