陳 星 吳大偉 溫 超 周巖民
蛋白質(zhì)不僅為動物機(jī)體發(fā)育提供氨基酸,還為其代謝提供所需能量等[1],所以飼料中蛋白質(zhì)的供應(yīng)對動物具有重要意義,且飼料中蛋白質(zhì)的質(zhì)量亦十分重要[2]。在加工和貯藏過程中,飼料中的蛋白質(zhì)在高溫、剪切、擠壓、輻射等作用下會發(fā)生氧化[3],導(dǎo)致其營養(yǎng)價值降低。目前關(guān)于氧化蛋白質(zhì)對動物機(jī)體生理狀態(tài)的影響主要集中于體內(nèi)氧化應(yīng)激引起的蛋白質(zhì)修飾及其生理反應(yīng)[4-5],而關(guān)于飼料氧化蛋白質(zhì)的攝入對動物機(jī)體的影響研究甚少。胰腺是消化系統(tǒng)中重要的腺體之一,其內(nèi)外分泌功能對體內(nèi)營養(yǎng)物質(zhì)的消化吸收和代謝以及對機(jī)體各種生理過程的調(diào)節(jié)至關(guān)重要[6]。熱處理是應(yīng)用廣泛的氧化修飾蛋白質(zhì)的方法之一。因此,本試驗以加熱氧化1、4及8 h的大豆蛋白質(zhì)飼喂肉雞,研究攝取氧化蛋白質(zhì)對肉雞胰腺功能的影響,以期為探討飼料源蛋白質(zhì)氧化后對動物的影響提供參考依據(jù)。
大豆分離蛋白質(zhì)(soy protein isolate,SPI)購自南通光合生物科技有限公司,水分、粗蛋白質(zhì)、粗脂肪及粗灰分含量分別為 5.6%、86.2%、0.4%和4.9%。參照Tang等[7]的方法分別將大豆分離蛋白質(zhì)經(jīng)100℃烘箱加熱處理1、4及8 h。本實驗室前期研究[8]表明,熱處理會引起大豆分離蛋白質(zhì)的氧化修飾,正常大豆分離蛋白質(zhì)及經(jīng)1、4、8 h熱處理后大豆分離蛋白質(zhì)羰基含量分別為15.13、15.79、17.85、22.35 nmol/mg prot,巰基含量分別為 9.19、7.91、8.16、8.27 nmol/mg prot,總巰基基團(tuán) 含 量 分 別 為 108.06、98.07、84.44、86.48 nmol/mg prot,游 離 氨 含 量 分 別 為 0.79、0.74、0.70、0.69 μmol/mg prot。
選用1日齡愛拔益加(AA)肉雞320只,隨機(jī)分為4個組,每組8個重復(fù),每個重復(fù)10只,分別飼喂4種飼糧:正常大豆分離蛋白質(zhì)飼糧(對照組),熱處理1、4及8 h的大豆分離蛋白質(zhì)飼糧。試驗在江蘇省南京市康欣禽業(yè)有限公司進(jìn)行,試驗前對雞舍進(jìn)行徹底清洗、消毒。試驗雞采用籠養(yǎng),24 h光照(白天自然光照,夜間白熾燈光照),自由采食和飲水,免疫程序按常規(guī)進(jìn)行。雞舍1~7 d溫度控制在32℃左右,以后溫度逐漸下調(diào)至室溫,試驗期為21 d?;A(chǔ)飼糧組成及營養(yǎng)水平見表1。
表1 基礎(chǔ)飼糧組成及營養(yǎng)水平(風(fēng)干基礎(chǔ))Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet(air-dry basis) g/kg
于試驗第14和21天,每重復(fù)選取與平均體重相近的肉雞1只,稱重后頸動脈采血于10 mL離心管中,傾斜室溫放置,待析出血清后于4℃下3 000×g離心15 min,血清分裝后于-20℃保存待測。雞只放血致死后,剖開腹腔,分離出胰腺,剔除周圍脂肪組織,用濾紙吸干血水后將胰腺裝入自封袋于-20℃保存,并計算胰腺相對重量。
取0.3 g左右的胰腺組織于10 mL離心管中,加入9倍體積4℃下預(yù)冷的0.86%生理鹽水,在冰水浴中勻漿后,于4℃下4 000×g離心15 min,上清液分裝后于-20℃保存用于測定各種消化酶活性。上清液中的蛋白質(zhì)含量用二喹啉甲酸(BCA)法測定,試劑盒購自南京建成生物工程研究所。
1.4.1 胰腺消化酶活性
淀粉酶、胰蛋白酶和脂肪酶活性采用試劑盒(南京建成生物工程研究所)進(jìn)行測定,蛋白酶活性用奚剛等[9]的方法進(jìn)行測定。
1.4.2 血清和胰腺中胰島素水平
血清和胰腺中胰島素水平均采用放射性免疫分析方法(試劑盒購自北京北方生物技術(shù)研究所)測定,均以125I標(biāo)記,采用雙抗法進(jìn)行測定。
