喬俊卿, 陳志誼, 梁雪杰, 劉永鋒, 劉郵洲
(江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所,江蘇 南京 210014)
枯草芽孢桿菌可產(chǎn)生強(qiáng)抗逆性的內(nèi)生芽孢,其抑菌譜廣,對(duì)多種植物病害具有良好防效,且對(duì)植物具有促生作用。已有研究結(jié)果表明,芽孢桿菌防治植物病害的機(jī)制主要有:與病原菌競(jìng)爭(zhēng)營(yíng)養(yǎng)和生態(tài)位點(diǎn)、分泌抗菌物質(zhì)抑制病原菌的生長(zhǎng)和激發(fā)植物誘導(dǎo)系統(tǒng)抗性[1]。然而,生防菌防治植物病害的先決條件是其在引進(jìn)位點(diǎn)能夠有效定殖[2-3]。因此,生防菌的定殖能力及動(dòng)態(tài)規(guī)律研究已經(jīng)成為生防微生物篩選、研發(fā)的重要參考指標(biāo)。
生防菌在植物根際的有效定殖具有以下特征:能夠吸附在植物根表面;能夠在生長(zhǎng)的植物根系上定殖;能夠利用種子或根系泌出液為營(yíng)養(yǎng)繁殖擴(kuò)展[4]。生防芽孢桿菌通常以生物膜的形式定殖于植物根際。生物膜可以提高生防菌的生存競(jìng)爭(zhēng)力,幫助其抵抗抗生素等環(huán)境壓力,逃避原生動(dòng)物的捕食;生物膜還能維持生防菌在植物根部的定殖數(shù)量,從而提高細(xì)菌分泌的胞外酶和抗生素的濃度,使其達(dá)到有效濃度,保證生防菌發(fā)揮正常的生防和促生作用[5]。芽孢桿菌生物膜主成分是胞外多糖、TasA蛋白、多聚谷氨酸以及一些DNA等物質(zhì)[6]。因此,生物膜的主成分是影響芽孢桿菌在植物根際定殖的重要因子。
江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所水稻病害與生防研究室經(jīng)過(guò)長(zhǎng)期研究,積累了大量的生防菌株資源,并開(kāi)發(fā)了相關(guān)產(chǎn)品,如防治水稻紋枯病的生物制劑“紋曲寧”[7-9]和防治水稻細(xì)菌性病害的“葉斑寧”等[10-11]。研究結(jié)果表明,枯草芽孢桿菌 Bs916(紋曲寧主要活性成分)對(duì)多種植物病原真菌和細(xì)菌都具有抑制作用;全基因組測(cè)序和質(zhì)譜檢測(cè)顯示,Bs916可產(chǎn)生多種脂肽類和聚酮類抗生素,如表面活性素、桿菌霉素L等[12-14]。本研究擬在Bs916全基因組測(cè)序平臺(tái)和其抑制番茄青枯病菌的基礎(chǔ)上,進(jìn)一步分析Bs916生物膜形成的關(guān)鍵基因,研究其生物膜形成能力,并采用植物MS平板定殖研究法和溫室盆栽試驗(yàn)評(píng)估Bs916在番茄根部的定殖能力和規(guī)律,旨在為芽孢桿菌Bs916防治番茄青枯病的田間應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。
試驗(yàn)用病原菌番茄青枯菌(Ralstonia solanacearum,RSQ)和生防菌(Bacillus subtilis Bs916)及其綠色熒光蛋白(GFP)標(biāo)記菌株Bs916G均由江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所水稻病害與生防研究室保存??莶菅挎邨U菌活化和發(fā)酵均用改良酵母膏蛋白胨葡萄糖(Yeast peptone glucose,YPG)培養(yǎng)基(酵母膏5 g、胰蛋白胨5 g、葡萄糖5 g、pH 7.0~7.2,固體培養(yǎng)基需加瓊脂15 g)。菌株Bs916G由姚震聲[15]構(gòu)建,其抗生素使用濃度為:氯霉素(Cm),5 μg/ml。番茄青枯病菌用營(yíng)養(yǎng)瓊脂(Nutrient agar,NA)培養(yǎng)基(牛肉浸膏 3 g、酵母膏 1 g、蛋白胨5 g、葡萄糖10 g、蒸餾水1 000 ml,固體培養(yǎng)基需加瓊脂15 g)活化培養(yǎng)。試驗(yàn)所用番茄品種為巨粉寶,枯草芽孢桿菌在無(wú)菌番茄根部定殖試驗(yàn)采用植物普通組培(Murashige and skoog,MS)培養(yǎng)基(購(gòu)自荷蘭 Duchefa Biochenie 公司)[16]。
