• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      正常淋巴液對內(nèi)毒素休克小鼠內(nèi)毒素增敏系統(tǒng)的作用*

      2014-11-10 10:20:22孫自賢陳偉紅張立民趙自剛牛春雨
      微循環(huán)學(xué)雜志 2014年1期
      關(guān)鍵詞:淋巴液勻漿內(nèi)毒素

      崔 浩 孫自賢 崔 穎 陳偉紅 張立民 趙自剛 牛春雨

      內(nèi)毒素休克(Endotoxic Shock,ES)引起的多器官損傷是患者死亡的重要原因之一[1,2]。脂多糖結(jié)合蛋白(Lipopolysaccharide-Binding Protein,LBP)和脂多糖受體(Lipopolysaccharide Receptor,CD14)可提高機(jī)體多種細(xì)胞對細(xì)菌內(nèi)毒素或脂多糖(Lipopolysaccharide,LPS)的敏感性,使內(nèi)毒素的生物活性提高數(shù)百倍甚至數(shù)千倍,是內(nèi)毒素激活體內(nèi)炎性細(xì)胞合成和分泌大量細(xì)胞因子、引起失控性炎癥反應(yīng)、誘發(fā)組織和器官損傷的重要增敏系統(tǒng)[3,4],在膿毒癥的發(fā)展進(jìn)程中起到重要作用[5]。本課題組在前期以靜脈輸入LPS方法建立大鼠內(nèi)毒素休克模型時發(fā)現(xiàn),輸入來自正常犬的腸淋巴液可有效改善內(nèi)毒素休克大鼠的血液微循環(huán)障礙及淋巴微循環(huán)障礙[6],改善肝、腎器官的血液灌注量[7],降低重要組織器官的黏附分子水平、髓過氧化物酶活性[8],降低炎癥反應(yīng)、自由基含量和組織損傷[8,9];Cheng等[10]的 研 究 也 發(fā) 現(xiàn),正 常 腸 淋 巴 液(Normal Mesenteric Lymph,NML)能降低內(nèi)毒素導(dǎo)致的肺血管內(nèi)皮細(xì)胞的黏附分子表達(dá)和炎癥反應(yīng)??梢姡Dc淋巴液對內(nèi)毒素休克具有一定的干預(yù)作用,這也可能是未來防治內(nèi)毒素休克的有效藥物靶點(diǎn)。但內(nèi)毒素致敏系統(tǒng)在正常淋巴液干預(yù)內(nèi)毒素休克器官損傷過程中,究竟發(fā)揮什么作用尚不清楚。為此,本研究側(cè)重觀察正常腸淋巴液對內(nèi)毒素休克內(nèi)毒素致敏系統(tǒng)的作用。

      1 材料與方法

      1.1 引流正常淋巴液

      18只SPF級、體質(zhì)量20g-25g的BALC/c雄性小鼠(中國食品藥品檢定研究院,許可證號SCXK(京)2009-0017)用于正常淋巴液引流。操作方法:小鼠經(jīng)1%戊巴比妥鈉(50mg/Kg,德國/北京化學(xué)試劑公司分裝)腹腔注射麻醉后,在腹部正中線偏右作一長2cm縱行切口,打開腹腔,暴露腸系膜根部,在手術(shù)顯微鏡下行腸淋巴管插管,持續(xù)引流腸淋巴液60min,引流的淋巴液量為每只小鼠20μl-60μl。然后以1 500rpm離心5min,取上清液置于低溫冰箱(-75℃)冷凍備用。實驗過程中的動物處置方法符合動物醫(yī)學(xué)倫理學(xué)標(biāo)準(zhǔn)。

      1.2 復(fù)制內(nèi)毒素休克小鼠模型及正常淋巴液干預(yù)

      另取18只SPF級、體質(zhì)量20g-25g的BALC/c雄性小鼠(來源同上)隨機(jī)均分為假休克組(sham shock,SS組)、內(nèi)毒素休克模型組(ES組)、正常腸淋巴液干預(yù)內(nèi)毒素休克組(簡稱腸淋巴液干預(yù)組)(NML+ES組)。