1.4.3 胰腺抗氧化指標(biāo)
胰腺中總抗氧化能力(T-AOC)、總超氧化物歧化酶(T-SOD)、過氧化氫酶(CAT)、谷胱甘肽過氧化物酶(GPx)、谷胱甘肽還原酶(GR)活性和還原型谷胱甘肽(GSH)、氧化型谷胱甘肽(GSSG)及丙二醛(MDA)含量均采用試劑盒(南京建成生物工程研究所)測定,試劑配制和操作步驟均按說明書進(jìn)行,其中T-AOC采用化學(xué)比色法,T-SOD采用鄰苯三酚自氧化法,CAT采用紫外吸收法,GPx采用二硫代二硝基苯甲酸比色法,GSH和GSSG采用比色法,MDA采用硫代巴比妥酸法(TBA)。
試驗數(shù)據(jù)用Excel 2003初步整理后,采用SPSS 16.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計,用單因子方差分析(oneway ANOVA)檢驗組間差異顯著性,以P<0.05作為差異顯著性判斷標(biāo)準(zhǔn)。
如圖1所示,與對照組相比,飼喂熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對14日齡肉雞胰腺相對重量無顯著影響(P>0.05),但各熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧均顯著提高了21日齡肉雞胰腺相對重量(P<0.05)。
由表2可知,與對照組相比,各熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對14日齡肉雞胰腺消化酶活性均無顯著影響(P>0.05);熱處理8 h大豆分離蛋白質(zhì)飼糧使21日齡肉雞胰腺蛋白酶和胰蛋白酶活性顯著降低(P<0.05)。
圖1 熱處理大豆分離蛋白質(zhì)對肉雞胰腺相對重量的影響Fig.1 Effects of heat treatment soy protein isolate on pancreatic relative weight of broilers
表2 熱處理大豆分離蛋白質(zhì)對肉雞胰腺消化酶活性的影響Table 2 Effects of heat treatment of soy protein isolate on pancreatic digestive enzyme activities of broilers
由表3可知,與對照組相比,各熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對14和21日齡肉雞血清和胰腺胰島素水平均無顯著影響(P>0.05)。
由表4可知,與對照組相比,熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對14日齡肉雞胰腺T-AOC、T-SOD、CAT活性及MDA含量均無顯著影響(P>0.05);熱處理8 h大豆分離蛋白質(zhì)飼糧使21日齡肉雞胰腺 T-AOC(P=0.058)和 CAT(P=0.064)活性有所降低,但顯著增加了MDA含量(P<0.05)。
由表5可知,與對照組相比,熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對14日齡肉雞胰腺GSH和GSSG含量、GSH/GSSG及 GR、GPx活性均無顯著影響(P>0.05);熱處理8 h大豆分離蛋白質(zhì)飼糧使21日齡肉雞胰腺GSH/GSSG和GPx活性顯著下降(P<0.05),GR 活性有所降低(P=0.061),但GSSG含量有升高趨勢(P=0.065)。
表3 熱處理大豆分離蛋白質(zhì)對肉雞血清和胰腺胰島素水平的影響Table 3 Effects of heat treatment of soy protein isolate on serum and pancreatic insulin level of broilers
表4 熱處理大豆分離蛋白質(zhì)對肉雞胰腺抗氧化指標(biāo)的影響Table 4 Effects of heat treatment soy protein isolate on pancreatic antioxidant indices of broilers
