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      DNA烷基化損傷及其修復研究進展

      2014-11-27 05:00:27田永峰侯宏衛(wèi)張小濤劉勇胡清源王安
      中國煙草學報 2014年1期
      關鍵詞:加合物鳥嘌呤化劑

      田永峰,侯宏衛(wèi),張小濤,劉勇,胡清源,王安

      1 中國科學院安徽光學精密機 械研究所,合肥 230031;

      2 國家煙草質量監(jiān)督檢驗中心,鄭州高新區(qū)楓楊街2號 450001

      綜述

      DNA烷基化損傷及其修復研究進展

      田永峰1,2,侯宏衛(wèi)2,張小濤1,2,劉勇1,胡清源2,王安1

      1 中國科學院安徽光學精密機 械研究所,合肥 230031;

      2 國家煙草質量監(jiān)督檢驗中心,鄭州高新區(qū)楓楊街2號 450001

      DNA的烷基化損傷可導致復制過程中的錯配,被認為是引起基因突變及相關疾病的原因。烷基化DNA加合物是重要的DNA烷基化損傷產(chǎn)物。本文介紹了DNA烷基化損傷的修復機制以及產(chǎn)物;綜述了烷化類損傷試劑,及其作用于細胞產(chǎn)生烷基化DNA加合物的機理;討論了烷化類DNA加合 物與吸煙之間的關系;綜述了烷化類D NA加合物的檢測方法;展望了烷基化DNA加合物的研究方向及作為烷基化損傷標志物的研究前景。

      DNA烷基化損傷;烷基化DNA加合物;DNA烷基化損傷修復

      DNA是生命的遺傳物質。環(huán)境中存在的輻射,內源物質和外源物質這些都可以導致DNA的烷基化損傷(DNA中引入烷基的反應,如甲基、乙基等),如環(huán)境中的亞硝酸鹽(亞硝基脲,亞硝基胍,煙草中特有的亞硝胺),抗癌藥物鏈脲霉素、替莫唑胺等[1]。烷化劑與DNA堿基主要的反應位點有鳥嘌呤的N3、O6、N7位,腺嘌呤的N1、N3、N7位,胸腺嘧啶 /尿嘧啶的 O2、O4、N3位和胞嘧啶的O2、N3位,分別形成烷基化鳥嘌呤(N3-alkylguanines;N7-alkylguanines;O6-alkylguanines)、烷基化腺嘌呤(N1-alkyladenines;N3-alkyladenines;N7-alkyladenines)、烷基化胸腺嘧啶(O2-alkylthymines;O4-alkylthymines;N3-alkylthymines)和烷基化胞嘧啶(O2-alkylcytosines;N3-alkylcytosines)[2-4](圖1)。這些烷基化的堿基在DNA復制的過程中可使基因所攜帶的遺傳信息發(fā)生改變,這可能是引起相關疾病的原因。

      圖1 烷化類DNA加合物[5]Fig.1 Alkylation DNA adducts

      1 卷煙煙氣中重要的烷基化DNA加合物

      環(huán)境中存在大量的烷化劑,有代謝過程中產(chǎn)生的體內烷化劑,也有環(huán)境、食物、飲用水等中存在的外部烷化劑。烷化類試劑在生物體內活化同時產(chǎn)生烷基自由基,烷基自由基可以和DNA堿基的氧原子和氮原子發(fā)生反應生成烷基化DNA加合物。DNA的烷基化過程是由烷化劑、DNA/RNA的空間結構以及堿基在DNA/RNA的雙鏈、單鏈中的位置等因素共同作用決定的[6-9]。烷化劑的誘變機制分為單分子的SN1機制和雙分子作用的SN2機制,典型SN1機制烷化劑為N-甲基-N-亞硝基脲(N-methyl-N-nitrosourea, MNU),SN2機制的代表烷化劑為甲烷磺酸甲酯(methyl methanesulfonate,MMS)。SN1機制作用下的烷化類試劑在誘導DNA堿基發(fā)生烷基化的過程 中作用于堿基中的氮原子和氧原子,形成O-烷基化加合物(O-alkylations)和N-烷基化加合物(N-alkylations)。SN2作用機制的烷基化類試劑則作用于堿基上的氮原子,生成N-alkylations。堿基中氧原子位置形成的烷基化堿基既有基因毒性又有突變性。如O-alkylations具有很強的致突變性和基因毒性。而氮原子位置形成的N-alkylations則具有很強的細胞毒性,但是致突變性較低。如細胞發(fā)生烷化類的DNA損傷時,可檢測到N7-烷化鳥嘌呤(N7-alkylguanine),其本身是無毒害作用的,但是由于在DNA的序列中鳥嘌呤發(fā)生了烷基化,在脫烷基化修復的過程中,則產(chǎn)生了很多具有細胞毒性的位點[10-12]。

