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      基于16S rRNA基因克隆文庫技術(shù)分析廣西富鐘水牛瘤胃產(chǎn)甲烷菌組成及多樣性

      2014-12-21 05:32:58楊承劍韋升菊李舒露梁賢威鄒彩霞楊炳壯李麗莉
      動物營養(yǎng)學(xué)報 2014年12期
      關(guān)鍵詞:產(chǎn)甲烷菌水牛文庫

      楊承劍 梁 辛 韋升菊 李舒露 梁賢威鄒彩霞 楊炳壯 李麗莉

      (中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院廣西水牛研究所,農(nóng)業(yè)部(廣西)水牛遺傳繁育重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,南寧 530001)

      廣西富鐘水牛是我國地方水牛的特色品種之一,2006年被列入《國家級畜禽遺傳資源保護(hù)名錄》[1]。富鐘水牛體型較大,具有繁殖力高、成熟早、肉質(zhì)好、性情溫順、耐粗飼等優(yōu)良特性[2-3],適合廣西壯族自治區(qū)東北丘陵地帶以低洼水田及黏性土壤旱地的耕作環(huán)境條件生長。然而,據(jù)2009年統(tǒng)計數(shù)據(jù)顯示,富鐘水牛的存欄量僅12.1萬頭[2]。深入研究富鐘水牛的消化生理以及營養(yǎng)特性有助于其優(yōu)良種質(zhì)資源的保護(hù)。

      反芻動物主要依賴瘤胃微生物將結(jié)構(gòu)性碳水化合物降解為揮發(fā)性脂肪酸為機(jī)體提供能量。不同種類反芻動物其瘤胃微生物結(jié)構(gòu)組成可能存在一定差異,有研究表明不同種類的山羊瘤胃微生物區(qū)系不同[4]。產(chǎn)甲烷菌,通常也稱為產(chǎn)甲烷古菌,廣泛存在于反芻動物胃腸道中[5]。在飼料消化利用過程中,產(chǎn)甲烷菌能夠利用各種不同底物,如氫、甲酸、乙酸、甲醇等,還原二氧化碳進(jìn)而生成甲烷[6]。反芻動物的甲烷生成意味著大量能量損失[7]。目前已有研究顯示,多種動物體內(nèi)均可分離出產(chǎn)甲烷菌[8-9]。部分研究也利用非培養(yǎng)的方式,如16S rRNA基因克隆文庫分析等方法研究了綿羊[10]、婆羅門雜交牛[11]、晉南牛[12]瘤胃內(nèi)產(chǎn)甲烷菌的組成及多樣性。更有研究表明,不同肥胖程度的人[13]或者不同品種的豬[14]腸道中的產(chǎn)甲烷菌結(jié)構(gòu)也存在差異。這些研究表明,胃腸道中產(chǎn)甲烷菌多樣性可能與物種特異性或與特定功能緊密相關(guān)。作為廣西壯族自治區(qū)特色遺傳資源品種之一,富鐘水牛瘤胃微生物可能具有其獨(dú)特的微生物區(qū)系,但目前尚未見關(guān)于富鐘水牛瘤胃微生物方面的研究。因此,本研究利用16S rRNA基因克隆文庫技術(shù)分析富鐘水牛瘤胃產(chǎn)甲烷菌組成及多樣性,為進(jìn)一步研究富鐘水牛瘤胃微生物生態(tài)系統(tǒng)功能以及品種資源保護(hù)提供理論依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 試驗(yàn)設(shè)計

      選取3頭體況基本一致的5歲左右的健康成年雌性富鐘泌乳水牛,飼養(yǎng)于廣西壯族自治區(qū)水牛研究所水牛場(國家級重點(diǎn)種畜場)。自由采食粗料,粗料為玉米青貯、木薯渣、啤酒渣、新鮮象草;補(bǔ)充適量[5.0 kg/(頭·d)]精料。泌乳水牛精料組成及營養(yǎng)水平見表1。每天08:00和16:00定時飼喂。自由飲水。

      表1 泌乳水牛精料組成及營養(yǎng)水平(風(fēng)干基礎(chǔ))Table 1 Composition and nutrient levels of the concentrate for lactating buffalo(air-dry basis)%

