江 軍,李軍星,康 磊,3,袁秀芳,徐麗華,王一成
副豬嗜血桿菌四環(huán)素耐藥基因TetB的PCR檢測方法建立
江 軍1,2,李軍星1,康 磊1,3,袁秀芳1,徐麗華1,王一成1
(1.浙江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 畜牧獸醫(yī)研究所,浙江 杭州 310021;2.南京農(nóng)業(yè)大學(xué) 動物醫(yī)學(xué)院,江蘇 南京 210095;3.安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科技學(xué)院,安徽 合肥 230061)
在本實驗室前期研究的基礎(chǔ)上,選取與四環(huán)素耐藥表型相關(guān)性較好的TetB基因,建立PCR方法,以探索副豬嗜血桿菌耐藥性的快速檢測方法。本研究利用四環(huán)素主要耐藥基因TetB的引物,對PCR反應(yīng)條件進行優(yōu)化,以副豬嗜血桿菌基因組DNA為模板,未出現(xiàn)非特異性擴增條帶,PCR擴增條帶單一。將TetB基因克隆至pMD 19T載體,以重組質(zhì)粒為標(biāo)準(zhǔn)品,確定了最低檢測拷貝數(shù),經(jīng)測定,最低檢測拷貝數(shù)為1.54×103。以不同稀釋度的21A7菌株基因組DNA為模板,確定了最低細(xì)菌檢出量,經(jīng)測定,最低檢測細(xì)菌數(shù)量為4.6×103個。該方法為建立臨床快速檢測副豬嗜血桿菌耐藥性奠定了基礎(chǔ)。
副豬嗜血桿菌;耐藥基因TetB;PCR檢測
副豬嗜血桿菌(Haemophi1us parasuis,Hps)是豬格拉澤氏?。℅1asser′s disease)的病原菌,引起豬多發(fā)性漿膜炎、關(guān)節(jié)炎和腦膜炎等[1]。近年來,豬繁殖與呼吸綜合征、豬圓環(huán)病毒病等免疫抑制性疾病常繼發(fā)Hps感染而增加發(fā)病率和死亡率,給養(yǎng)豬業(yè)造成了嚴(yán)重的損失[2],是目前影響浙江省養(yǎng)豬業(yè)最嚴(yán)重的細(xì)菌之一[3]。
細(xì)菌對四環(huán)素產(chǎn)生耐藥的機制有3種。一是核糖體保護機制,編碼核糖體保護蛋白與核糖體結(jié)合,阻止四環(huán)素與核糖體的結(jié)合,保證細(xì)菌蛋白質(zhì)順利合成,耐藥基因有TetM,TetO,TetS,TetW,TetQ,TetT等[4];二是藥物排出泵機制,此機制是將進入細(xì)胞內(nèi)的四環(huán)素由導(dǎo)出泵排出細(xì)胞外,四環(huán)素類藥物排出泵機制相關(guān)的耐藥基因包括TetA,TetB,TetC,TetD,TetE,TetG,TetH,TetI,TetJ,TetZ,Tet30,Tet31,TetK,TetL,OtrB,Tcr3,TetPA,TetV和TetY等[5];三是酶鈍化機制,TetX基因是唯一通過產(chǎn)生滅活四環(huán)素的酶而使細(xì)菌耐藥的[6]。一般認(rèn)為,革蘭氏陰性基因細(xì)菌的耐藥機制以抗生素的導(dǎo)出泵機制為主,對豬體內(nèi)細(xì)菌及腸道細(xì)菌而言,其決定導(dǎo)出泵的耐藥性基因以TetB為主[7]。
本研究在前期浙江省副豬嗜血桿菌耐藥性調(diào)查中,確定了TetB為引起副豬嗜血桿菌四環(huán)素耐藥表型的最主要基因的基礎(chǔ)上,以TetB為檢測對象,通過條件優(yōu)化,初步建立了副豬嗜血桿菌四環(huán)素耐藥表型的快速檢測方法,為臨床上防治副豬嗜血桿菌病合理使用抗菌藥物提供依據(jù)。
1.1 材料
副豬嗜血桿菌菌株由本實驗室從浙江省臨床發(fā)病豬中分離保存,其中21A7菌株經(jīng)本實驗室檢測,具備四環(huán)素耐藥性及TetB耐藥基因。PCR試劑及pMD 19T載體為TakaRa寶生物工程 (大連)有限公司產(chǎn)品,蛋白酶K購自生工生物工程 (上海)股份有限公司,細(xì)菌培養(yǎng)基購自O(shè)XOID LTD,其余試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.2 菌株基因組DNA的提取