將枯草芽孢桿菌Bs916和Bs916G在YPG固體平板活化,挑取單菌落入YPG液體培養(yǎng)基發(fā)酵,33℃、150 r/min振蕩培養(yǎng) 48 h(菌含量:2×109CFU/ml)。番茄青枯病菌在NA固體培養(yǎng)基上活化,移入50 ml NA培養(yǎng)液中,28℃、150 r/min振蕩培養(yǎng)24 h,吸取青枯菌液涂布空白NA平板(0.2 ml菌液/平板,青枯菌含量:1×108CFU/ml)。NA平板四周呈十字架型打4個(gè)直徑5 mm的小孔(離培養(yǎng)皿中心距離約為30 mm),每孔上滴入生防菌液5 μl。每處理重復(fù)3皿。28℃恒溫培養(yǎng)2 d后,調(diào)查抑菌圈直徑。
芽孢桿菌Bs916和Bs916G的生物膜形成能力在MSgg培養(yǎng)液中進(jìn)行評(píng)估。MSgg培養(yǎng)基配方如下:磷酸鉀5 mmol/L,Mops(pH=7)100 mmol/L,MgCl22 mmol/L, CaCl2700 μmol/L, FeCl350 μmol/L,MnCl250 μmol/L,ZnCl21 μmol/L,硫胺素2 μmol/L,甘油0.5%,谷氨酸0.5%、色氨酸50 mg/L,苯丙氨酸50 mg/L[6]。將芽孢桿菌Bs916和Bs916G分別接種于10 ml YPG液體培養(yǎng)基中,28℃、180 r/min培養(yǎng)16 h。然后取5 μl培養(yǎng)液,轉(zhuǎn)接到含有3 ml MSgg培養(yǎng)液的12孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,每個(gè)菌株接4孔,重復(fù)3次。37℃靜置培養(yǎng)24~48 h后,觀察生物膜形成情況。
Bs916發(fā)酵48 h后收集菌體,并用滅菌0.9%NaCl稀釋至OD600為1.0待用(菌含量約為5×107CFU/ml)。番茄種子于3%次氯酸鈉溶液中浸泡5 min滅菌,無(wú)菌水沖洗至無(wú)味,置于Bs916生防菌液中浸泡24 h,種子晾干后,播種于MS瓊脂平板,每平板播種5粒,重復(fù)3次,靜置于28℃光照培養(yǎng)箱。15 d后,稱取番茄根,將其研磨后用無(wú)菌水按照倍比稀釋法,涂布YPG固體平板,檢測(cè)生防菌Bs916在番茄根部的定殖數(shù)量。
GFP標(biāo)記菌株Bs916G于YPG中發(fā)酵48 h,收集菌液待用,測(cè)定原液菌含量,約為 2×109CFU/ml。番茄青枯菌RSQ于NA培養(yǎng)液中培養(yǎng)48 h,收集菌液待用,菌含量約1×109CFU/ml。自然土過(guò)篩,與營(yíng)養(yǎng)土和蛭石按1∶1∶1配比,將催芽的番茄種子播入其中,待番茄苗4葉1心時(shí)定植于單獨(dú)盆缽中。盆栽定殖試驗(yàn)共3個(gè)處理,分別是單澆Bs916G菌液處理(Bs916G)、先澆 Bs916G菌液后澆青枯菌處理(Bs916G+RSQ)和澆無(wú)菌水對(duì)照(CK),每處理15缽,重復(fù)3次。番茄定植前,需澆生防菌的處理,先將番茄苗在生防菌液中浸根20 min,待定植后,每棵苗根圍再澆Bs916G菌液20 ml;Bs916G+RSQ處理中,每棵苗需同時(shí)灌根青枯病菌菌液10 ml;對(duì)照處理中,番茄苗在無(wú)菌水中浸根20 min,定植后并灌根無(wú)菌水20 ml。灌根處理后1 d、2 d、3 d、5 d、7 d、14 d 定期采集番茄根,每次取苗3棵,抖落根土,并稱取根部1 g,用無(wú)菌水振蕩洗滌,倍比稀釋后,分別涂布含有10 μg/ml氯霉素的YPG平板,28℃靜置培養(yǎng)48~72 h后,統(tǒng)計(jì)枯草芽孢桿菌Bs916G菌落數(shù)。
試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Excel 2003和SPSS 16.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,Duncan's新復(fù)極差法分析不同處理間差異顯著性。