      試驗(yàn)期30 d,第30天晨飼前通過胃管式瘤胃液采樣器采集瘤胃內(nèi)容物250 mL,裝入干凈充滿二氧化碳厭氧瓶中,置于碎冰塊中冷藏迅速帶回實(shí)驗(yàn)室,保存于-80℃冰箱備用。

      1.2 總 DNA 提取

      從充分混勻后的250 mL瘤胃樣品中用寬口吸頭吸取1.5 mL包括瘤胃固、液2相的瘤胃內(nèi)容物用于總DNA的提取,12 000×g離心5 min,去除上清液,沉淀備用。采用文獻(xiàn)[15]所描述的機(jī)械破壁及總DNA提取試劑盒相結(jié)合的方法提取總DNA。

      1.3 PCR擴(kuò)增及克隆文庫構(gòu)建

      產(chǎn)甲烷菌特異性引物Met86F(5'-GCTCAGTAACACGTGG-3')/Met1340R(5'-CGGTGTGTGCAAGGAG-3')[10]擴(kuò)增 16S rRNA 基因序列。反應(yīng)體系50μL。反應(yīng)條件如下:94℃,3 min。94℃,30 s;58℃,30 s;72℃,90 s(40個循環(huán))。72℃,10 min。利用瓊脂糖凝膠純化回收試劑盒(美國Promega)純化PCR產(chǎn)物。將來自3頭動物的等體積PCR產(chǎn)物混合后,按照廠家說明書連接到載體 pMD19-T(日本TaKaRa)上進(jìn)行克隆,經(jīng)藍(lán)白斑篩選隨機(jī)挑取陽性克隆,用引物M13-47(5'-CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGAC-3')和RV-M(5'-GAGCGGATAACAATTTCACACAGG-3')對陽性克隆進(jìn)行驗(yàn)證,確認(rèn)PCR片段連接到載體。然后將所有陽性克隆的送檢進(jìn)行測序(上海生工科技有限公司)。

      1.4 16S r RNA基因序列分析

      用DECIPHER軟件去除嵌合體序列[16]。使用Ribosomal Database Project(RDP)Release 11中的分類(classifier)程序?qū)λ行蛄羞M(jìn)行分類分析[17]。用 Mothur 軟 件 劃 分 分 類 操 作 單 元(OTU),將相似性>97%的序列視為同一個OTU[18]。選取每個 OTU代表序列,利用 Blast程序在GenBank中搜索相似性最高序列。用Clustal X Version 1.83軟件進(jìn)行多重比對,通過Molecular Evolutionary Genetics Analysis(MEGA)4.0 軟件計算出序列的系統(tǒng)進(jìn)化距離,采用Neighbor-Joining方法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹,1 000次隨機(jī)抽樣,計算自舉值(bootstrap)以評估系統(tǒng)發(fā)育樹的置信度。本研究所獲得的序列在DDBJ數(shù)據(jù)庫里的登錄號為:AB905820-AB905919。

      2 結(jié) 果

      2.1 16S r RNA基因克隆文庫分析

      從建立的富鐘水牛瘤胃產(chǎn)甲烷菌16S rRNA基因克隆文庫中,隨機(jī)挑選100個陽性克隆進(jìn)行測序,其中5個可能為嵌合體序列。剩余的95個序列經(jīng)Mothur軟件分析,只有93個獨(dú)特序列可用于下一步分析。分類分析結(jié)果表明,93個序列均屬于古細(xì)菌域(Archaea)序列,可分為甲烷桿菌目(Methanobacteriales)、熱原體目(Thermoplasmatales)、除硫球菌目(Desulfurococcales)3個目,其中Methanobacteriales又可分為甲烷短桿菌屬(Methanobrevibacter)、甲烷桿菌屬(Methanobacterium)、甲烷球形菌屬(Methanosphaera)、未培養(yǎng)的甲烷桿菌(unclassified_Methanobacteriaceae)4個屬。以97%序列相似性為閾值,用Mothur軟件對剩余的93個序列進(jìn)行分析,93個序列可分為39個OTU(表2)。Mothur軟件計算表明克隆文庫庫容值為78.49%,滿足分析要求。

