劉淑瓊， 楊煉紅△， 蔣龍元， 葉晉豪

眾多研究表明，炎癥反應(yīng)貫穿著各種急、慢性神經(jīng)系統(tǒng)疾病的整個病理過程［1］。近有研究顯示P2X7受體位于炎癥反應(yīng)的上游通路，并通過多種信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑影響細胞的增殖、凋亡［2］。米諾環(huán)素(minocycline，Mino)能抑制小膠質(zhì)細胞活化，減少炎癥介質(zhì)分泌，從而達到在中樞神經(jīng)系統(tǒng)的保護作用［3］。但是，Mino抑制小膠質(zhì)細胞活化的具體機制尚未完全明確，是否與P2X7受體是否相關(guān)并未見報道。本文通過建立脂多糖(lipopolysaccharide，LPS)刺激小膠質(zhì)細胞株BV-2細胞活化模型，探討P2X7受體在Mino抑制BV-2細胞活化所起的作用。

材料和方法

1 主要試劑和儀器

DMEM/F12培養(yǎng)基和胎牛血清(Gibco);Mino粉劑和LPS(Sigma);RNAiso Plus、RT試劑盒和SYBR?Premix Ex TaqTMII(TaKaRa);小鼠 TNF-α ELISA 試劑盒和小鼠IL-1β ELISA試劑盒(博士德);實時熒光定量 PCR儀(Roche);兔抗鼠 P2X7受體抗體(Alomone);α-tubulinⅠ抗和HRP標(biāo)記的Ⅱ抗(羊抗兔，羊抗鼠)BCA蛋白定量試劑盒(博彩公司);ECL化學(xué)發(fā)光試劑盒(Millipore)。

2 方法

2.1 BV-2細胞的培養(yǎng) 以含10%胎牛血清的DMEMF/12為培養(yǎng)液，在5%CO2、37℃條件下25 cm2培養(yǎng)瓶中傳代培養(yǎng)。

2.2 MTT法測定不同濃度Mino對細胞活力的影響B(tài)V-2細胞按每孔5 000個的密度種于96孔板，待細胞貼壁過夜后，分別加入 0 μmol/L、0.1 μmol/L、1 μmol/L 和10 μmol/L Mino作用24 h，用MTT 法計算細胞存活率。

2.3 RT-PCR檢測P2X7受體mRNA表達的變化按每孔20×105個細胞的密度種于6孔板中，待細胞貼壁過夜后，將細胞隨機分為5組:(1)空白對照組:除培養(yǎng)基外未進行任何加藥處理;(2)LPS對照組:加入1 mg/L LPS培養(yǎng)8 h;(3)LPS+0.1 μmol/L Mino組:在同 (2)組處理前加0.1 μmol/L Mino預(yù)處理30 min;(4)LPS+1 μmol/L Mino組:在同(2)組處理前加1 μmol/L Mino預(yù)處理30 min;(5)LPS+10 μmol/L Mino組:在同 (2)組處理前加10 μmol/L Mino預(yù)處理30 min。按TaKaRa公司試劑盒說明操作，提取總RNA，逆轉(zhuǎn)錄并通過real-time PCR檢測目標(biāo)cDNA，以β-actin為內(nèi)參照。PCR引物，P2X7受體正義鏈 5′-GTCTTGCACATGATCGTCTTTTC-3′，反義鏈 5′-CCTCTGCTATGCCTTTGACCTT-3′;β-actin 正義鏈 5′-CGGCTACCACATCCAAGGAA-3′，反義鏈 5′-GCTGGAATTACCGCGGCT-3′(均由 TaKa-Ra合成)。反應(yīng)體系為 20 μL，反應(yīng)條件:95℃ 3 min預(yù)變性，95℃ 10 s，55℃ 30 s，40個循環(huán)，并在每個循環(huán)延伸末端點收集熒光信號，繪制熔解曲線。所有標(biāo)本均重復(fù)檢測3次，應(yīng)用Relative Quantification Software 1.0軟件分析，計算出Ct值，通過相對定量(relative quantity，RQ)法，計算目的基因相對于參照因子的倍數(shù)來比較基因的表達差異。最終結(jié)果以待測基因/內(nèi)參照的Ct值表示。