全基因組序列分析顯示,枯草芽孢桿菌Bs916含有完整的生物膜形成關(guān)鍵基因(簇),包括胞外多糖(EPS)合成酶編碼基因簇、TasA蛋白和γ-多聚谷氨酸聚合酶編碼基因簇(表1)。其中胞外多糖(EPS)合成酶編碼基因簇大小為15 715 bp,包含15個(gè)編碼基因,與已報(bào)道的氨基酸序列同源性達(dá)99%~100%;TasA蛋白編碼基因大小786 bp,與已報(bào)道蛋白同源性達(dá)100%;γ-多聚谷氨酸聚合酶編碼基因簇大小為4 369 bp,與已報(bào)道的相關(guān)氨基酸序列同源性達(dá)96%~100%。3個(gè)完整且高度同源的編碼基因(簇)是Bs916生物膜形成的有利遺傳保障。
表1 枯草芽孢桿菌Bs916生物膜形成關(guān)鍵基因(簇)信息Table 1 The details of gene clusters related to biofilm formation in Bacillus subtilis Bs916
平板對(duì)峙試驗(yàn)結(jié)果(表2)顯示,枯草芽孢桿菌Bs916及其GFP標(biāo)記菌株Bs916G對(duì)番茄青枯病菌均顯示較好的抑制作用,抑菌圈直徑都在13 mm左右,且無(wú)顯著差異,這表明GFP的表達(dá)并未影響B(tài)s916對(duì)番茄青枯菌的拮抗效果。此外,生物膜形成能力結(jié)果(圖1)顯示,Bs916和Bs916G在MSgg培養(yǎng)基中都能夠形成生物膜,且質(zhì)地厚實(shí),多皺褶。這也表明GFP的表達(dá)并不影響芽孢桿菌Bs916生物膜的形成能力。
表2 枯草芽孢桿菌Bs916和Bs916G對(duì)番茄青枯菌的拮抗作用Table 2 Antagonistic activity of Bacillus subtilis Bs916 and Bs916G against R.solanacearum
如圖2所示,在MS平板試驗(yàn)中,枯草芽孢桿菌Bs916浸種的番茄根系兩側(cè)均看到白色菌痕,而未浸種的番茄根系兩側(cè)并無(wú)菌痕,這表明Bs916能夠利用番茄根系分泌物在番茄根際定殖生存。平板回收測(cè)定Bs916的定殖含量顯示,Bs916在番茄根部的定殖量為每1 g根3.1×107CFU。
圖1 枯草芽孢桿菌Bs916和Bs916G生物膜Fig.1 The biofilm of Bacillus subtilis Bs916 and Bs916G in MSgg medium
圖2 Bs916在MS平板試驗(yàn)中的番茄根部定殖情況Fig.2 Colonization of Bs916 on tomato roots in the MS plate
利用GFP標(biāo)記菌株Bs916G灌根番茄苗后,通過(guò)抗性平板回收法檢測(cè)Bs916G在番茄根部的定殖情況,結(jié)果顯示:單獨(dú)灌根 Bs916G的處理中,Bs916G在番茄根部的定殖數(shù)量呈現(xiàn)先下降后逐漸上升的趨勢(shì),即灌根1 d后,番茄根表定殖量可以達(dá)到1×109CFU/g,第5 d下降到最低點(diǎn),僅為每1 g根1×106CFU,隨后逐步回升達(dá)到1×107CFU/g,第7 d、14 d穩(wěn)定在1×107CFU/g。在灌根Bs916G并同時(shí)接種青枯菌的處理中,Bs916G的定殖數(shù)量變化趨勢(shì)和未接種處理基本一致,其定殖數(shù)量也基本相近,但在第14 d時(shí),Bs916G的定殖量明顯比未接種低約10倍,僅為1×106CFU/g(圖3)。
