朱美霖, 魏富剛, 崔 斌, 陳中堅(jiān), 蔣艷雪, 曹紅斌,①
(1. 北京師范大學(xué): a. 中藥資源保護(hù)與利用北京市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, b. 資源藥物教育部工程研究中心, 北京100875;2. 苗鄉(xiāng)三七科技有限公司, 云南 文山 663000)
三七〔Panaxnotoginseng(Burk.) F. H. Chen〕隸屬于五加科 (Araliaceae) 人參屬 (PanaxLinn.),根可入藥,為中國(guó)出口的大宗藥材之一。目前中藥材應(yīng)用領(lǐng)域和出口量日趨擴(kuò)大,但世界各國(guó)對(duì)中藥材質(zhì)量的要求日趨增高,除對(duì)其農(nóng)藥殘留的限制越來越嚴(yán)格外,還增加了Cd、Hg、Pb、Cu和 Cr等重金屬元素的檢測(cè)。中藥三七主要產(chǎn)區(qū)為云南及廣西的富Cd區(qū)[1],這些地區(qū)擁有大量Cd富集的鉛鋅礦床,有可能造成土壤Cd污染,也可能導(dǎo)致三七藥材中Cd積累。馮江等[2]和韓小麗等[3]的研究結(jié)果均顯示三七藥材中存在Cd含量超標(biāo)的狀況。因此,研究土壤Cd污染對(duì)三七生長(zhǎng)發(fā)育的影響對(duì)保障三七藥材的品質(zhì)有重要意義。目前,已有研究者對(duì)三七植株內(nèi)Cd含量及殘留量進(jìn)行了分析[4-5];馮光泉等[6]比較了土壤及三七藥材中重金屬的含量;Yan等[7]還研究了三七對(duì)重金屬As的耐性機(jī)制。但至今有關(guān)Cd污染對(duì)三七的毒害效應(yīng)特別是分子水平的毒害效應(yīng)尚未見研究報(bào)道。
Cd是植物生長(zhǎng)的非必需元素,當(dāng)植物體內(nèi)的Cd積累到一定程度時(shí),植物表現(xiàn)出毒害癥狀。在形態(tài)上主要表現(xiàn)為根和莖生長(zhǎng)遲緩、葉面卷曲和黃葉??;而生理生化方面主要表現(xiàn)為光合作用和蒸騰作用受到抑制、體內(nèi)酶活性受到影響、引起氧化應(yīng)激反應(yīng)和細(xì)胞膜損傷等一系列反應(yīng)[8],導(dǎo)致抗氧化酶活性產(chǎn)生適應(yīng)性變化。但Cd濃度較低時(shí)反而出現(xiàn)作物產(chǎn)量增加的情況[9-10],說明低濃度Cd對(duì)某些植物的生長(zhǎng)發(fā)育有一定的促進(jìn)作用。SOD(超氧化物歧化酶)、POD(過氧化物酶)和CAT(過氧化氫酶)是植物體內(nèi)最重要的抗氧化酶,這些酶活性的改變可作為機(jī)體受到氧化脅迫的指標(biāo)。此外,Cd脅迫可不同程度損傷植物細(xì)胞DNA,對(duì)植物的繁衍及子代健康造成傷害,甚至可以改變植物的進(jìn)化過程,目前廣泛采用彗星實(shí)驗(yàn) (Comet assay)、通過對(duì)植物DNA損傷的評(píng)價(jià)確定污染物的毒理學(xué)[11-12]。
作者采用盆栽實(shí)驗(yàn)法,研究了不同程度土壤Cd脅迫對(duì)三七幼苗生長(zhǎng)以及根系保護(hù)酶活性的影響,并采用彗星實(shí)驗(yàn)分析了Cd脅迫對(duì)三七根系細(xì)胞DNA的損傷效應(yīng),以期在宏觀及微觀水平上揭示土壤Cd污染對(duì)三七生長(zhǎng)發(fā)育的影響,為三七藥材的標(biāo)準(zhǔn)化種植提供數(shù)據(jù)支撐和理論依據(jù)。