      經(jīng)Blast與GenBank中序列比對,結(jié)果表明,93個序列中60個序列(15個OTU)與已培養(yǎng)細(xì)菌16S rRNA序列相似性≥97%,占總序列的64.5%。這些已培養(yǎng)細(xì)菌包括:Methanobrevibacter millerae(12 個 OTU,占總序列 55.9%)、Methanobrevibacter smithii(1 個 OTU,占總序列的 1.1%)、Methanobrevibacter ruminantium(1個 OTU,占總序列的5.4%)、Methanobrevibacter boviskoreani(1 個OTU,占總序列的 2.1%)。32 個序列(23個OTU)與已培養(yǎng)菌16S rRNA序列相似性處于90%~(<97%),包括 Methanobrevibacter millerae(5 個 OTU,占總序列的 8.6%)、Methanobrevibacter smithii(9 個 OTU,占總序列的 11.8%)、Methanobrevibacter ruminantium(2個OTU,占總序列的2.1%)、Methanobrevibacter gottschalkii(1 個 OTU,占總序列的 2.1%)、Methanobrevibacter olleyae(2個 OTU,占總序列的 3.2%)、Methanobrevibacter boviskoreani(1 個 OTU,占總序列的 1.1%)、Methanosphaera stadtmanae(2個 OTU,占總序列的4.3%)、Methanobacterium alcaliphilum(1 個 OTU,占總序列的 1.1%)。僅有 1個序列與 Methanomassiliicoccus luminyensis相似性<90%(1個OTU,占總序列的 1.1%)。

      表2 富鐘水牛瘤胃產(chǎn)甲烷菌16S r RNA基因序列分析Table 2 Sequence analysis of methanogens 16S rRNA gene from the rumen of Fuzhong buffaloes

      續(xù)表2

      2.2 16S r RNA基因系統(tǒng)進(jìn)化分析

      以 Thermococcus aggregans(X99556.1)和 P.fumartus(X99555.1)作為外群(outgroup),將 39個OTU代表序列與11個最相似已知序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖1)。進(jìn)化樹分析結(jié)果表明,與已知序列Methanomassiliicoccus luminyensis strain B10相似性為89%的代表序列D40在進(jìn)化樹中明顯區(qū)別于其他分支,屬于Thermoplasmatales,其余序列都屬于 Methanobacteriales。Methanobacteriales內(nèi)又分為2個大的分支,其中序列 29、D103、D86、D8、D91、D6、12、15-2、14、21、D35、5、A1、12-3、15、5-2、7共17個代表序列聚集在同一個分支上,在系統(tǒng)發(fā)育距離上與Methanobacteriales中任何已知相似序列都相隔較遠(yuǎn),因此它們可能代表Methanobacteriales中新的屬或種。Methanobacteriales中的其余序列都處于一個分支上,以Methanobrevibacter序列為優(yōu)勢序列,Methanobrevibacter序列之間的遺傳距離較遠(yuǎn),如代表序列11、D66、12-2、1、D39、D64、D101、D33、D38、9,這意味著它們可能是 Methanobrevibacter中新種;僅有代表序列D53在系統(tǒng)發(fā)育樹中與Methanosphaera stadtmanae在進(jìn)化樹中距離較近,屬于Methanosphaera。

      圖1 富鐘水牛瘤胃產(chǎn)甲烷菌16S r RNA基因序列系統(tǒng)發(fā)育分析Fig.1 Phylogenetic analysis of 16S rRNA gene sequences of methanogens from the rumen of Fuzhong buffaloes