以蛋白酶K消化法[8]提取DNA。取400μL純培養(yǎng)的副豬嗜血桿菌菌液于1.5 m L離心管中,12 000 r·min-1離心3 m in;棄上清,加入400μL TE(pH值8.0)重懸菌體,12 000 r·min-1離心3 min;棄上清,加入400μL Tris(0.000 5%Tween-20,0.1mo1·L-1Tris,pH值8.5)重懸菌體,再加入6μL蛋白酶K(20 mg·m L-1),56℃作用45 m in,100℃再作用20 min,12 000 r·m in-1離心1 min。取上清作為模板進行PCR擴增。
1.3 PCR反應(yīng)
[3]中的TetB引物,TetB1引物序列為5′-TGGTTAGGGGCAAGTTTTGG-3′,640 bp;TetB2引物序列為5′-GAGCATTGGTAAGGCTC-3′,640 bp。
PCR體系為25μL,包括1×PCR Buffer(含1.5 mM MgC12)、200μmo1·L-1dNTP混合物、各10 pmo1·L-1的上游引物及下游引物、0.2 U的r Taq聚合酶和2μL的模板DNA。
PCR運行程序為94℃預(yù)變性5 min;94℃變性20 s,56℃退火20 s,72℃延伸30 s,進行32個循環(huán);最后再72℃延伸5 m in。取5μL的PCR產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳檢測結(jié)果。
1.4 重組質(zhì)粒pM D19T-TetB的構(gòu)建
連接。取TetB的PCR產(chǎn)物與pMD 19T Vector連接。連接體系為10μL,包括TetB的PCR產(chǎn)物4.5μL,pMD 19T Vector 0.5μL,So1utionⅠ5μL。將混合物置于16℃金屬浴中連接3 h。
轉(zhuǎn)化。將10μL的連接產(chǎn)物加入到100μL的大腸桿菌TOP10感受態(tài)細(xì)胞中,混勻,冰上放置30 min,42℃熱激45 s,冰上再放置1 min后加入700μL無抗性的LB液體培養(yǎng)基,放于37℃,200 r·min-1的搖床中1 h。然后取100μL菌液均勻涂布于含氨芐 (50μg·m L-1)抗性的LB平板上,37℃溫箱中過夜培養(yǎng)。
挑菌鑒定。從長菌的平板上隨意挑取5個單菌落分別至2 m L含氨芐(50μg·m L-1)抗性的LB液體培養(yǎng)基中,放于37℃,200 r·min-1的搖床中搖2 h。分別取2μL菌液作模板,進行PCR擴增。取5μL的PCR產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳。取1 m L呈陽性的菌液送去華大公司測序。
提取重組質(zhì)粒。取150μL陽性菌液于15 m L含氨芐 (50μg·m L-1)抗性的LB液體培養(yǎng)基中,放于37℃,200 r·min-1的搖床中過夜。取菌液按質(zhì)粒提取試劑盒說明提取重組質(zhì)粒pMD 19T-TetB。將提取的重組質(zhì)?;靹蚝蠓盅b到1.5 m L的離心管中,用核酸蛋白分析儀測定重組質(zhì)粒的濃度及純度(D260/D280),用作TetB基因的標(biāo)準(zhǔn)模板,存放于-20℃冰箱。
1.5 特異性試驗
選取不含四環(huán)素耐藥性的10個臨床菌株,進行純培養(yǎng),以蛋白酶K消化法提取純培養(yǎng)細(xì)菌的基因組DNA,以總基因組為模板,進行TetB基因擴增,同時設(shè)以水為模板的陰性對照,以及以pMD 19T-TetB為模板的陽性對照。
1.6 敏感性試驗
1.6.1 對TetB基因的標(biāo)準(zhǔn)模板檢測敏感度
將上述所提的標(biāo)準(zhǔn)模板重組質(zhì)粒pMD19T-TetB作10倍逐級稀釋,稀釋度為102~109。每個稀釋度分別取1μL作模板,進行PCR擴增。取5μL的PCR產(chǎn)物進行瓊脂糖電泳。
1.6.2 對TetB基因的標(biāo)準(zhǔn)模板檢測敏感度
復(fù)蘇21A7菌株于無抗性的TSA平板上培養(yǎng)過夜,取單菌落于2 m L無抗性的LB液體培養(yǎng)基中純培養(yǎng)3~4 h使其處于對數(shù)生長期。取100μL對數(shù)生長期菌液于1.5 m L離心管,用無抗性的LB液體培養(yǎng)基對菌液作10倍逐級稀釋,稀釋度為106~109。取各個稀釋度的菌液100μL涂于無抗性的TSA平板上,37℃溫箱過夜培養(yǎng)。根椐菌落數(shù)計算對數(shù)生長期純培養(yǎng)菌液的細(xì)菌濃度。