供試三七種苗由云南文山苗鄉(xiāng)三七科技有限公司提供,栽植于該公司硯山實(shí)驗(yàn)基地。實(shí)驗(yàn)用土取自基地附近0~20 cm的表層土,理化性質(zhì)為:pH 4.94,有機(jī)質(zhì)含量27.40 g·kg-1,陽(yáng)離子交換量19.27 mmol·kg-1,全磷含量0.21 mg·kg-1,速效磷含量117.95 mg·kg-1,粉粒141.9 g·kg-1,粘粒782.9 g·kg-1,砂粒75.1 g·kg-1,土壤Cd本底值0.45 mg·kg-1。
供試主要儀器包括ZM200 Pulverisette 14型高速旋轉(zhuǎn)粉碎機(jī)/儀(德國(guó)Fritsch公司)、PHG-9030A型烘箱(上海精宏設(shè)備有限公司)、ST-60型自動(dòng)消解儀(北京普利泰科儀器有限公司)和SPECTRO ARCOS EOP型ICP-AES(德國(guó)斯派克公司)等;彗星實(shí)驗(yàn)試劑盒由北京博樂通生物科技有限公司提供,其余試劑均為分析純或優(yōu)級(jí)純。
1.2.1 脅迫處理 于2012年1月進(jìn)行Cd脅迫處理。用CdCl2·2.5H2O配制Cd處理液。將實(shí)驗(yàn)用土過0.5 cm尼龍篩,稱取適量土壤,將Cd處理液噴灑至土壤中并攪拌均勻,使土壤中Cd添加量分別為0.0(對(duì)照)、 0.1、 0.3、 0.6、 1.0、 3.0、 6.0、 10.0和 30.0 mg·kg-1,土壤中Cd實(shí)際含量為添加量與本底量之和。將各處理土壤分別裝入花盆中,每個(gè)花盆5 kg,每處理設(shè)4次重復(fù)。將生長(zhǎng)健壯且生長(zhǎng)狀況相似的1年生三七種苗移栽至花盆中,每盆栽種3株,統(tǒng)一栽培管理。于2012年10月進(jìn)行生長(zhǎng)狀況觀察并采集根系樣品供酶活性測(cè)定及DNA損傷檢測(cè)。
1.2.2 生長(zhǎng)狀況觀察及生長(zhǎng)量測(cè)定 2012年10月,記錄各處理三七植株的成活率和單株復(fù)葉數(shù),并測(cè)量植株的株高、葉長(zhǎng)和葉寬(用于單株葉面積計(jì)算),測(cè)量精度0.1 cm。用普通天平(精度0.01 g)分別稱量三七單株根、莖和葉片的鮮質(zhì)量;將新鮮根、莖和葉置于55 ℃處理72 h,冷卻后分別稱量單株根、莖和葉片干質(zhì)量。
1.2.3 彗星實(shí)驗(yàn) 采集三七成熟植株根系,先將根尖取下,洗凈后于4 ℃保存。取4 ℃保存的根尖,切成適當(dāng)大小,采用機(jī)械法分離細(xì)胞核,使細(xì)胞核懸液密度為每個(gè)視野下20~40個(gè)[13],按照彗星實(shí)驗(yàn)試劑盒說明進(jìn)行單細(xì)胞凝膠電泳和彗星圖像分析。以彗尾長(zhǎng)、尾部DNA相對(duì)含量(尾部DNA含量與總DNA含量的比值)和Olive尾矩 (尾部DNA含量與尾長(zhǎng)的乘積) 作為彗星實(shí)驗(yàn)定量分析指標(biāo)。
1.2.4 抗氧化酶活性測(cè)定 將去除根尖后的剩余根系洗凈,4 ℃保存。取0.2 g根系樣品置于預(yù)冷研缽中,加入預(yù)冷的50 mmol·L-1磷酸緩沖液 (pH 7.8)1.6 mL, 冰浴研磨至勻漿, 于4 ℃、 12 000g離心20 min,取上清液用于酶活性測(cè)定。參照文獻(xiàn)[14],采用氮藍(lán)四唑光化還原法測(cè)定SOD活性,采用愈創(chuàng)木酚法測(cè)定POD活性,采用過氧化氫法測(cè)定 CAT活性。
不同程度土壤Cd脅迫對(duì)三七植株成活率、株高、單株復(fù)葉數(shù)和單株葉面積的影響見表1;不同程度土壤Cd脅迫對(duì)三七單株根、莖和葉片鮮質(zhì)量及干質(zhì)量的影響見表2;在不同程度土壤Cd脅迫條件下種植10個(gè)月后三七植株的形態(tài)見圖1。
表1 土壤Cd脅迫對(duì)三七植株4個(gè)生長(zhǎng)指標(biāo)的影響