      卷煙煙氣中特有亞硝胺NNK等可以通過主流煙氣進入吸煙者體內。在細胞色素酶P450參與下,NNK會發(fā)生α位的羥基化,羥基化會導致NNK中的甲基亞硝基成為活性基團并釋放出烷基自由基。吸煙者接觸的烷基自由基包括:卷煙主流煙氣中的烷基自由基、NNK在生物體內代謝活化產(chǎn)生的烷基自由基、日常飲食及環(huán)境中包含的烷基自由基。這些烷基自由基可與DNA堿基發(fā)生反應生成烷化類的DNA加合物。卷煙煙氣中NNK與吸煙者體內的烷基化DNA加合物關系如圖2所示[13-15]。為評估煙氣中烷化類試劑暴露導致的烷化類損傷風險,烷化類的DNA加合物就成為了潛在的很好的生物標志物。此外,烷基化DNA加合物與烷化劑的關系也需要更進一步研究,特別是卷煙煙氣中存在的特有亞硝胺以復雜體系的形式與生物體接觸。對于復雜體系中的烷化劑對于細胞的作用目前還存在爭議,需深入研究。同時在烷基化DNA加合物參與的DNA復制中產(chǎn)生的無嘌呤位點,以及DNA糖基化酶修復烷基化DNA加合物后產(chǎn)生的無嘌呤位點的致突變性和細胞毒性也需要深入研究。

      圖2 卷煙煙氣中NNK誘導DNA烷基化Fig.2 NNK-induced DNA alkylation in the smoke

      2 吸煙導致的DNA烷基化損傷

      DNA烷基化損傷的主要產(chǎn)物是O6-甲基鳥嘌呤(O6-MeG),N3-甲基腺嘌呤(N3-MeA),N7-甲基鳥嘌呤(N7-MeG)。O6-MeG具有致突變性和細胞毒性,又是烷基化損傷中產(chǎn)生的主要加合物,因此得到廣泛研究[16]。N3-MeA的體內含量低于O6-MeG,每天大約會產(chǎn)生600個[17]。N3-MeA的致突變性較低,但是可以阻止DNA的復制,因此具有較強的細胞毒性[18]。鳥嘌呤的N7原子是所有的堿基中最容易發(fā)生化學反應的位點,極易與烷化劑發(fā)生反應生成N7-MeG[19]。當DNA暴露于環(huán)境中烷化劑時,SN1機制試劑有67%的幾率;SN2機制試劑有82%的幾率與鳥嘌呤的N7位發(fā)生反應生成N7-MeG[20]。人類DNA每天大約可以產(chǎn)生4000個N7-MeG[17]。N7-MeG沒有明顯的致突變性和細胞毒性。但是N7-MeG會影響DNA復制過程中的N7原子位置的氫鍵形成,從而在復制過程中造成了無嘌呤位點[21]。

      Loechler等在研究單鏈DNA M13mp8中的O6-MeG發(fā)現(xiàn)其主要的致突變性是在DNA復制過程中可導致G-A的突變[22]。在對M13mp7基因的研究中發(fā)現(xiàn),不同的修復機制作用下,O6-MeG可導致大腸桿菌發(fā)生10%-100%的突變[23]。Ziegel等利用NNK對人類原癌基因K-ras進行暴露,檢測到烷基化DNA加合物7-甲基鳥嘌呤(N7-MeG);O6-甲基脫氧鳥嘌呤(O6-MedG);O6-吡啶基脫氧鳥嘌呤(O6-POBdG)。并發(fā)現(xiàn)在K-ras基因鳥嘌呤的G3-G8位點上均可以發(fā)生烷基化,G5位點發(fā)生烷基化的概率要遠遠高于理論值。為研究DNA烷化類損傷與癌癥的關系提供支持[24]。Cloutier 等利用煙氣中特有亞硝胺4-(甲基亞硝胺基)-1-(3-吡啶)-1-丁酮(NNK)的前體物質4-(乙?;u基甲酯)-1-(3-吡啶)-1-丁酮(NNKOAc)對大腸桿菌進行暴露,檢測到五種烷基化鳥嘌呤,但未檢測到3-烷化腺嘌呤[25]。Hu等對吸煙者和非吸煙者體內白細胞中的N3-MeA,N7-MeG,8-羥基脫氧鳥苷,5-甲基胞嘧啶等標志物進行檢測分析,發(fā)現(xiàn)N3-MeA和吸煙的生物標志物可替寧具有較強相關(r= 0.49),而對于N7-MeG的研究中卻未發(fā)現(xiàn)與可替寧有強相關(r= 0.16)[26]。Mitchell 等利用亞硝基胍對人類TK6細胞進行暴露,對提取的DNA進行檢測,發(fā)現(xiàn)含有N3-MeA,N7-MeG[11]。Thorne等將培養(yǎng)的NCI-H292人肺癌細胞暴露于主流煙氣,利用彗星實驗檢測到大量的細胞的損傷和氧化損傷的DNA,但是未檢測到烷化類損傷的DNA[27]。