      小鼠經(jīng)腹腔注射戊巴比妥鈉(50mg/Kg)全身麻醉后,在手術(shù)顯微鏡下行股部手術(shù):鈍性分離股動脈,經(jīng)股動脈注射1%肝素鈉(1ml/Kg)全身抗凝,插管,通過三通管連接RM6240BD型生物信號采集系統(tǒng)(成都儀器廠),連續(xù)監(jiān)測整個實驗過程中的平均動脈血壓(Mean Artery Pressure,MAP)。術(shù)后穩(wěn)定30min,ES組和NML+ES組小鼠腹腔注射LPS(O111:B4,美國Sigma公司);質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.5%,35mg/Kg),成功復(fù)制內(nèi)毒素休克模型[11]。

      在LPS注射60min后,NML+ES組小鼠經(jīng)股動脈[12,13]輸入正常淋巴液,輸入量參照本課題組前期研究結(jié)果[6-9]確定為小鼠全血量的1/15(全血量為小鼠體重的1/13),大約100μl-150μl,輸注完成后加推少量生理鹽水,以確保淋巴液全部注入體內(nèi)。

      ES組僅注射等量的生理鹽水;SS組小鼠僅實施與其它兩組小鼠完全相同的手術(shù),不腹腔注射LPS,不輸入正常淋巴液,只在相同時間點(diǎn)輸入等量生理鹽水。

      1.3 標(biāo)本制備

      在腹腔注射LPS后6h麻醉小鼠,迅速摘取各組小鼠的肺、心臟、肝臟,置于無菌EP管中,-75℃凍存(702型低溫冰箱,美國熱電公司)。實驗時取出凍存的肺、肝、心肌組織,分析天平稱重后,按1∶9比例,加入4℃生理鹽水,在冰浴環(huán)境中,應(yīng)用FJ-200型高速分散勻質(zhì)機(jī)(上海標(biāo)本模型廠)制備10%組織勻漿,使用Labofuge 400R型高速低溫離心機(jī)(德國科峻公司)于0℃-4℃、3 000r/min離心10min,取上清用于相關(guān)指標(biāo)檢測。

      1.4 指標(biāo)檢測

      應(yīng)用小鼠LBP、CD14、腫瘤壞死因子(Tumor Necrosis Factor-α,TNF-α)、白介素 6(Interleukin 6,IL-6)ELISA檢測試劑盒(美國R&D公司生產(chǎn)、江蘇鎮(zhèn)江厚普生物科技有限公司合成),先按試劑盒說明書繪制 LBP、CD14、TNF-α、IL-6標(biāo)準(zhǔn)曲線(曲線方程分別為 y=0.128x+0.003x2-0.0001874x3,r2=0.9992;y=0.061x-0.00004486x2-0.000004574x3,r2=0.9995;y=0.016x-0.0004087x2+0.00000006004x3,r2=0.9977;y=0.045x-0.00005297x2-0.000003114x3,r2=0.9993);再按步驟檢測各組小鼠組織勻漿的LBP、CD14、TNF-α、IL-6含量。檢測儀器為SpectraMax M3型全自動酶標(biāo)儀(美國 MD公司),OD值于450nm處獲得。組織勻漿的蛋白定量采用Bradford法(試劑盒購自碧云天生物技術(shù)研究所)。

      1.5 統(tǒng)計學(xué)處理

      應(yīng)用SPSS 19.0統(tǒng)計學(xué)軟件。實驗數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,方差齊性資料多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較或組內(nèi)比較均用t檢驗;方差不齊性資料采用Kruskal Wallis檢驗。P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

      2 結(jié) 果

      2.1 各組小鼠多器官組織勻漿LBP含量比較

      ES組肺、肝、心肌勻漿的LBP含量均顯著高于SS組(P<0.05);NML+ES組肺、心肌勻漿LBP含量較ES組明顯下降,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),且與SS組無統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05)。見表1。

      表1 各組小鼠多器官組織勻漿LBP含量(ng/g protein)(±s,n均=6)

      表1 各組小鼠多器官組織勻漿LBP含量(ng/g protein)(±s,n均=6)

      注:與SS組比較,1)P<0.05;與 ES組比較,2)P<0.05

      ?