表1結(jié)果顯示:與對(duì)照組相比,隨土壤Cd添加量的增加,三七植株的成活率、株高、單株復(fù)葉數(shù)和單株葉面積均呈先升高后下降的變化趨勢(shì)。在Cd脅迫條件下三七植株的成活率均高于對(duì)照,且在Cd添加量0.6、1.0和3.0 mg·kg-1條件下植株成活率較高(均超過80%),顯著高于對(duì)照(P<0.05),而其余處理組的成活率均與對(duì)照無(wú)顯著差異。在Cd添加量0.1~6.0 mg·kg-1條件下株高均高于對(duì)照,而在Cd添加量10.0和30.0 mg·kg-1條件下株高則均低于對(duì)照;其中,在Cd添加量0.3 mg·kg-1條件下株高最大(23.19 cm)且顯著高于對(duì)照(P<0.05),其余處理組的株高與對(duì)照均無(wú)顯著差異。各處理組的單株復(fù)葉數(shù)均多于對(duì)照,其中Cd添加量3.0 mg·kg-1處理組的單株復(fù)葉數(shù)最多(5.01片);在Cd添加量0.1、0.3、1.0和3.0 mg·kg-1條件下單株復(fù)葉數(shù)顯著多于對(duì)照(P<0.05),其余處理組的單株復(fù)葉數(shù)與對(duì)照差異不顯著。在Cd添加量0.1~3.0 mg·kg-1條件下三七植株的單株葉面積均高于對(duì)照、而在Cd添加量6.0、10.0和30.0 mg·kg-1條件下單株葉面積則低于對(duì)照,但各處理組的單株葉面積與對(duì)照均無(wú)顯著差異;其中,在Cd添加量0.3 mg·kg-1條件下單株葉面積最大,達(dá)到16.39 cm2。
表2 土壤Cd脅迫對(duì)三七單株不同器官質(zhì)量的影響
1-9: 土壤Cd添加量分別為 0.0(對(duì)照)、0.1、0.3、0.6、1.0、3.0、6.0、10.0和30.0 mg·kg-1 Adding amount of Cd in soil is 0.0 (CK), 0.1, 0.3,0.6, 1.0, 3.0, 6.0, 10.0 and 30.0 mg·kg-1, respectively.
表2結(jié)果顯示:隨土壤Cd添加量的增加,三七單株根、莖和葉的鮮質(zhì)量及干質(zhì)量均呈波動(dòng)但總體上先升高后下降的變化趨勢(shì)。三七單株根鮮質(zhì)量和干質(zhì)量、單株莖鮮質(zhì)量和干質(zhì)量、單株葉鮮質(zhì)量和干質(zhì)量的最大值分別出現(xiàn)在土壤Cd添加量0.3、1.0和1.0 mg·kg-1處理組, 其中僅單株根鮮質(zhì)量和單株葉干質(zhì)量的最大值與對(duì)照有顯著差異(P<0.05),其余處理組的各項(xiàng)指標(biāo)均與對(duì)照無(wú)顯著差異。在土壤Cd添加量30 mg·kg-1條件下,單株根、莖和葉的鮮質(zhì)量及干質(zhì)量均小于對(duì)照但差異不顯著。
從上述生長(zhǎng)指標(biāo)可見:在土壤Cd水平較低的條件下,三七的各項(xiàng)生長(zhǎng)指標(biāo)均高于對(duì)照,表明低水平Cd處理對(duì)三七生長(zhǎng)有促進(jìn)作用。從不同處理組植株的形態(tài)(圖1)也可看出這一結(jié)果。
在不同程度土壤Cd脅迫條件下種植10個(gè)月后三七根尖細(xì)胞DNA的彗星圖像見圖2;對(duì)照組與各處理組根尖細(xì)胞DNA損傷參數(shù)見表3。
