夏曉杰，鄔應(yīng)龍*，馮 姣，曾麗萍，王洪杰，湯浩瀾

（四川農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院，四川 雅安 625014）

兩種多糖對齊口裂腹魚生長、體組成及血清生化指標(biāo)的影響

夏曉杰，鄔應(yīng)龍*，馮 姣，曾麗萍，王洪杰，湯浩瀾

（四川農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院，四川 雅安 625014）

目的：研究水溶性氧化魔芋葡甘露聚糖（oxidized konjac glucomannan，OKGM）及水不溶性抗性淀粉（resistant starch，RS）RS4對齊口裂腹魚生長性能、體組成及血清生化指標(biāo)的影響。方法：選取平均體質(zhì)量為（87.58±5.16）g的健康齊口裂腹魚450尾，隨機(jī)分為5組，每組3個重復(fù)，每個重復(fù)30尾。各組分別飼喂在基礎(chǔ)飼料中添加0%（質(zhì)量分?jǐn)?shù)，下同）的OKGM及RS4型抗性淀粉（C組）、1.6%的OKGM（OKGM1.6組）、3.2%的OKGM（OKGM3.2組）、1.6%的RS4型抗性淀粉（RS41.6組）、3.2%的RS4型抗性淀粉（RS43.2組）的飼料，飼喂60 d后，測定齊口裂腹魚的生長指標(biāo)、體組成及血清生化指標(biāo)。結(jié)果：與C組相比，OKGM1.6組齊口裂腹魚的體質(zhì)量增加率、特定生長率、蛋白質(zhì)效率最高，餌料系數(shù)最低（P＜0.05），RS41.6組和RS43.2組齊口裂腹魚的體質(zhì)量增加率、特定生長率、蛋白質(zhì)效率變化不大，RS43.2組餌料系數(shù)降低（P＜0.05）；OKGM組肌肉粗蛋白含量增加（P＞0.05），OKGM3.2組齊口裂腹魚的肌肉和肝胰臟粗脂肪含量最低（P＜0.05），魚體肌肉水分、粗灰分含量不受OKGM及RS4添加量的影響（P＞0.05）；OKGM1.6組齊口裂腹魚的血清甘油三酯水平顯著降低（P＜0.05），高密度脂蛋白膽固醇水平升高（P＜0.05）；RS43.2組齊口裂腹魚的血清總膽固醇、甘油三酯水平均降低（P＜0.05），高密度脂蛋白膽固醇含量升高（P＜0.05）。結(jié)論：當(dāng)OKGM添加量為1.6%時，能改善齊口裂腹魚生長狀況，提高蛋白質(zhì)效率，降低肌肉及肝胰臟粗脂肪含量，調(diào)節(jié)血脂水平。

齊口裂腹魚；氧化魔芋葡甘露聚糖；RS4型抗性淀粉；生長；體組成；血清生化指標(biāo)

魔芋葡甘露聚糖（konjac glucomannan，KGM）是從魔芋塊莖中提取出的一種水溶性天然高分子化合物，由葡萄糖和甘露糖以β-1,4吡喃糖苷鍵連接而成，其物質(zhì)的量比為1.6∶1，屬于理想的膳食纖維。選擇適當(dāng)?shù)难趸磻?yīng)體系，將KGM進(jìn)行氧化，可制得潔白度、穩(wěn)定性、溶解性等均高于KGM的氧化魔芋葡甘露聚糖（oxidized KGM，OKGM），其分子質(zhì)量及糊漿黏度降低。Grisdale-Helland等[1]對大西洋鮭魚的研究結(jié)果表明，適量添加甘露聚糖能改善大西洋鮭魚的生長狀況；Sajilata等[2]認(rèn)為魔芋多糖能降低總膽固醇（total cholesterol，TC）、甘油三酯（triglyceride，TG）、低密度脂蛋白膽固醇（low density lipoprotein-cholesterol，LDL-C）水平及體質(zhì)量等，但對高密度脂蛋白膽固醇（high density lipoprotein-cholesterol，HDL-C）水平的影響不顯著；解萬翠等[3]研究發(fā)現(xiàn)KGM能夠改善冷凍蝦仁的持水品質(zhì)。1993年歐洲抗性淀粉研究協(xié)會將抗性淀粉（resistant starch，RS）定義為：不被健康人體小腸所吸收的淀粉及其降解產(chǎn)物的總稱。根據(jù)抗性淀粉產(chǎn)生抗性的原理不同，可將其分為4種：RS1型為物理包埋淀粉、RS2型為抗性淀粉顆粒、RS3型為老化淀粉、RS4型為化學(xué)改性淀粉。其中，RS4型淀粉是經(jīng)物理或化學(xué)變性后，因淀粉分子結(jié)構(gòu)的改變及化學(xué)官能團(tuán)的引入而產(chǎn)生的抗酶解淀粉，如檸檬酸淀粉酯、淀粉磷酸酯。研究表明，RS能改善血脂和血糖水平，增強(qiáng)腸道短鏈脂肪酸含量，預(yù)防結(jié)腸癌的發(fā)生，促進(jìn)礦物質(zhì)吸收，還有利于脂肪氧化，具有一定降脂作用[4]。近年來，國內(nèi)外學(xué)者對OKGM的研究多集中在工藝優(yōu)化及理化性質(zhì)方面，在生理功能上的研究目前僅見于免疫及腸道微生態(tài)環(huán)境，而對RS4型抗性淀粉的研究主要集中在哺乳動物上，兩種多糖在魚類上的應(yīng)用研究鮮見報道。