      2.2 各組小鼠多器官組織勻漿CD14含量比較

      ES組肺、肝、心肌勻漿CD14含量明顯高于SS組(P<0.05);NML+ES組心肌勻漿CD14含量與ES組比較顯著降低(P<0.05),但肝、肺組織勻漿CD14含量與ES組比較無顯著下降(P>0.05)。見表2。

      表2 各組小鼠多器官組織勻漿CD14含量(ng/g protein)(±s,n均=6)

      表2 各組小鼠多器官組織勻漿CD14含量(ng/g protein)(±s,n均=6)

      注:與SS組比較,1)P<0.05;與 ES組比較,2)P<0.05

      ?

      2.3 各組小鼠多器官組織勻漿TNF-α含量比較

      ES組肺、肝、心肌勻漿TNF-α含量顯著高于SS組(P<0.05);NML+ES組肺、肝、心肌勻漿TNF-α含量均顯著低于ES組(P<0.05)。見表3。

      表3 各組小鼠多器官組織勻漿TNF-α含量(ng/g protein)(±s,n均=6)

      表3 各組小鼠多器官組織勻漿TNF-α含量(ng/g protein)(±s,n均=6)

      注:與SS組比較,1)P<0.05;與 ES組比較,2)P<0.05

      ?

      2.4 各組小鼠多器官組織勻漿IL-6含量比較

      ES組肺、肝、心肌勻漿IL-6含量均顯著高于SS組(P<0.05);NML+ES組肝、心肌勻漿IL-6含量顯著低于ES組(P<0.05),且與SS組無統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05)。見表4。

      表4 各組小鼠多器官組織勻漿IL-6含量(ng/g protein)(±s,n均=6)

      表4 各組小鼠多器官組織勻漿IL-6含量(ng/g protein)(±s,n均=6)

      注:與SS組比較,1)P<0.05;與 ES組比較,2)P<0.05

      ?

      3 討 論

      引起內(nèi)毒素休克的原因很多,研究者根據(jù)不同致病因素建立了多種內(nèi)毒素休克模型,如靜脈輸入LPS或菌液[14,15]模擬腸源性細(xì)菌、內(nèi)毒素移位引起的菌血癥、敗血癥休克;腹腔注射LPS或菌液[11-13,16],模擬急性腹腔感染引起的內(nèi)毒素性休克;還有以盲腸結(jié)扎穿孔[17,18]模擬腸穿孔引起腹腔感染等均有一定的代表性和臨床意義。

      本課題組在前期研究中,應(yīng)用靜脈輸入LPS導(dǎo)致大鼠內(nèi)毒素休克模型驗證了異種正常腸淋巴液對內(nèi)毒素休克微循環(huán)、血液灌注量、白細(xì)胞黏附以及器官損傷具有良好的干預(yù)作用。為了進(jìn)一步擴(kuò)展正常淋巴液的藥理學(xué)作用,本文應(yīng)用腹腔注射LPS的方法復(fù)制了小鼠內(nèi)毒素休克模型,結(jié)果顯示小鼠MAP在腹腔注射LPS后90min-360min的多個時間點(diǎn)顯著低于假休克組,并出現(xiàn)了內(nèi)毒素性休克的典型血壓變化,即先下降,后緩慢回升,繼續(xù)下降至較低水平,尤其是在340min以后(結(jié)果將另文發(fā)表),表明該模型是成功的。

      已有研究表明,LPS除了直接損傷血管內(nèi)皮細(xì)胞、組織實質(zhì)細(xì)胞外,更重要的是其與LBP結(jié)合形成的LPS-LBP復(fù)合物與單核巨噬細(xì)胞表面的CD14結(jié)合后激活免疫細(xì)胞引起失控性炎癥反應(yīng),成為LPS導(dǎo)致組織損傷的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。因此,LBP/CD14系統(tǒng)也被稱作內(nèi)毒素增敏系統(tǒng)[19,20]。為了進(jìn)一步揭示正常腸淋巴液干預(yù)內(nèi)毒素休克的作用機(jī)制,本文進(jìn)一步觀察了正常腸淋巴液對內(nèi)毒素休克小鼠肺、肝、心肌組織LBP/CD14以及炎癥因子TNF-α、IL-6含量的影響。結(jié)果顯示,小鼠在受到內(nèi)毒素攻擊后,肺、肝、心肌組織的LBP、CD14含量均顯著升高,成為LPS導(dǎo)致器官炎癥反應(yīng)的重要環(huán)節(jié),致使這些器官組織的炎癥因子TNF-α、IL-6高水平表達(dá)。說明內(nèi)毒素休克后器官擴(kuò)散的炎癥反應(yīng)是LPS及LBP/CD14增加LPS作用的共同結(jié)果。當(dāng)給予小劑量正常小鼠腸淋巴液后,內(nèi)毒素休克小鼠肺組織和心肌組織的LBP和CD14水平顯著降低,肺組織炎癥因子TNF-α及心肌組織TNF-α、IL-6水平也同步下降。由此表明,正常淋巴液減輕肺、心肌組織損傷的機(jī)制可能與其降低內(nèi)毒素增敏系統(tǒng)的作用有關(guān)。