由圖2可以看出:沒有受損的三七根尖細(xì)胞DNA呈現(xiàn)出圓形的熒光核心,而受損的DNA則出現(xiàn)彗星狀拖尾。由表3可以看出:不同程度土壤Cd脅迫條件下三七根尖細(xì)胞DNA的損傷程度有一定差異,但各指標(biāo)與對(duì)照均無(wú)顯著差異。其中,彗尾長(zhǎng)以1.0和6.0 mg·kg-1Cd處理組最長(zhǎng),平均值分別達(dá)到0.24和0.23 μm;10.0和30.0 mg·kg-1Cd處理組彗尾也較長(zhǎng),平均值分別達(dá)到0.18和0.19 μm,均明顯高于對(duì)照(0.15 μm)。尾部DNA相對(duì)含量以6.0和10.0 mg·kg-1Cd處理組最高,平均值分別為14.16%和15.05%,均明顯高于對(duì)照(12.98%)。Olive尾矩以6.0、 10.0和30.0 mg·kg-1Cd處理組最大,平均值分別為0.45、0.34和0.33,均明顯高于對(duì)照(0.12)。說明在土壤Cd添加量較高的條件下(6.0、10.0和30.0 mg·kg-1Cd),Cd對(duì)三七根尖細(xì)胞的DNA損傷較為嚴(yán)重。
1-9: 土壤Cd添加量分別為 0.0(對(duì)照)、0.1、0.3、0.6、1.0、3.0、6.0、10.0和30.0 mg·kg-1 Adding amount of Cd in soil is 0.0 (CK), 0.1, 0.3,0.6, 1.0, 3.0, 6.0, 10.0 and 30.0 mg·kg-1, respectively.
表3 土壤Cd脅迫條件下三七根尖細(xì)胞DNA損傷參數(shù)比較
經(jīng)不同程度土壤Cd脅迫處理后三七根系SOD、POD和CAT活性的變化見表4。結(jié)果表明:隨Cd添加量的提高,三七根系中SOD、POD和CAT活性均有明顯變化,但變化趨勢(shì)有差異。SOD活性呈現(xiàn)先上升后下降、然后再緩慢上升再下降的波動(dòng)趨勢(shì),其中0.3 mg·kg-1Cd處理組的SOD活性顯著(P<0.05)高于對(duì)照,而0.6、1.0、3.0和30.0 mg·kg-1Cd處理組的SOD活性極顯著(P<0.01)或顯著(P<0.05)低于對(duì)照。POD活性總體上隨土壤Cd添加量的提高逐漸升高,僅0.1 mg·kg-1Cd處理組的POD活性低于對(duì)照,其余處理組的POD活性均高于對(duì)照;其中,1.0、3.0、6.0、10.0和30.0 mg·kg-1Cd處理組的POD活性與對(duì)照有極顯著差異(P<0.01),以10.0 mg·kg-1Cd處理組的POD活性最高。CAT活性的變化趨勢(shì)也呈先上升后略有下降、再上升再下降的波動(dòng)趨勢(shì),各處理組的CAT活性均高于對(duì)照,其中,1.0、3.0、6.0、10.0和30.0 mg·kg-1處理組的CAT活性與對(duì)照有極顯著差異(P<0.01),以6.0 mg·kg-1處理組的CAT活性最高。
實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:在 Cd添加量較低的條件下,三七根系中SOD、POD和CAT活性有所提高,但Cd添加量超過一定限制值,則抗氧化酶活性受到抑制。不同酶的Cd限制值不同,三七根系中SOD、POD和CAT活性的Cd限制值分別為0.3、10.0和6.0 mg·kg-1。
表4 土壤Cd脅迫對(duì)三七根系中SOD、 POD和CAT活性的影響
實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:Cd對(duì)三七生長(zhǎng)的抑制作用不是簡(jiǎn)單的毒害作用,而是在低濃度條件下促進(jìn)其生長(zhǎng)、在高濃度條件下抑制三七生長(zhǎng),而在其他植物中也有類似現(xiàn)象[15-18]。低濃度Cd脅迫能促進(jìn)植物生長(zhǎng),其原因是低濃度Cd可提高或加速根系的某些生理生化反應(yīng),從而促進(jìn)根系生長(zhǎng)[19];也有研究者[20]認(rèn)為低濃度Cd脅迫對(duì)根毛生長(zhǎng)有一定的促進(jìn)作用,從而增強(qiáng)植物對(duì)Cd的耐性。但根系的這種作用因植物種類不同而異。