2.4 形態(tài)學(xué)觀察 按每孔5×104個細胞的密度種于24孔板中，待細胞貼壁過夜后，將細胞隨機分為5組(分組同2.3，作用時間為24 h)。處理終止時在相差顯微鏡下拍照。

2.5 ELISA檢測細胞培養(yǎng)液上清TNF-α及IL-1β的分泌 處理同2.4，收集各組細胞培養(yǎng)液上清，按ELISA試劑盒說明書檢測TNF-α及IL-1β含量。

2.6 Western blotting檢測P2X7受體蛋白表達的變化 分組及處理同2.4，提取各組細胞總蛋白，采用BCA法進行蛋白定量。取30 μg蛋白提取液，樣品于SDS-PAGE分離后，轉(zhuǎn)移到PVDF膜上。用5%BSA封閉1 h，隨后分別加入P2X7受體和α-tubulin抗體，4℃孵育過夜，用TBST洗3次，每次10 min。Ⅱ抗孵育1 h后，用TBST洗3次，每次10 min，最后用ECL法顯色。采用Quantity One軟件分析。

3 統(tǒng)計學(xué)處理

數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示。組間均數(shù)比較采用單因素方差分析。數(shù)據(jù)采用SPSS 16.0統(tǒng)計軟件包分析，以P＜0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

結(jié) 果

1 0.1 ～10 μmol/L Mino 對細胞活力的影響

由表1可見，0.1～10 μmol/L Mino對 BV-2細胞活力無顯著影響。

表1 不同濃度Mino處理對BV-2細胞活力的影響Table 1.The effect of different concentrations of Mino on the viability of BV-2 cells(Mean±SD.n=6)

2 各處理組P2X7受體RT-PCR結(jié)果

如圖1所示，經(jīng) LPS處理后，可見 P2X7受體mRNA表達量增高，與空白對照組比，差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P ＜ 0.05)。經(jīng) 0.1 μmol/L、1 μmol/L 和 10 μmol/L Mino處理后，P2X7受體mRNA表達量與LPS處理組比較，差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P＜0.01)?？梢?，0.1～10 μmol/L Mino可抑制該受體的表達。

Figure 1. Effects of different concentrations of minocycline(Mino)on the mRNA expression of P2X7 receptor in LPS-induced BV-2 cells.Mean±SD.n=3.#P＜0.05 vs control group;＊＊P ＜0.01 vs LPS group.圖1 各處理組P2X7受體的表達量

3 各處理組細胞形態(tài)學(xué)觀察

如圖2所示，正常情況下，BV-2細胞保持靜息狀態(tài)，即胞體較小，有細長的突起，呈梭形或者分枝狀;經(jīng)1 mg/L LPS激活后，BV-2細胞呈圓形，突起回縮，易聚團，或見細小的偽足，貼壁性較差，即為“阿米巴狀”。而LPS加不同濃度Mino環(huán)素處理組，細胞的激活狀態(tài)受到抑制。

Figure 2.Morphological changes of the BV-2 cells(×200).A:control group;B:LPS group;C:LPS+0.1 μmol/L group;D:LPS+1 μmol/L group;E:LPS+10 μmol/L group.圖2 各處理組細胞形態(tài)學(xué)觀察

4 各處理組細胞TNF-α及IL-1β的分泌

如圖3、4所示，LPS處理24 h后，細胞培養(yǎng)液上清TNF-α和IL-1β分泌增高，與空白對照組相比有顯著差異(P＜0.01)。Mino可呈量效相關(guān)地減少炎癥因子的分泌，在0.1～10 μmol/L范圍內(nèi)，Mino的劑量越大，細胞TNF-α及IL-1β分泌越受抑制，與LPS對照組相比均有顯著差異(P＜0.01)。

Figure 3.TNF-α concentration in the BV-2 cells with different treatments.Mean±SD.n=5.##P＜0.01 vs control group;＊＊P ＜0.01 vs LPS group.圖3 各處理組細胞TNF-α的分泌

Figure 4.IL-1β concentration in the BV-2 cells with different treatments.Mean±SD.n=5.##P＜0.01 vs control group;＊＊P ＜0.01 vs LPS group.圖4 各處理組細胞IL-1β的分泌