表5 熱處理大豆分離蛋白質(zhì)對肉雞胰腺谷胱甘肽系統(tǒng)指標(biāo)的影響Table 5 Effects of heat treatment soy protein isolate on pancreatic glutathione redox system parameters of broilers
胰腺相對重量是胰腺主要的功能性指標(biāo)之一,大小決定其代謝率高低[10]。李竹青等[11]研究發(fā)現(xiàn),飼喂氧化酪蛋白質(zhì)顯著增加了小鼠胰腺的臟器指數(shù)。本試驗中,飼喂熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對14日齡肉雞胰腺相對重量無顯著影響,但熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧顯著提高了21日齡肉雞胰腺相對重量,這與上述報道的結(jié)果相似,說明攝食氧化蛋白質(zhì)可能會引起肉雞胰腺代償性增大,這可能與氧化蛋白質(zhì)的難以消化有關(guān)[12]。此外,Mahmood等[13]研究發(fā)現(xiàn),肉雞相對較低的采食量也會誘導(dǎo)其胰腺相對重量的增加,因此熱處理組肉雞胰腺的肥大也可能與其較低的采食量有關(guān)。
胰腺為混合性分泌腺體,由外分泌腺體和內(nèi)分泌腺體2部分組成,因此主要有外分泌和內(nèi)分泌2大功能。胰腺外分泌物胰液中所含的營養(yǎng)物質(zhì)降解酶如胰淀粉酶、胰蛋白酶、糜蛋白酶、胰脂肪酶等,是動物消化食物最主要、消化力最強(qiáng)的酶系[14],因此胰液分泌紊亂會導(dǎo)致營養(yǎng)物質(zhì)消化、吸收異常,降低動物的生產(chǎn)性能。本試驗中,熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對14日齡肉雞胰腺消化酶活性無顯著影響,但21日齡時肉雞胰腺中蛋白酶和胰蛋白酶活性降低,說明肉雞采食熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧會引起胰腺外分泌功能障礙。胰島素是由胰腺胰島B細(xì)胞分泌的調(diào)節(jié)糖代謝的重要激素,是胰腺內(nèi)分泌主要成分之一。本試驗中,熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對14和21日齡肉雞血清和胰腺胰島素水平均無顯著影響,這說明肉雞采食氧化蛋白質(zhì)飼糧不影響胰腺內(nèi)分泌功能。
機(jī)體的氧化損傷程度可以通過對抗氧化防御系統(tǒng)的能力測得。T-AOC是反映機(jī)體整體抗氧化狀態(tài)的重要指標(biāo),與機(jī)體健康程度密切相關(guān)[15]。本試驗中,熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對14日齡肉雞胰腺T-AOC無顯著影響,但熱處理8 h大豆分離蛋白質(zhì)飼糧使21日齡肉雞胰腺T-AOC低于對照組,提示攝食氧化蛋白質(zhì)會削弱肉雞胰腺組織的總抗氧化防御能力。CAT能將組織中的過氧化氫分解為氧和水[16]。本試驗中,熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對14日齡試驗肉雞胰腺CAT活性無顯著影響,但熱處理8 h大豆分離蛋白質(zhì)飼糧使21日齡肉雞胰腺CAT活性有所降低,說明肉雞攝食氧化蛋白質(zhì)會導(dǎo)致其胰腺組織清除活性氧(ROS)的能力下降,細(xì)胞受自由基的攻擊程度加重。MDA是脂質(zhì)過氧化反應(yīng)的終產(chǎn)物,其含量可以間接反映自由基的產(chǎn)生狀況和機(jī)體組織細(xì)胞的脂質(zhì)過氧化程度[17]。本試驗中,熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對14日齡肉雞胰腺M(fèi)DA含量無顯著影響,但熱處理8 h大豆蛋白質(zhì)分離蛋白質(zhì)飼糧使21日齡肉雞胰腺M(fèi)DA含量顯著升高,說明肉雞攝食氧化蛋白質(zhì)會引起其胰腺細(xì)胞膜的脂質(zhì)過氧化程度增強(qiáng)。研究表明,飼喂加熱氧化大豆蛋白質(zhì)提高了小鼠胰腺自由基水平,降低了小鼠胰腺抗氧化能力,造成小鼠胰腺氧化還原狀態(tài)的失衡[18],這與本試驗結(jié)果基本一致。