通過彗星實(shí)驗(yàn)研究Cd脅迫條件下三七根尖DNA損傷,但通過肉眼觀察并不能從各處理組的彗星圖像中發(fā)現(xiàn)明顯的拖尾現(xiàn)象,而且雖然某些Cd處理組的DNA損傷參數(shù)較高,但與對(duì)照無(wú)顯著差異。分析其原因可能為:其一,其他研究者[21-22]是用Cd鹽溶液直接處理植物組織,而本研究采用的脅迫方法是將Cd鹽加入土壤中進(jìn)行脅迫處理,由于土壤的緩沖性能[23-24]使Cd毒性明顯減弱。其次,本研究采用機(jī)械法分離三七根尖細(xì)胞核,細(xì)胞核的分離效果可能不佳,從而影響彗星實(shí)驗(yàn)的結(jié)果,有待利用其他方法(如酶解法)進(jìn)行進(jìn)一步研究。第三,一些植物組織中含有某些特殊的化學(xué)成分,這些成分會(huì)增加凝膠的粘性進(jìn)而阻礙DNA在電場(chǎng)中的遷移[25],但三七根尖中是否含有這類成分則需進(jìn)一步研究。此外,不同植物種類及不同器官間彗星實(shí)驗(yàn)的結(jié)果也存在很大差異,如在Cd脅迫條件下,洋蔥(AlliumcepaLinn.)[26]、蠶豆(ViciafabaLinn.)[22]及豌豆(PisumsativumLinn.)[27]的DNA損傷程度不同,而且Cd對(duì)豌豆根部DNA的損傷遠(yuǎn)大于其對(duì)葉片DNA的損傷[27]。這些因素均對(duì)彗星實(shí)驗(yàn)的結(jié)果有影響。
SOD、POD和CAT是清除植物體內(nèi)活性氧的抗氧化酶,在逆境條件下通過抗氧化酶降低體內(nèi)活性氧的積累,從而減輕逆境因子對(duì)機(jī)體的傷害。在Cd脅迫條件下,抗氧化酶活性也有類似的適應(yīng)性作用,且這種作用與Cd脅迫水平有關(guān)[28-29]。本研究中,三七根系的SOD和CAT活性隨Cd添加量的提高呈波動(dòng)的變化趨勢(shì),在其他植物種類中也有類似現(xiàn)象。如Cd脅迫條件下狹葉香蒲(TyphaangustifoliaLinn.)葉片中SOD和POD活性隨Cd濃度提高呈低濃度時(shí)上升、高濃度時(shí)下降的變化趨勢(shì)[30];Al脅迫條件下小麥(TriticumaestivumLinn.)的SOD、CAT和POD活性隨脅迫強(qiáng)度的增加而升高,重度脅迫下會(huì)有所下降[31]。其原因可能是:在低濃度脅迫條件下,植物體內(nèi)的抗氧化酶系統(tǒng)受到誘導(dǎo),其活性增強(qiáng)以清除過量的活性氧;而當(dāng)脅迫水平持續(xù)增加時(shí),植物體內(nèi)的活性氧積累超過了抗氧化酶的清除能力,使植物細(xì)胞及組織功能受到影響,進(jìn)而導(dǎo)致抗氧化酶活性降低[32]??寡趸富钚缘淖兓侵参飳?duì)Cd脅迫的耐性機(jī)制之一。而Yan等[7]的研究結(jié)果顯示:隨As脅迫水平的增加,三七的SOD和POD活性顯著增加、CAT活性降低。這一結(jié)果與三七根系抗氧化酶活性對(duì)Cd脅迫的響應(yīng)不同,說明三七對(duì)不同重金屬脅迫的耐性不一致。
研究結(jié)果表明:較低水平的土壤Cd脅迫具有促進(jìn)三七生長(zhǎng)的作用、而較高水平的土壤Cd脅迫可抑制三七生長(zhǎng);Cd脅迫對(duì)三七根尖細(xì)胞DNA沒有明顯的損傷,但可導(dǎo)致三七根系SOD、POD和CAT活性不同程度變化。因此,對(duì)藥材三七種植而言,不能僅僅依據(jù)Cd對(duì)三七生長(zhǎng)的影響確立其土壤Cd安全濃度限值,還需要考慮Cd在三七藥材中的富集狀況和富集程度。有關(guān)三七藥材中Cd的積累和富集機(jī)制則有待進(jìn)一步的實(shí)驗(yàn)研究。
參考文獻(xiàn):
[1] 李 航, 朱長(zhǎng)生, 譚顯龍, 等. 云南金頂超大型鉛鋅礦床巖(礦)石中鎘的分布及富集特征[J]. 礦物學(xué)報(bào), 2007, 27(Z1): 381-382.