      3 討 論

      甲烷是反芻動物消化過程中所產(chǎn)生的副產(chǎn)物,它的釋放導(dǎo)致能量損失以及溫室氣體的增加。因而,深入了解水牛瘤胃產(chǎn)甲烷菌的菌群結(jié)構(gòu)及其多樣性有助于了解水牛瘤胃甲烷生成的微生物學(xué)機(jī)理,能夠?yàn)閷ふ液线m的水牛瘤胃甲烷調(diào)控措施提供理論依據(jù)。目前已有許多關(guān)于綿羊[19-20]、黃牛[11,21]以及水牛[22-24]瘤胃微生物菌群結(jié)構(gòu)組成的報道,其中水牛方面的研究以印度水牛為主。關(guān)于我國水牛瘤胃微生物菌群結(jié)構(gòu)組成,尤其是產(chǎn)甲烷菌多樣性方面的研究仍尚少。本研究利用16S rRNA基因克隆文庫技術(shù)分析富鐘水牛瘤胃中的產(chǎn)甲烷菌組成及多樣性,為進(jìn)一步研究富鐘水牛瘤胃微生物生態(tài)系統(tǒng)功能以及品種資源保護(hù)提供理論依據(jù)。

      品種、飼糧以及地理位置之間的復(fù)雜互作對于水牛瘤胃微生物區(qū)系具有明顯作用。如印度的2項研究表明,摩拉水牛瘤胃內(nèi)的產(chǎn)甲烷菌94.4%~ 97.1% 都 屬 于 Methanomicrobium mobile[22,25]。而巴西有研究報道,不考慮飼糧的差異,地中海水牛瘤胃內(nèi) 91.5%的產(chǎn)甲烷菌屬于Methanobrevibacter[26]。本研究通過 16S rRNA 基因克隆文庫分析表明,富鐘水牛瘤胃內(nèi)產(chǎn)甲烷菌以Methanobacteriales中 Methanobrevibacter為主,這與國內(nèi)外許多在其他反芻動物上的研究結(jié)果相一致[19,27]。委內(nèi)瑞拉的綿羊以及澳大利亞袋鼠胃腸中98%以上的序列與Methanobrevibacter gottschalkii 相 似[19,28]。 在 牦 牛 中,與 Methanobrevibacter strain NT7高度相似的瘤胃內(nèi)的許多產(chǎn)甲烷菌目前仍難以人工分離[29]。本研究的系統(tǒng)進(jìn)化樹分析結(jié)果也表明,富鐘水牛瘤胃內(nèi)存在許多未知的Methanobrevibacter。關(guān)于不同品種水牛瘤胃內(nèi)產(chǎn)甲烷菌區(qū)系存在顯著差異的機(jī)理還有待深入研究。Methanobrevibacter能夠利用二氧化碳和氫或者甲酸生成甲烷,但是不利用甲醇和甲胺生成甲烷[30]。研究表明,從黃牛瘤胃中分離到的Methanobrevibacter millerae能夠利用甲酸進(jìn)行生長繁殖[31]。Methanobrevibacter smithii PS 可利用二氧化碳和氫或者甲酸生成甲烷[32]。有研究表明,反芻動物體內(nèi)的Methanobrevibacter smithii可影響飼糧中的多糖成分的利用效率[11]。Facey 等[33]發(fā)現(xiàn)Methanosphaera stadtmanae(一種甲醇利用菌)是猩猩胃腸道中的優(yōu)勢產(chǎn)甲烷菌。本研究也發(fā)現(xiàn),在富鐘水牛瘤胃內(nèi)存在序列與Methanosphaera stadtmanae高度相似的產(chǎn)甲烷菌,但是只占總序列數(shù)的4.3%。低濃度的Methanosphaera stadtmanae可能是由于Methanobrevibacter占優(yōu)勢或者由于飼料發(fā)酵過程中產(chǎn)生的少量甲醇的緣故,這需要進(jìn)一步研究。

      St-Pierre 等[34]提議將與 Methanobrevibacter相似的產(chǎn)甲烷菌序列分為2大類:與Methanobrevibacter smithii(S)、Methanobrevibacter gottschalkii(G)、Methanobrevibacter millerae(M)和 Methanobrevibacter thaurei(T)聚集在一塊,統(tǒng)稱為SGMT簇;與 Methanobrevibacter ruminantium(R)及Methanobrevibacter olleyae(O)聚集在一起的稱為RO簇。已有研究表明,當(dāng)動物種類不同或飼糧條件不同時,SGMT和RO簇序列之間的分布規(guī)律存在差異[34]。研究表明,在飼喂同等飼糧條件下,荷斯坦奶牛瘤胃中的SGMT簇序列的比例要高于娟姍奶牛[21]。在本研究中,SGMT簇序列和RO簇序列所占總序列數(shù)比例分別為79.6%、10.8%,即在富鐘水牛瘤胃中SGMT簇序列占大多數(shù)。關(guān)于SGMT簇和RO簇序列在不同動物種類及飼養(yǎng)條件下的分布特點(diǎn)是否可以用于估測瘤胃甲烷生成,進(jìn)而應(yīng)用于調(diào)控瘤胃甲烷生成,還有待進(jìn)一步研究。