5 Western blotting檢測P2X7受體蛋白表達的變化

LPS組的曝光帶較空白對照組強，而加了Mino的各處理組曝光帶均較LPS組弱。同時，各組間tubulin強度一致，見圖5。

Figure 5.Effects of different concentrations of Mino on the protein expression of P2X7 receptor in LPS-induced BV-2 cells.A:control group;B:LPS group;C:LPS+0.1 μmol/L group;D:LPS+1 μmol/L group;E:LPS+10 μmol/L group.圖5 Western blotting檢測P2X7受體蛋白表達的變化

討 論

P2X7受體是嘌呤核苷酸受體家族中的一員，廣泛表達于神經(jīng)元、星形細胞、小膠質(zhì)細胞、血管內(nèi)皮細胞、少突膠質(zhì)祖細胞、Schwann細胞和 Müller細胞［4］。中樞神經(jīng)受損時，受損神經(jīng)元囊泡中的 ATP釋放，激活小膠質(zhì)細胞膜上的P2X7受體，進而釋放大量的TNF-α和 IL-β等炎癥因子。炎癥反應(yīng)是神經(jīng)系統(tǒng)疾病重要的病理過程，而小膠質(zhì)細胞是炎癥介質(zhì)的主要來源。P2X7受體因其在小膠質(zhì)細胞主導(dǎo)的炎癥介質(zhì)合成、分泌中的核心地位，在神經(jīng)系統(tǒng)疾病的病理演變中扮演著重要的角色。在阿爾茨海默?。?］、帕金森?。?］、缺血缺氧性腦?。?］、癲癇［8］等疾病中均可見小膠質(zhì)細胞上P2X7受體表達增多，同時伴有 IL-1β、IL-6、TNF-α 及 COX-2的分泌增多。阻斷P2X7受體表達的上調(diào)或激活無疑是炎癥相關(guān)神經(jīng)系統(tǒng)疾病治療的靶點之一。

作為第2代半合成的四環(huán)類廣譜抗生素，Mino在神經(jīng)系統(tǒng)疾病模型中有著廣泛的探索性的應(yīng)用。其中機制之一即為其對小膠質(zhì)細胞的抑制作用。有文獻報道［9］，P2X7受體特異性激動劑BZ-ATP能引起B(yǎng)V-2及原代培養(yǎng)的小膠質(zhì)細胞ERK1/2、JNK1/2等通路的活化，而Mino可抑制這一變化?；谝陨衔墨I，我們探討了P2X7受體是否與Mino抑制小膠質(zhì)細胞活化的過程相關(guān)。

在本模型中，在1 mg/L LPS的刺激下，BV2細胞P2X7受體基因及蛋白水平上的表達均可見升高。該結(jié)論在不同的細胞模型中也可看到。Zhang等［10］發(fā)現(xiàn)，經(jīng)LPS刺激人外周血單核細胞4 h后，P2X7 mRNA的表達升高，12 h后逐漸下降。而在培養(yǎng)的人小膠質(zhì)細胞中［11］，未接受LPS刺激的細胞表達少量P2X7受體，而LPS刺激1 h，該受體的表達開始升高，8 h后表達達到高峰期。有文獻［12］表明，P2X7受體表達水平與小膠質(zhì)細胞活性相關(guān)聯(lián)。Monif等［13］的研究表明，P2X7受體過表達時，小膠質(zhì)細胞從靜止時長突觸分支、小胞體的形態(tài)變?yōu)榘w肥大、突觸回縮的阿米巴態(tài);細胞因子也伴隨增多。這與我們形態(tài)學(xué)觀察及ELISA檢測細胞上清液TNF-α及IL-1β結(jié)果也相符。類似結(jié)論在原代小膠質(zhì)細胞模型上也可以看到［14］。

本實驗結(jié)果表明，不同濃度的Mino可抑制該受體的表達，同時細胞上清液TNF-α及IL-1β分泌受抑制。我們推測，這可能與Mino抑制P2X7受體相關(guān)。有文獻表明［15］，P2X7受體的活性調(diào)節(jié)參與了TNF-α及IL-1β的合成及分泌過程。由此可推測，Mino通過抑制P2X7的表達及改變P2X7的活性，從而抑制BV-2細胞的活化。這將為以小膠質(zhì)細胞活化為主要病理特征的神經(jīng)退行性病變、癲癇、缺血性卒中等疾病的治療提供新的思路。

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