      本實驗結(jié)果還顯示,輸入正常淋巴液在降低肝組織炎癥因子TNF-α與IL-6水平的同時,并未引起肝組織LBP/CD14水平的下降,這提示正常淋巴液減輕內(nèi)毒素休克肝損傷的作用可能與內(nèi)毒素增敏系統(tǒng)無關(guān),其作用可能是通過其它途徑實現(xiàn)的,如通過提高肝組織血液灌注量[7]、降低白細(xì)胞黏附[8]、降低自由基損傷[9]等,也可能存在其它未明了的機(jī)制。

      綜上所述,在腹腔注射LPS導(dǎo)致內(nèi)毒素休克引起的器官損傷過程中,內(nèi)毒素致敏系統(tǒng)LBP/CD14發(fā)揮著重要的作用;正常腸淋巴液可降低內(nèi)毒素休克小鼠肺、心肌組織炎癥反應(yīng)可能通過下調(diào)內(nèi)毒素增敏系統(tǒng)LBP/CD14來實現(xiàn),表明以正常腸淋巴液作為藥物靶點(diǎn),對于防治內(nèi)毒素休克引起的器官損傷具有一定的參考價值及指導(dǎo)意義。

      1 Angus DC,van der Poll T.Severe sepsis and septic shock[J].N Engl J Med,2013,369(9):840-851.

      2 Maloney PJ.Sepsis and septic shock[J].Emerg Med Clin North Am,2013,31(3):583-600.

      3 Fang WH,Yao YM,Shi ZG,et al.Effect of recombinant bactericidal/permeability-increasing protein on endotoxin translocation and lipopolysaccharide-binding protein/CD14expression in rats after thermal injury[J].Crit Care Med,2001,29(7):1 452-1 459.

      4 楊麗娜,趙自剛,趙永泉,等.內(nèi)毒素移位在腸淋巴再灌注加劇SMAO休克大鼠多器官損傷中的作用[J].中國應(yīng)用生理學(xué)雜志,2012,28(1):74-78.

      5 董 寧,姚詠明,于 燕,等.內(nèi)毒素增敏系統(tǒng)與嚴(yán)重?zé)齻摱景Y的關(guān)系及其臨床意義[J].解放軍醫(yī)學(xué)雜志,2011,36(1):21-23.

      6 張利利,趙自剛,牛春雨,等.淋漿對內(nèi)毒素休克大鼠微循環(huán)障礙的干預(yù)作用[J].中國應(yīng)用生理學(xué)雜志,2011,27(1):75-80.

      7 張利利,張 靜,趙自剛,等.淋漿對內(nèi)毒素休克大鼠腎肝血流灌注量變化的干預(yù)作用[J].微循環(huán)學(xué)雜志,2009,19(4):97-98.

      8 趙自剛,牛春雨,張 靜,等.外源正常淋漿對內(nèi)毒素休克大鼠多器官損傷的作用與機(jī)制[J].微循環(huán)學(xué)雜志,2011,21(2):92.

      9 楊亦青,樊 貴,韓 敏,等.淋巴液對內(nèi)毒素休克大鼠的干預(yù)作用及其機(jī)制[J].中國急救醫(yī)學(xué),2004,24(9):661-664.

      10 Cheng AM,Moore EE,Masuno T,et al.Normal mesenteric lymph blunts the pulmonary inflammatory response to endotoxin[J].J Surg Res,2006,136(2):166-171.