      Kopplin 等利用同位素內標結合高效液相色譜法(HPLC-UV),研究了5名吸煙者和5名非吸煙者尿液中3-甲基腺嘌呤(N3-MeA)和3-乙基腺嘌呤(N3-EtA),發(fā)現(xiàn)吸煙可導致尿液中的N3-MeA升高(吸煙者:13.6-14.8 μg/24 h,非吸煙者:4.7-6.2μg/24 h,P< 0.01);尿液中的N3-EtA吸煙者比非吸煙者高5倍(吸煙者:119.3-138.5 ng/24 h,非吸煙者13.7-32.8 ng/24 h)。通過進一步考察吸煙者的飲食,發(fā)現(xiàn)飲食對于志愿者體內N3-MeA影響較大,結論認為吸煙對體內N3-EtA含量有影響。但是對于中國男性吸煙者的調查中卻沒有發(fā)現(xiàn)這個規(guī)律[28]。英國國際癌癥研究中心的Prevost 等對4名吸煙者尿液中N3-MeA、N 3-EtA、N3-羥乙基腺嘌呤(N3-HOEtA)進行了研究,發(fā)現(xiàn)尿液中的N3-EtA釋放量與抽吸卷煙數(shù)量和尿液中的可替寧含量高度相關(抽吸卷煙數(shù)量:r= 0.86,P< 0.01; 尿液中的可替寧含量:r=0.60,P< 0.01);而輕度吸煙者(<17 支/天)尿液中的N3-MeA區(qū)別不大,但中等吸煙者(10-32 支/天)尿液中的N3-MeA吸煙期間比不吸煙期間顯著高,然而對于飲食控制人群,即使是低水平(< 11 支/天)的抽吸卷煙數(shù)量尿液中的3-烷化腺嘌呤也是隨著卷煙數(shù)量的增加而增加的。得出結論吸煙可以導致體內N3-MeA和N3-EtA升高。但是未發(fā)現(xiàn)對N3-HOEtA有影響[29]。2006年,菲利浦莫里斯(Philip Morris Companies Inc.)美國研究中心,F(xiàn)eng 等利用LC-MSMS法對吸煙者尿液中1-羥基芘,N3-MeA,N3-EtA,8-羥基脫氧鳥苷等進行檢測。結論認為N3-MeA只是在傳統(tǒng)卷煙和不吸煙者之間有差別,而低焦卷煙中并未發(fā)現(xiàn)差別,N3-EtA的檢測結果則出現(xiàn)了矛盾性,吸煙后尿液中的N3-EtA比吸煙前還要低[30],其可能的原因是N3-EtA的生物半減期較短,導致了吸煙者體內的N3-EeA水平較低。2011年,Hu等利用LC-MSMS法對成年(40歲)吸煙者尿液中N3-MeA,N7-MeG進行檢測。結果發(fā)現(xiàn)N3-MeA/肌酐比值與可替寧/肌酐比值存在相關性,相關系數(shù)0.69,而N7-MeG相關性不明顯,由此認為N3-MeA是與吸煙相關的標志物[31]。

      可見,烷化類DNA加合物是煙氣暴露引起DNA烷基化損傷的重要生物標志物,但是體內的烷基化DNA加合物水平同樣受飲食、環(huán)境接觸等影響,所以有必要對烷基化腺嘌呤進行深入研究,系統(tǒng)建立評估生物體內烷化類DNA加合物的方法,用來評估環(huán)境中烷化劑暴露,尤其是煙氣中的烷化劑對吸煙者體內烷化類腺嘌呤種類及含量水平產(chǎn)生的影響。