取500μL對數(shù)生長期的純培養(yǎng)菌液于1.5 m L離心管,以蛋白酶K消化法提取純培養(yǎng)的21A7細(xì)菌的基因組DNA。將DNA作10倍逐級稀釋,稀釋度為100~106。每個稀釋度分別取2μL作模板,進行PCR擴增。取5μL的PCR產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳。
2.1 TetB基因PCR擴增
以副豬嗜血桿菌基因組DNA為模板,擴增到約640 bp的基因片段,與預(yù)期大小相符 (圖1)。
圖1 TetB基因PCR產(chǎn)物的電泳結(jié)果
2.2 重組質(zhì)粒pM D 19T-TetB的PCR鑒定
以菌液為模板進行TetB基因擴增,PCR結(jié)果顯示,隨機挑取的5個菌落都為陽性克隆 (圖2),測序結(jié)果證實為TetB基因。
圖2 pMD 19T-TetB的PCR鑒定結(jié)果
2.3 特異性試驗結(jié)果
對10個不同臨床分離株進行PCR擴增,電泳結(jié)果顯示,TetB的引物具有良好的特異性,與受試臨床分離株的基因組無非特異性擴增 (見圖3)。
圖3 特異性試驗PCR結(jié)果
2.4 敏感度
經(jīng)測定,pMD 19T-TetB重組質(zhì)粒的濃度為0.056μg·μL-1,D260/D280=1.843,符合實驗要求。該PCR方法的最低可以檢測到107稀釋的1 μL質(zhì)粒 (圖4)。TetB基因的拷貝數(shù)=(6.02× 1023拷貝數(shù)·mo1-1)×(質(zhì)粒濃度g·m L-1)/(核苷酸分子量g·mo1-1)=(6.02×1023拷貝數(shù)·mo1-1)×(5.6×10-5g·m L-1)/(2 195 160 g·mo1-1),未經(jīng)稀釋的質(zhì)粒為1.54×1013拷貝數(shù)·mo1-1。因此,重組質(zhì)粒經(jīng)107稀釋后1μL所含的拷貝數(shù)為1.54×103,即該PCR能檢測到的最低質(zhì)粒含量為1.54×103個。
21A7菌株純培養(yǎng)菌液稀釋后,涂TSA平板后的長菌情況為106稀釋度的平板上長菌最多,約為230個單菌落,所以可知1 m L菌液中細(xì)菌的數(shù)目為230×106×(1 m L/100μL)=2.3×109個· mL-1。21A7菌株DNA各個稀釋度的PCR產(chǎn)物的瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果見圖5,該PCR方法可以檢測到103稀釋的2μL基因組DNA,即可以檢測到4.6×103個的細(xì)菌總DNA。
圖4 以重組質(zhì)粒為模板的敏感性試驗結(jié)果
圖5 以副豬嗜血桿菌總DNA為模板的敏感性試驗結(jié)果
四環(huán)素具有抗菌譜廣、價格低廉等特點,因此是獸醫(yī)臨床最常用的抗生素之一。隨著四環(huán)素的大量使用,結(jié)伴而來的就是細(xì)菌耐藥性的激增,檢測四環(huán)素耐藥基因是判斷細(xì)菌四環(huán)素耐藥性的重要的快速手段。細(xì)菌四環(huán)素的耐藥基因有數(shù)十種之多,華中農(nóng)業(yè)大學(xué)劉維紅等[9]對33株豬源沙門氏菌進行了TetA,TetB,TetC,TetD,TetE,TetG,TetK等四環(huán)素耐藥基因檢測,發(fā)現(xiàn)其中29株攜帶TetB基因,與四環(huán)素耐藥表型的符合率為87.9%,但并未在其他4個耐藥菌株中檢測到上述7種耐藥基因。這與本實驗室前期實驗發(fā)現(xiàn)的副豬嗜血桿菌TetB基因與四環(huán)素耐藥表型的符合率(80.56%)[3]較為接近。2010年張純萍等[10]從269株豬雞大腸桿菌中檢出TetA,TetB和TetM的比率為87.9%,28.4%和15.5%。因此,不同宿主來源或不同菌株中四環(huán)素耐藥基因的種類差異較大。
建立細(xì)菌耐藥性的快速診斷技術(shù),對細(xì)菌性傳染病的治療具有重要的意義。目前臨床上細(xì)菌耐藥性檢測大多采用藥敏片試驗方法,需要較長檢測時間,難以快速診斷。本研究在綜合分析本實驗室前期有關(guān)副豬嗜血桿菌耐藥表型和耐藥基因相關(guān)性的基礎(chǔ)上,選取相關(guān)性較高的四環(huán)素耐藥基因為檢測對象,探索建立副豬嗜血桿菌四環(huán)素抗性的PCR快速診斷方法。所建立的PCR檢測方法與副豬嗜血桿菌基因組無非特異性擴增,最低可以檢測4.6 ×103個的細(xì)菌總DNA,可用于快速判斷實驗室培養(yǎng)的副豬嗜血桿菌耐藥性,克服了細(xì)菌培養(yǎng)檢測藥物敏感性需要較長時間的弊端,對于促進臨床合理應(yīng)用抗生素將具有重要意義。但該方法不建議用于臨床病料樣品的直接檢測,因為病料中可能污染攜帶TetB基因的其他種類細(xì)菌而導(dǎo)致假陽性。