芽孢桿菌生物膜的成分主要是胞外多糖、TasA蛋白和γ-多聚谷氨酸。胞外多糖由eps操縱子負(fù)責(zé)合成,該操縱子編碼胞外多糖合成酶,TasA蛋白由tasA負(fù)責(zé)合成并泌出到胞外[17]。Chen等研究結(jié)果表明,枯草芽孢桿菌單獨(dú)突變eps或tasA基因,雖然能產(chǎn)生微弱的生物膜,但其在番茄根部的定殖能力下降,而eps和tasA的雙突變體不產(chǎn)生任何生物膜,在番茄根部基本不能定殖[18-19]。本研究結(jié)果顯示,枯草芽孢桿菌Bs916中具有完整的生物膜形成關(guān)鍵基因(簇),包括胞外多糖(EPS)合成酶編碼基因簇,TasA蛋白和γ-多聚谷氨酸聚合酶編碼基因簇,其大小分別為15 715 bp、786 bp和4 369 bp,與已報(bào)道的相關(guān)氨基酸序列同源性達(dá)96%~100%。同時(shí),本研究的后續(xù)試驗(yàn)已經(jīng)構(gòu)建了tasA基因的突變體,并發(fā)現(xiàn)該突變體的生物膜形成能力嚴(yán)重下降,在番茄根系定殖能力減弱,這與Chen等[19]報(bào)道的結(jié)果一致。由此可見(jiàn),生物膜是芽孢桿菌在植物根部定殖的重要存在形式。
圖3 枯草芽孢桿菌Bs916G在盆栽番茄根部的定殖動(dòng)態(tài)變化Fig.3 Dynamics of colonization of B.subtilis Bs916G on the root of tomato over time
綠色熒光蛋白(GFP)是一種良好的標(biāo)記物,近年來(lái),GFP被廣泛應(yīng)于標(biāo)記生防芽孢桿菌,用來(lái)觀察和研究生防菌在植物根部的行為和互作方式[20-21]。劉郵洲等利用GFP標(biāo)記枯草芽孢桿菌PTS-394,并進(jìn)行了其在番茄根圍定殖的觀察研究[22]。本研究首先比較了GFP標(biāo)記的枯草芽孢桿菌Bs916G與野生型Bs916的生物膜形成能力和抑制番茄青枯菌的能力,確認(rèn)兩者無(wú)顯著差異后,利用GFP標(biāo)記菌株進(jìn)行其在番茄根部的定殖動(dòng)態(tài)和規(guī)律研究,為生防芽孢桿菌Bs916田間防治番茄青枯病奠定了理論基礎(chǔ)。
生防芽孢桿菌施用后,穩(wěn)定的定殖能力是其發(fā)揮生防、促生作用的關(guān)鍵因素[23],因此,生防菌的定殖能力及動(dòng)態(tài)規(guī)律研究已經(jīng)成為生防微生物篩選、研發(fā)的重要參考指標(biāo)之一。劉慶豐等[24]報(bào)道,枯草芽孢桿菌XF-1能在大白菜根圍、根表和根內(nèi)長(zhǎng)時(shí)間定殖,有利于占據(jù)有利生態(tài)位點(diǎn),從而抑制白菜根腫病菌的侵染和繁殖。本試驗(yàn)結(jié)果表明,枯草芽孢桿菌Bs916能夠在番茄根部定殖,其在番茄根部的定殖數(shù)量呈現(xiàn)先下降后逐漸上升的趨勢(shì),即使接種青枯菌,Bs916的定殖數(shù)量的變化趨勢(shì)和未接種處理也基本一致,但在第14 d時(shí),其定殖量明顯比未接種低約10倍。以上結(jié)果表明,枯草芽孢桿菌Bs916可以在番茄根部有效定殖,這是其在田間發(fā)揮防治番茄青枯病的重要保障因素。
[1] LUGTENBERG B,KAMILOVA F.Plant-growth-promoting rhizobacteria [J].Annual Review of Microbiology,2009,63:541-556.
[2] 殷幼平,袁訓(xùn)娥,李 強(qiáng),等.生防菌枯草芽孢桿菌CQBS03的綠色熒光蛋白基因標(biāo)記及其在柑橘葉片上的定殖[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,43(17):3555-3563.
[3] 王志遠(yuǎn),吳興興,吳毅歆,等.解淀粉芽孢桿菌B9601-Y2抗性基因標(biāo)記及其在作物根部的定殖能力[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2012,31(3):313-319.
[4] KLOEPPER J W.Plant growth-promoting rhizobacteria as biological control agents[M]//Metting F B.Soil Microbial Ecology:Applications in Agricultural and Environmental Managment.New York:Marcel Dekker Inc.,1992:255-274.