      3 DNA的烷基化損傷修復機制

      烷基化DNA加合物在3-甲基DNA烷基糖基化酶(AAG);3-甲基腺嘌呤DNA糖基化酶Ι(TAG);N-甲基嘌呤DNA糖基化酶(MPG)等的作用下,通過堿基切除修復(BER)機制和核酸切除修復機制(NER)進行修復,通過機體自身的脫堿基作用或者在糖基酶的作用下通過堿基切除修復機制從核苷酸鏈上切除并隨尿液排出體外[32-34]。細胞內每天會發(fā)生20000個DNA片段的損傷,這些損傷都需要靠體內的修復機制進行修復。對于烷化類DNA加合物修復機制的研究表明,體內對于烷化類DNA加合物的低修復水平可導致患癌癥的風險增加[35]。

      因此檢測吸煙人群尿液中烷基化DNA加合物作為研究卷煙煙氣暴露導致的吸煙者體內烷化類損傷的非創(chuàng)傷性目標物,可用來評估體內DNA受到的烷基化損傷程度及可能的癌癥風險。

      4 烷基化腺嘌呤的檢測技術

      尿液中3-alkAde檢測方法通常采用GC-MS法,如Prevost等人利用GC-MS法檢測了尿液中3-烷化腺嘌呤[36]和吸煙者體內N3-MeA、N3-EtA[29]。該方法具有分離效率高、分析速度快等特點,但前處理繁瑣,需要化學衍生化,靈敏度低,不能對3-烷化腺嘌呤直接定量分析等缺點。檢測前需要對烷基化DNA加合物進行化學衍生化,增加了分析結果的不準確性。衍生化是利用特定的衍生化試劑與化合物之間發(fā)生化學反應使反應后的化合物與原化合物結構類似[37],目的是要把難于分析的物質轉化為與其化學結構相似易于分析的物質[38-40],由于溶解度、沸點、熔點、聚集態(tài)或化學成分與原化合物不同[41],衍生化過程中帶來的樣品損失難以準確定量,因此應用此法同時分析兩種或以上烷基化DNA加合物并不理想。

      32P標記法—免疫親和性層析色譜搭配32P后標記技術(immunoaf finity chromatography/32P-postlabelling technique,IC-32P)是現(xiàn)今檢測DNA加合物最為靈敏的方法,可以檢測到1010分子中含有的一個DNA加合物,而且檢測時只需要30-40μg的DNA樣品。此方法是利用放射性同位素32P標記的三磷酸腺苷(ATP)與免疫親和層析柱(immunoaf finity column)純化后的DNA水解產(chǎn)物結合,產(chǎn)生32P標記的DNA加合物。32P標記的DNA加和物再經(jīng)過聚乙烯亞胺纖維膜(polyethyleneimine cellulose)純化,通過計算32P放射強度,可以得到DNA加合產(chǎn)物的含量[42-46]。

      1982年,Gupta等[47]首次應用此法檢測DNA中的多環(huán)芳烴,芳基胺和無放射性芳基胺,此法在當時用于檢測大量的DNA加合物中的少量致癌物,并且這些致癌物既無放射性也沒有特異性抗體。此后IC-32P就成為研究者研究有機體DNA損傷,檢測致癌物的最靈敏方法。其檢測的靈敏度可達到從109的數(shù)量級的分子中檢測0-27個標志物[48]。1999年,Plan 等利用32P標記法,N7-MeG,1-羥丙基腺嘌呤等標志物,檢出限達到0.3mol/109mol,檢測所需樣品10μg DNA[49]。

      32P標記法雖然十分靈敏,且儀器簡單,但步驟繁瑣,在免疫親和層析柱富集純化樣品的過程中會有微量的DNA樣品的損失,并且缺乏適當?shù)膬葮藴饰飦頊蚀_定量。采用的不是標準化的儀器分析,在分析大量的生物樣品的時候,人工操作對檢測結果的影響不能忽視,并且在使用不同親和性小柱的回收率會影響方法回收率。