      4 結(jié)論

      富鐘水牛瘤胃產(chǎn)甲烷菌以Methanobacteriales為優(yōu)勢菌群,其中有許多未知的產(chǎn)甲烷菌需進(jìn)一步分離培養(yǎng)并對其功能進(jìn)行分析。

      [1] 中華人民共和國農(nóng)業(yè)部.國家級畜禽遺傳資源保護(hù)名錄[J].湖北畜牧獸醫(yī),2007(1):7.

      [2] 蘇家聯(lián).廣西地方畜禽遺傳資源現(xiàn)狀及保護(hù)對策[J].中國畜牧雜志,2009,45(24):13-17.

      [3] 陳英姿,何衍琦.富鐘水牛[J].廣西農(nóng)學(xué)報,2008,23(2):58-61.

      [4] SHI PJ,MENG K,ZHOU Z G,et al.The host species affects the microbial community in the goat rumen[J].Letters in Applied Microbiology,2008,46(1):132-135.

      [5] HACKSTEIN J H P,VAN ALEN T A.Fecal methanogens and vertebrate evolution[J].Evolution,1996,50(2):559-572.

      [6] SAMUEL B S,GORDON JI.A humanized gnotobiotic mouse model of host-archaeal-bacterial mutualism[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2006,103(26):10011-10016.

      [7] JOHNSON K A,JOHNSON D E.Methane emissions from cattle[J].Journal of Animal Science,1995,73(8):2483-2492.

      [8] JARVIS G N,STR?MPL C,BURGESS D M,et al.I-solation and identification of ruminal methanogens from grazing cattle[J].Current Microbiology,2000,40(5):327-332.

      [9] MILLER T L,WOLIN M J,KUSEL E A.Isolation and characterization of methanogens from animal feces[J].Systematic and Applied Microbiology,1986,8(3):234-238.

      [10] WRIGHT A D G,WILLIAMSA J,WINDER B,et al.Molecular diversity of rumen methanogens from sheep in Western Australia[J].Applied and Environmental Microbiology,2004,70(3):1263-1270.

      [11] DENMAN S E,TOMKINS N W,MCSWEENEY C S.Quantitation and diversity analysis of ruminal methanogenic populations in response to the antimethanogenic compound bromochloromethane[J].FEMS Microbiology Ecology,2007,62(3):313-322.

      [12] PEI C X,MAO SY,CHENG Y F,et al.Diversity,abundance and novel 16SrRNA gene sequences of methanogens in rumen liquid,solid and epithelium fractions of Jinnan cattle[J].Animal,2010,4(1):20-29.

      [13] DIBAISE J K,ZHANG H,CROWELL M D,et al.Gut microbiota and its possible relationship with obesity[J].Mayo Clinic Proceedings,2008,83(4):460-469.

      [14] LUO Y H,SU Y,WRIGHT A D G,et al.Lean breed Landrace pigs harbor fecal methanogens at higher diversity and density than obese breed Erhualian pigs[J].Archaea,2012,2012:605289.

      [15] DENMAN S E,MCSWEENEY C S.Development of a real-time PCRassay for monitoring anaerobic fungal and cellulolytic bacterial populations within the rumen[J].FEMSMicrobiology Ecology,2006,58(3):572-582.

      [16] WRIGHT E S,YILMAZ L S,NOGUERA D R.Decipher,a search-based approach to chimera identification for 16S rRNA sequences[J].Applied and Environmental Microbiology,2012,78(3):717-725.

      [17] COLE JR,WANG Q,CARDENASE,et al.The ribosomal database project:improved alignments and new tools for rRNA analysis[J].Nucleic Acids Research,2009,37:D141-D145.