[5] 劉 俊.解淀粉芽孢桿菌CO6防治桃褐腐病菌的機(jī)制及其產(chǎn)生的γ-多聚谷氨酸在定殖中的作用[D].南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué),2010.
[6] BRANDA,S S,CHU F,KEARNS D B,et al.A major protein component of the Bacillus subtilis biofilm matrix [J].Molecular Microbiology,2006,59:1229-1238.
[7] 陳志誼,許志剛,高泰東,等.水稻紋枯病拮抗細(xì)菌的評(píng)價(jià)及利用[J].中國(guó)水稻科學(xué),2000,14(2):98-102.
[8] 陳志誼,劉 榮,劉永鋒.水稻紋枯病拮抗細(xì)菌B-916的選育[J]. 中國(guó)生物防治,2003,19(1):15-18.
[9] 陳志誼,劉永鋒,陸 凡.井岡霉素和生防菌Bs-916協(xié)同控病作用及增效機(jī)理[J].植物保護(hù)學(xué)報(bào),2003,30(4):429-434.
[10]張榮勝,陳思宇,王曉宇,等.解淀粉芽孢桿菌Lx-11防治水稻細(xì)菌性條斑病應(yīng)用技術(shù)研究[J].中國(guó)生物防治,2014,29(4):595-600.
[11]張榮勝,王曉宇,羅楚平,等.解淀粉芽孢桿菌Lx-11產(chǎn)脂肽類物質(zhì)鑒定及表面活性素對(duì)水稻細(xì)菌性條斑病的防治作用[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2013,46(10):2014-2021.
[12] WANG X,LUO C,CHEN Z.Genome sequence of the plant growth-promoting rhizobacterium Bacillus sp.strain 916 [J].Journal of Bacteriology,2012,194(19):5467-5468.
[13] LUO C,LIU X,ZHOU H,et al.Nonribosomal peptide synthase gene clusters for lipopeptide biosynthesis in Bacillus subtilis 916 and their phenotypic functions[J].Applied and Environmental Microbiology,2015,81(1):422-431.
[14] LUO C,ZHOU H,ZOU J,et al.Bacillomycin L and surfactin contribute synergistically to the phenotypic features of Bacillus subtilis 916 and the biocontrol of rice sheath blight induced by Rhizoctonia solani[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2015,99(4):1897-1910.
[15]姚震聲,陳中義,陳志誼,等.綠色熒光蛋白基因標(biāo)記野生型生防枯草芽孢桿菌的研究[J].生物工程學(xué)報(bào),2003,19(5):551-555.
[16] MURASHIGE T,SKOOG F.A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures[J].Physiologia Plantarum,1962,15:473-479.
[17] BRANDA S S,GONZALEZ-PASTOR J E,DERVYN E,et al.Genes involved in formation of structured multicellular communities by Bacillus subtilis[J].Journal of Bacteriology,2004,186,3970-3979.
[18] BEAUREGARD P B,CHAI Y,VLAMAKIS H,et al.Bacillus subtilis biofilm induction by plant polysaccharides[J].Proc Natl Acad Sci USA,2013,110(17):E1621-1630.
[19] CHEN Y,CAO S,CHAI Y,et al.A Bacillus subtilis sensor kinase involved in triggering biofilm formation on the roots of tomato plants[J].Molecular Microbiology,2012,85(3):418-430.
[20] 郝變青,馬利平,喬雄梧.GFP標(biāo)記的植物促生菌B96-Ⅱ-gfp的定殖能力研究[J].中國(guó)生態(tài)農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2010,18(4):861-865.
[21]楊秀榮,田 濤,孫淑琴,等.GFP標(biāo)記生防細(xì)菌B579及其定殖能力檢測(cè)[J].植物病理學(xué)報(bào),2013,43(1):82-87.
[22]劉郵洲,梁雪杰,喬俊卿,等.枯草芽孢桿菌PTS-394的GFP標(biāo)記及其定殖能力[J].植物保護(hù)學(xué)報(bào),2014,41(4):416-422.
[23] FAN B,BORRISS R,BLEISS W,et al.Gram-positive rhizobacterium Bacillus amyloliquefaciens FZB42 colonizes three types of plants in different patterns[J].Journal of Microbiology,2012,50:38-44.
[24]劉慶豐,熊國(guó)如,毛自朝,等.枯草芽孢桿菌XF-1的根圍定殖能力分析[J].植物保護(hù)學(xué)報(bào),2012,39(5):425-430.