GPx是機(jī)體內(nèi)廣泛存在的一種重要的催化過氧化物分解酶,它特異地催化還原型谷胱甘肽對氫過氧化物的還原反應(yīng)。一般認(rèn)為它在細(xì)胞內(nèi)能消除有害的過氧化物代謝產(chǎn)物,防止脂質(zhì)過氧化物對機(jī)體生物膜和組織的損傷,并防止脂質(zhì)過氧化物進(jìn)一步水解為有害物質(zhì)MDA。本試驗中,熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對14日齡肉雞胰腺GPx活性無顯著影響,但熱處理8 h大豆分離蛋白質(zhì)飼糧使21日齡肉雞胰腺GPx活性顯著降低,相對較低的GPx活性可能會導(dǎo)致胰腺組織ROS的蓄積,增強(qiáng)細(xì)胞膜的脂質(zhì)過氧化反應(yīng),這與胰腺組織MDA含量的分析一致。谷胱甘肽是一種含巰基的小分子肽類物質(zhì),包括還原型谷胱甘肽(GSH)和氧化型谷胱甘肽(GSSG)[19]。GSH能清除體內(nèi)的ROS,當(dāng)機(jī)體發(fā)生氧化應(yīng)激時,在GPx作用下,GSH被氧化成GSSG,而GSSG則可在GR的催化并在還原氫的參與下重新合成GSH[20]。GSH含量的降低及GSSG在機(jī)體組織內(nèi)的蓄積常被作為組織發(fā)生氧化應(yīng)激的標(biāo)志[21],而GSH/GSSG是最能反映機(jī)體氧化應(yīng)激狀態(tài)的指標(biāo)[22]。本試驗中,熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對14日齡試驗肉雞胰腺GSH/GSSG無顯著影響,但熱處理8 h組胰腺GSH/GSSG顯著降低,說明攝食氧化蛋白質(zhì)會引起肉雞胰腺組織氧化還原狀態(tài)失衡,導(dǎo)致其發(fā)生氧化損傷,GSH/GSSG的降低主要是GSSG含量的升高引起,而GSSG含量的升高可能與GR的活性下降有關(guān)。值得注意的是,本試驗中GSH含量并未受熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧的影響,這可能是γ-谷氨酰半胱氨酸合成酶(γ-GCS)、谷胱甘肽硫轉(zhuǎn)移酶(GST)、GPx及 GR綜合作用的結(jié)果[23]。
攝食熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧對肉雞早期(14日齡)胰腺功能相關(guān)指標(biāo)無顯著影響,但隨著攝食熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧時間延長(21日齡),肉雞胰腺代償性增大,胰腺胰蛋白酶和蛋白酶活性降低,并伴隨胰腺抗氧化防御能力的降低,說明攝食熱處理大豆分離蛋白質(zhì)飼糧一定時間后會對肉雞胰腺功能產(chǎn)生負(fù)面作用。
[1] KORHONEN H,PIHLANTO-LEPP?LA A,RANTAM?KI P,et al.Impact of processing on bioactive proteins and peptides[J].Trends in Food Science and Technology,1998,9(8):307-319.
[2] HENDRIKS W H,EMMENS M M,TRASS B,et al.Heat processing changes the protein quality of canned cat foods as measured with a rat bioassay[J].Journal of Animal Science,1999,77(3):669-676.
[3] STADTMAN E R,LEVINE R L.Protein oxidation[J].Annals of the New York Academy of Sciences,2000,899(1):191-208.
[4] STADTMAN E R.Protein oxidation and aging[J].Science,1992,257(5074):1220-1224.