[2] 馮 江, 黃 鵬, 周建民. 100種中藥材中有害元素鉛 鎘 砷的測(cè)定和意義[J]. 微量元素與健康研究, 2001, 18(2): 43-44.
[3] 韓小麗, 張小波, 郭蘭萍, 等. 中藥材重金屬污染現(xiàn)狀的統(tǒng)計(jì)分析[J]. 中國(guó)中藥雜志, 2008, 33(18): 2041-2048.
[4] 郝南明, 田 洪, 茍 麗. 三七生長(zhǎng)初期不同部位重金屬元素含量測(cè)定[J]. 微量元素與健康研究, 2004, 21(5): 27-28, 31.
[5] 馮光泉, 劉云芝, 張文斌, 等. 三七植物體中重金屬殘留特征研究[J]. 中成藥, 2006, 28(12): 1796-1798.
[6] 馮光泉, 張文斌, 陳中堅(jiān), 等. 三七及其栽培土壤中幾種重金屬元素含量的測(cè)定[J]. 中草藥, 2003, 34(11): 1051-1054.
[7] YAN X L, LIN L Y, LIAO X Y, et al. Arsenic accumulation and resistance mechanism inPanaxnotoginseng, a traditional rare medicinal herb[J]. Chemosphere, 2012, 87(1): 31-36.
[9] 魏小鳳. 污染元素鎘對(duì)能源作物的生長(zhǎng)影響[D]. 北京: 華北電力大學(xué) (北京)環(huán)境工程學(xué)院, 2010.
[10] 張金彪, 黃維南. 鎘對(duì)植物的生理生態(tài)效應(yīng)的研究進(jìn)展[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào), 2000, 20(3): 514-523.
[11] ROJAS E, LOPEZ M C, VALVERDE M. Single cell gel electro-phoresis assay: methodology and applications[J]. Journal of Chromatography B: Biomedical Sciences and Applications, 1999, 722(1/2): 225-254.
[12] TICE R R, AGURELL E, ANDERSON D, et al. Single cell gel/comet assay: guidelines forinvitroandinvivogenetic toxicology testing[J]. Environmental and Molecular Mutagenesis, 2000, 35(3): 206-221.
[13] 曹玉偉, 馬 軍, 郭長(zhǎng)虹, 等. 植物彗星實(shí)驗(yàn)及其在生態(tài)毒理監(jiān)測(cè)中的應(yīng)用[J]. 生態(tài)毒理學(xué)報(bào), 2009, 4(2): 183-189.
[14] 楊 光, 錢 丹, 郭蘭萍, 等. 重金屬對(duì)膜莢黃芪種子生長(zhǎng)及抗氧化系統(tǒng)的影響[J]. 中國(guó)中藥雜志, 2010, 35(9): 1095-1099.
[15] 何俊瑜, 任艷芳, 王陽(yáng)陽(yáng), 等. 不同耐性水稻幼苗根系對(duì)鎘脅迫的形態(tài)及生理響應(yīng)[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào), 2011, 31(2): 522-528.