      11 Li Y,Liu B,F(xiàn)ukudome EY,et al.Identification of citrullinated histone H3as a potential serum protein biomarker in a lethal model of lipopolysaccharide-induced shock[J].Surgery,2011,150(3):442-451.

      12 Liu C,Zhang GF,Song SW,et al.Effects of ketanserin on endotoxic shock and baroreflex function in rodents[J].J Infect Dis,2011,204(10):1 605-1 612.

      13 Madonna R,Jiang J,Geng YJ.Attenuated expression of gelsolin in association with induction of aquaporin-1and nitric oxide synthase in dysfunctional hearts of aging mice exposed to endotoxin[J].Int J Immunopathol Pharmacol,2012,25(4):911-922.

      14 Li S,Bao H,Han L,et al.Effects of propofol on early and late cytokines in lipopolysaccharide-induced septic shock in rats[J].J Biomed Res,2010,24(5):389-394.

      15 Pei H,Zhang Y,Wu H,et al.Relationship between iNOS expression and apoptosis in cerebral tissue,and the effect of sini injection in endotoxin shock rats[J].J Tradit Chin Med,2013,33(4):486-491.

      16 Noworyta-Soko?owska K,Górska A,Go?embiowska K.LPS-induced oxidative stress and inflammatory reaction in the rat striatum[J].Pharmacol Rep,2013,65(4):863-869.

      17 Park EJ,Jang HJ,Tsoyi K,et al.The heme oxygenase-1inducer THI-56negatively regulates iNOS expression and HMGB1 release in LPS-activated RAW 264.7cells and CLP-induced septic mice[J].PLoS One,2013,8(10):e76293.

      18 Zhao T,Li Y,Liu B,et al.Novel pharmacologic treatment attenuates septic shock and improves long-term survival[J].Surgery,2013,154(2):206-213.

      19 Heumann D,Adachi Y,Le Roy D,et al.Role of plasma,lipopolysaccharide-binding protein,and CD14in response of mouse peritoneal exudate macrophages to endotoxin[J].Infect Immun,2001,69(1):378-385.

      20 Moore KJ,Andersson LP,Ingalls RR,et al.Divergent response to LPS and bacteria in CD14-deficient murine macrophages[J].J Immunol,2000,165(8):4 272-4 280.

      猜你喜歡
      淋巴液勻漿內(nèi)毒素
      內(nèi)毒素對規(guī)?;i場仔豬腹瀉的危害
      消退素E1對內(nèi)毒素血癥心肌損傷的保護(hù)作用及機(jī)制研究
      大鼠腸淋巴液引流方法的改進(jìn)
      淋巴瘤患者PICC置管術(shù)后并發(fā)淋巴液漏護(hù)理體會
      勻漿法提取沙棗果總黃酮工藝研究
      植物研究(2018年4期)2018-07-24 00:52:26
      基于“肝脾理論”探討腸源性內(nèi)毒素血癥致繼發(fā)性肝損傷
      不同誘導(dǎo)方式制備的大鼠肝勻漿代謝酶活性及凍儲方式的比較
      失血性休克后腸淋巴液引流恢復(fù)小鼠腎組織ACE/ACE2平衡的作用
      前列安丸對瓊脂所致慢性前列腺炎模型大鼠前列腺勻漿中IgG和血清Zn的影響
      折流帶壓成形器的雙勻漿輥技術(shù)創(chuàng)新改進(jìn)
      湖南造紙(2013年1期)2013-07-10 01:06:40
      武陟县| 霍林郭勒市| 龙山县| 新乡县| 营口市| 新田县| 临洮县| 浦东新区| 崇左市| 钟山县| 东乡县| 宁陵县| 青浦区| 那坡县| 永州市| 天门市| 元谋县| 留坝县| 灵山县| 嘉祥县| 武平县| 五家渠市| 昆山市| 海林市| 晋中市| 丘北县| 泰和县| 鲜城| 四会市| 嫩江县| 东城区| 天峨县| 宜昌市| 阳春市| 石景山区| 方山县| 莆田市| 芜湖县| 昌图县| 十堰市| 沭阳县|