      [18] SCHLOSS P D,WESTCOTT SL,RYABIN T,et al.Introducing mothur:open-source,platform-independent,community-supported software for describing and comparing microbial communities[J].Applied and Environmental Microbiology,2009,75(23):7537-7541.

      [19] WRIGHT A D G,MA X L,OBISPO N E.Methanobrevibacter phylotypes are the dominant methanogens in sheep from Venezuela[J].Microbial Ecology,2008,56(2):390-394.

      [20] WRIGHT A D G,TOOVEY A F,PIMM C L.Molecular identification of methanogenic archaea from sheep in Queensland,Australia reveal more uncultured novel archaea[J].Anaerobe,2006,12(3):134-139.

      [21] KING E E,SMITH R P,ST-PIERRE B,et al.Differences in the rumen methanogen populations of lactating Jersey and Holstein dairy cows under the same diet regimen[J].Applied and Environmental Microbiology,2011,77(16):5682-5687.

      [22] CHAUDHARY P P,SIROHI S K.Dominance of Methanomicrobium phylotype in methanogen population present in Murrah buffaloes(Bubalus bubalis)[J].Letters in Applied Microbiology,2009,49(2):274-277.

      [23] TAN H Y,SIEO C C,LEE C M,et al.Diversity of bovine rumen methanogens in vitro in the presence of condensed tannins,as determined by sequence analysis of 16SrRNA gene library[J].The Journal of Microbiology,2011,49(3):492-498.

      [24] TATSUOKA N,MOHAMMED N,MITSUMORI M,et al.Phylogenetic analysis of methyl coenzyme-M reductase detected from the bovine rumen[J].Letters in Applied Microbiology,2004,39(3):257-260.

      [25] SINGH K M,TRIPATHI A K,PANDYA P R,et al.Methanogen diversity in the rumen of Indian Surti buffalo(Bubalus bubalis),assessed by 16SrDNA analysis[J].Research in Veterinary Science,2012,92(3):451-455.

      [26] FRANZOLIN R,ST-PIERRE B,NORTHWOOD K,et al.Analysis of rumen methanogen diversity in water buffaloes(Bubalus bubalis)under three different diets[J/OL].Microbial Ecology,2012,64(1):131-139.doi:10.1007/s00248-012-0007-0.

      [27] HOOK SE,WRIGHT A D G,MCBRIDE B W.Methanogens:methane producers of the rumen and mitigation strategies[J/OL].Archaea,2010,2010:945785.doi:10.1155/2010/945785.

      [28] EVANS P N,HINDS L A,SLY L I,et al.Community composition and density of methanogens in the foregut of the Tammar wallaby(Macropus eugenii)[J].Applied and Environmental Microbiology,2009,75(8):2598-2602.

      [29] JANSSEN P H,KIRS M.Structure of the archaeal community of the rumen[J].Applied and Environmental Microbiology,2008,74(12):3619-3625.

      [30] PAUL K,NONOH J O,MIKULSKI L,et al."Methanoplasmatales,"Thermoplasmatales-related archaea in termite guts and other environments,are the seventh order of methanogens[J].Applied and Environmental Microbiology,2012,78(23):8245-8253.

      [31] REA S,BOWMAN JP,POPOVSKI S,et al.Methanobrevibacter millerae sp.nov.and Methanobrevibacter olleyae sp.nov.,methanogens from the ovine and bovine rumen that can utilize formate for growth[J].International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology,2007,57(Pt.3):450-456.

      [32] SAMUEL B S,HANSEN E E,MANCHESTER J K,et al.Genomic and metabolic adaptations of Methanobrevibacter smithii to the human gut[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2007,104(25):10643-10648.

      [33] FACEY H V,NORTHWOOD K S,WRIGHT A D G.Molecular diversity of methanogens in fecal samples from captive Sumatran orangutans(Pongo abelii)[J].American Journal of Primatology,2012,74(5):408-413.

      [34] ST-PIERRE B,WRIGHT A D G.Molecular analysis of methanogenic archaea in the forestomach of the alpaca(Vicugna pacos)[J/OL].BMC Microbiology,2012,12:1.doi:10.1186/1471-2180-12-1.

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