[16] 張 玲, 李俊梅, 王煥校. 鎘脅迫下小麥根系的生理生態(tài)變化[J]. 土壤通報(bào), 2002, 33(1): 61-65.
[17] 于方明, 仇榮亮, 湯葉濤, 等. Cd對(duì)小白菜生長(zhǎng)及氮素代謝的影響研究[J]. 環(huán)境科學(xué), 2008, 29(2): 506-511.
[18] 任艷芳, 何俊瑜, 劉 暢, 等. 鎘脅迫對(duì)萵苣幼苗生長(zhǎng)及抗氧化酶系統(tǒng)的影響[J]. 生態(tài)環(huán)境學(xué)報(bào), 2009, 18(2): 494-497.
[19] 段昌群, 王煥校, 曲仲湘. 重金屬對(duì)蠶豆(Viciafaba)根尖的核酸含量及核酸酶活性影響的研究[J]. 環(huán)境科學(xué), 1992, 13(5): 31-35.
[20] 仇 碩, 黃蘇珍. Cd脅迫下黃菖蒲幼苗根系生長(zhǎng)與Cd積累的研究[J]. 植物資源與環(huán)境學(xué)報(bào), 2008, 17(3): 33-38.
[21] 聶志剛, 王 艷, 李韶山. 重金屬誘導(dǎo)擬南芥原生質(zhì)體DNA損傷的單細(xì)胞凝膠電泳檢測(cè)[J]. 植物學(xué)報(bào), 2009, 44(1): 117-123.
[22] 張旭紅, 林愛軍, 蘇玉紅, 等. 鎘引起蠶豆(Viciafaba)葉片DNA損傷和細(xì)胞凋亡研究[J]. 環(huán)境科學(xué), 2006, 27(4): 787-793.
[23] 林玉鎖. 土壤對(duì)重金屬緩沖性能的研究[J]. 環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào), 1995, 15(3): 289-294.
[24] 符娟林, 章明奎, 黃昌勇. 用分級(jí)方法評(píng)估土壤對(duì)重金屬的緩沖能力[J]. 環(huán)境科學(xué)研究, 2006, 19(3): 109-113.
[25] DELINCéE H, SOIKA C. Improvement of the ESR detection of irradiated food containing cellulose employing a simple extraction method[J].Radiation Physics and Chemistry,2002, 63(3): 437-441.
[26] SETH C S, MISRA V, CHAUHAN L K, et al. Genotoxicity of cadmium on root meristem cells ofAlliumcepa: cytogenetic and Comet assay approach[J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2008, 71(3): 711-716.
[27] HATTAB S, CHOUBA L, BEN KHEDER M, et al. Cadmium- and copper-induced DNA damage inPisumsativumroots and leaves as determined by the Comet assay[J]. Plant Biosystems, 2009, 143(S1): S6-S11.
[28] 劉可慧, 于方明, 李明順, 等. 鎘脅迫對(duì)小白菜(BrassicacampestrisL.)抗氧化機(jī)理的影響[J]. 生態(tài)環(huán)境, 2008, 17(4): 1466-1470.
[29] 段云青, 王 艷, 雷煥貴. 鎘脅迫對(duì)小白菜POD、PPO和SOD活性的影響[J]. 河南農(nóng)業(yè)科學(xué), 2006(7): 88-91.
[30] 吳曉麗, 羅玉明, 徐迎春, 等. 鎘脅迫對(duì)狹葉香蒲某些生理指標(biāo)的影響[J]. 植物資源與環(huán)境學(xué)報(bào), 2007, 16(1): 74-78.
[31] 彭 艷, 李 洋, 楊廣笑, 等. 鋁脅迫對(duì)不同小麥SOD、CAT、POD活性和MDA含量的影響[J]. 生物技術(shù), 2006, 16(3): 38-42.
[32] 尹永強(qiáng), 胡建斌, 鄧明軍. 植物葉片抗氧化系統(tǒng)及其對(duì)逆境脅迫的響應(yīng)研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào), 2007, 23(1): 105-110.