如前所述,細(xì)菌四環(huán)素耐藥基因種類多,包括TetA,TetB,TetC,TetD,TetE,TetG,TetH,TetI等,其中多個基因與副豬嗜血桿菌四環(huán)素耐藥表型的對應(yīng)關(guān)系尚不明確,如進一步闡明副豬嗜血桿菌四環(huán)素耐藥性與各種耐藥基因的相關(guān)性,建立基于多種耐藥基因的多重PCR檢測方法,將進一步提升副豬嗜血桿菌四環(huán)素耐藥表型的快速檢測實用水平。
參考文獻(xiàn):
[1] O1iveira S,Pijoan C.Haemophi1us parasuis:new trends on diagnosis,epidem io1ogy and contro1[J].Vet M icrobio1,2004,99(1):1-12.
[2] Narita M,Kawashima K,Matsuura S,et a1.Pneumonia in pigs infected with pseudorabies virus and Haemophilus parasuis serovar 4[J].JComp Patho1,1994,110:329-339.
[3] 忽占利,李軍星,胡松華,等.副豬嗜血桿菌分離株的耐藥性及耐藥基因分析 [J].華北農(nóng)學(xué)報,2013,28(4):228-233.
[4] 許曉燕,王楷宬,鄒君等.2型豬鏈球菌對四環(huán)素的耐藥機制 [J].中國獸醫(yī)學(xué)報,2013,31(10):1471-1475.
[5] Chopra I,Roberts M.Tetracyc1ine antibiotics:mode of action,app1ications,mo1ecu1ar bio1ogy,andepidemio1ogy of bacteria1 resistance[J].Microbio1 Mo1 Bio1 Rev,2001,65(2):232.
[6] 馮新,韓文瑜,雷連成.細(xì)菌對四環(huán)素類抗生素的耐藥機制研究進展 [J].中國獸藥雜志,2004,38(2):38 -42.
[7] Lee C,Lang1ois B E,Dawson K A.Detection of tetracyc1ine resistance determineants in pig iso1ates from tree herds with different histories of antimicrobia1 agent exposure[J].App1 Environ Microbio1,1993,59(5):1467.
[8] de 1a Puente Redondo V A,NavasMéndez J,Garca de1B1anco N,et a1.Typing of Haemophilus parasuis strains by PCR-RFLP ana1ysis of the tbpA gene[J].Veterinary M icrobio1ogy,2003,92(3):253-262.
[9] 劉維紅,徐引弟,郭愛珍,等.致病性豬沙門菌四環(huán)素耐藥基因tetB的PCR檢測 [J].中國抗生素雜志,2006,31(11):51-55.
[10] 張純萍,寧宜寶,宋立.健康雞豬體內(nèi)大腸桿菌對四環(huán)素的耐藥性及耐藥基因分布 [J].中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,43(12):2578-2583.
(責(zé)任編輯:盧福莊)
S 854
B
0528-9017(2014)12-0000-00
文獻(xiàn)著錄格式:江軍,李軍星,康磊,等.副豬嗜血桿菌四環(huán)素耐藥基因TetB的PCR檢測方法建立 [J].浙江農(nóng)業(yè)科學(xué),2014(12):00 -00.
2014-09-17
畜禽健康養(yǎng)殖科技創(chuàng)新團隊項目 (2010R50027)
江 軍 (1989-),女,河北保定人,碩士,Te1:15058127581,Emai1:1146050993@qq.com
王一成 (1957-),男,浙江溫嶺人,研究員,碩士生導(dǎo)師,主要從事豬病防控研究。E-mai1:95711@sina.com