      為了提高靈敏度和專一性,Tavazzi等[50]采用HPLC-UV檢測尿液中的N3-MeA,檢出限為0.05μM。隨著儀器的發(fā)展,由于液相色譜-串聯(lián)質譜法(LC-MS/MS)高選擇性與靈敏度,前處理過程簡單,可同時檢測多種目標物等優(yōu)點在烷基化DNA加合物的檢測分析過程中得到應用。LC-MS/MS用于同時測定尿液中的N3-MeA和N3-EtA,方法的檢出限為 2.0 pg/mL,但所需樣品體積大(50mL)[30]; Hu等[26]采用柱轉換方法伴隨在線固相萃取LC-MS/MS方法對尿液中的N3-MeA進行了測定,減少了樣品的用量,進樣量只需20 μL尿液,運行時間12 min,檢出限為0.035 ng/mL。

      綜上所述,建立LC-MS/MS法同時檢測多種烷基化DNA加合物的方法是當前研究烷基化DNA加合物的難點。由于烷基化DNA加合物種類繁多,體液基質復雜,烷基化DNA加合物含量低,生物半減期短,且具有較強的親水性。因此目前商品化的C18柱對烷基化DNA加合物的分析并不是很適合。選擇合適的極性色譜柱,配合分析靈敏度高且快速準確定量的三重四級桿質譜系統(tǒng),建立同時分析多種烷基化DNA加合物的方法需要進行深入研究。

      5 展望

      烷基化DNA加合物在體內的含量很低,所以研究準確定量烷基化DNA加合物的檢測方法將是今后發(fā)展的重要方向。一方面,隨著近年來串聯(lián)質譜與高效液相色譜技術聯(lián)用技術的突破,利用LC-MS/MS技術同時檢測多個烷基化DNA加合物的研究必將成為研究熱點。另一方面,外源物質導致體內烷基化DNA加合物的產(chǎn)生的關聯(lián)性以及產(chǎn)生烷基化DNA加合物的種類還需要深入地研究,目前外源物質導致的DNA烷基化損傷機理的研究不夠全面,因此找到可以很好的評價DNA烷基化損傷程度的烷基化DNA標志物具有重要意義。目前的研究由于樣本量小,結論存在分歧。另外,由于烷基化DNA加合物在尿液中的含量低,并且受到環(huán)境飲食等因素干擾,目前亟需建立一種簡便、富集效率高、選擇性好的可以同時測定尿液中烷化類加合物的方法,同時需要進行細胞,體液等全面研究,從而找出準確評價DNA烷基化損傷程度的DNA加合物。

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      Research advances in DNA alkylation damage and repair

      TIAN Yongfeng1,2,HOU Hongwei2,ZHANG Xiaotao1,2,LIU Yong1,HU Qingyuan2,WANG An1
      1 Anhui Institutes of Optics and Fine Mechanics,Chinese Academy of Science,Hefei 230031,China;
      2 China National Tobacco Quality Supervision and Test Center,Zhengzhou 450001,China

      The fact that DNA alkylation damage might lead to mismatch in replication was considered as cause of g ene mutation and other relevant disease.The variety of DNA alkylation damage,repair mec hanisms and its products,the generative mechanism in vivo and analytical method of alkylation DNA adducts were reviewed.Current analytical methods of alkylation DNA adducts include Immunoaf finity Chromatography/32P-postlabelling technique (IC-32P),Gas Chromatogeraph-Mass Spectrometer (GC-MS) and Liquid Chromatography-tandem Mass Spectrometer (LC-MS/MS).IC-32P had excellent performance on sensibility,but it took many complicated steps in determining alkylation DNA adducts.The sample usually cost more in the method of GC-MS during pre-handling process as derivatization is needed; LC-MS/MS method offered many practical advantages in pre-handling such as stability,selectivity and sensibility,which can enhance the ef ficiency of sample analysis.As biomarkers of DNA alkylation damage,alkylation DNA adducts played a signi ficant role in risk evaluation of alkylation reagents.

      DNA alkylation damage; DNA adducts; repair of DNA alkylation damage

      10.3969/j.issn.1004-5708.2014.01.018

      TS416

      A

      1004-5708(2014)01-0096-07

      田永峰(1982—),博士研究生,研究方向為煙草化學和生物標志物,Email:yongfengtian@126.com

      胡清源,研究員,研究方向為煙草化學和生物標志物,Email:huqy@ztri.com.cn王安,研究員,研究方向為環(huán)境監(jiān)測光纖傳感技術,Email:wangan@aiofm.ac.cn

      2012-07-03

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