[5] VBERLETT B S,STADTMAN E R.Protein oxidation in aging,disease,and oxidative stress[J].Journal of Biological Chemistry,1997,272(33):20313-20316.
[6] 谷春梅.生大豆及過量蛋白日糧致小鼠消化器官氧化應(yīng)激的研究[D].博士學(xué)位論文.無錫:江南大學(xué),2008.
[7] TANG X,WU Q,LE G,et al.Effects of heat treatment on structural modification and in vivo antioxidant capacity of soy protein[J].Nutrition,2012,28(11/12):1180-1185.
[8] WU D W,CHEN X,YANG X,et al.Effects of heat treatment of soy protein isolate on the growth performance and immune function of broiler chickens[J].Poultry Science,2014,93(2):326-334.
[9] 奚剛,許梓榮,錢利純,等.添加外源性酶對豬,雞內(nèi)源消化酶活性的影響[J].中國獸醫(yī)學(xué)報,1999,19(3):286-289.
[10] FLUHARTY F L,MCCLURE K E.Effects of dietary energy intake and protein concentration on performance and visceral organ mass in lambs[J].Journal of Animal Science,1997,75(3):604-610.
[11] 李竹青,吳伶艷,樂國偉,等.氧化酪蛋白對小鼠血液和消化器官氧化損傷的影響[J].營養(yǎng)學(xué)報,2013,19(1):39-43.
[12] KAMIN-BELSKY N,BRILLON A A,ARAV R,et al.Degradation of myosin by enzymes of the digestive system:comparison between native and oxidatively cross-linked protein[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,1996,44(7):1641-1646.
[13] MAHMOOD S,SMITHARD R,SARWAR M.Effects of salseed(Shorea robusta)tannins,restricted feed intake and age on relative pancreas weight and activity of digestive enzymes in male broilers[J].Animal Feed Science and Technology,1997,65(1/2/3/4):215-230.
[14] 劉長忠,張毅,王自良,等.NSP酶制劑對雛鵝消化酶活性和盲腸微生物數(shù)量的影響[J].湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,48(7):1700-1703.
[15] YANG R,LI W,SHI Y H,et al.Lipoic acid prevents high-fat diet-induced dyslipidemia and oxidative stress:a microarray analysis[J].Nutrition,2008,24(6):582-588.
[16] MICHIELS C,RAES M,TOUSSAINT O,et al.Importance of Se-glutathione peroxidase,catalase,and Cu/Zn-SOD for cell survival against oxidative stress[J].Free Radical Biology and Medicine,1994,17(3):235-248.
[17] B?ASZCZYK I,GRUCKA-MAMCZAR E,KASPERCZYK S,et al.Influence of fluoride on rat kidney antioxidant system:effects of methionine and vitamin E[J].Biological Trace Element Research,2008,121(1):51-59.
[18] 吳秋萍,王姣,樂國偉,等.加熱或丙二醛氧化大豆蛋白對小鼠體內(nèi)自由基水平及抗氧化能力的影響[J].營養(yǎng)學(xué)報,2011,33(1):14-18.
[19] GRAY J I.Measurement of lipid oxidation:a review[J].Journal of the American Oil Chemists’Society,1978,55(6):539-546.
[20] REED D J.Oxidative stress and mitochondrial permeability transition[M]//Biothiols in health and disease.New York:Dekker,1995:231-263.
[21] SIESH.Hydroperoxides and thiol oxidants in the study of oxidative stress in intact cell and organs[M].London:Academic Press,1985:73.
[22] AVANZO J L,DE MENDON?A C X,Jr,PUGINE S M P,et al.Effect of vitamin E and selenium on resistance to oxidative stress in chicken superficial pectoralis muscle[J].Comparative Biochemistry and Physiology Part C:Toxicology & Pharmacology,2001,129(2):163-173.
[23] YANG L,CHEN J H,XU T,et al.Rice protein improves oxidative stress by regulating glutathione metabolism and attenuating oxidative damage to lipids and proteins in rats[J].Life Sciences,2012,91(11/12):389-394.