齊口裂腹魚（Schizothorax prenantiTchang）是長江上游的一種底層冷水性魚類，隸屬鯉科、裂腹魚亞科，主食著生于巖石上的藻類及一些水生昆蟲或植物，喜生活在水溫較低、水流湍急、含氧量高的山間河流中。其肉色雪白、肉質(zhì)細(xì)嫩、肉味鮮美、營養(yǎng)價值及學(xué)術(shù)研究價值較高，是產(chǎn)區(qū)名貴的經(jīng)濟(jì)魚類[5]。本實驗探討OKGM及RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚生長、體組成及血清生化指標(biāo)的影響，旨在為OKGM及RS4型抗性淀粉在水產(chǎn)飼料中的合理應(yīng)用提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料

齊口裂腹魚購自四川雅安天全養(yǎng)魚場，為2012年孵化的同一批魚種，平均體質(zhì)量（87.58±5.16）g，購回后用20 mg/L的KMnO4消毒15 min，適應(yīng)性飼養(yǎng)；OKGM及RS4型抗性淀粉為四川農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院實驗室自制[6-7]；菜油、面粉購自雅安農(nóng)貿(mào)市場；魚粉、豆粕、玉米、麩皮、魚用多種維生素、礦物質(zhì)添加劑、Ca(H2PO4)2由四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動物營養(yǎng)研究所提供。

表1 飼料組成及營養(yǎng)水平Table1 Ingredients and nutrient levels of experimental diets

飼料以食用菜油為脂肪源，魚粉為動物蛋白源，豆粕為植物蛋白源，參照美國NRC（National ResearchCouncil）（1994）所建議的魚類營養(yǎng)需要和段彪等[8]的齊口裂腹魚飼料設(shè)計配方，實驗用飼料配方及營養(yǎng)水平見表1。在基礎(chǔ)飼料中分別添加0%（質(zhì)量分?jǐn)?shù)，下同）的OKGM及RS4（C組）、1.6%的OKGM（OKGM1.6組）、3.2%的O K G M（O K G M3.2組）、1.6%的R S 4（RS41.6組）、3.2%的RS4（RS43.2組），配制成5組等氮等能量的飼料。飼料原料過40目篩，各組飼料逐級混合均勻，再加水拌勻，用制粒機(jī)擠壓成直徑1 mm硬顆粒飼料，25℃風(fēng)干后置于4℃冰箱內(nèi)貯存?zhèn)溆谩?/p>

1.2試劑與儀器

TC試劑盒、TG試劑盒、LDL-C試劑盒、HDL-C試劑盒、葡萄糖（glucose，Glu）試劑盒 南京建成生物工程研究所；其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

T124S型電子天平 北京賽多利儀器系統(tǒng)有限公司；HHS-9S型恒溫水浴鍋 上海光地儀器設(shè)備有限公司；BWFJ7200型分光光度計 上海尤尼柯儀器有限公司；高速冷凍離心機(jī) 美國Thermo公司。

1.3方法

1.3.1實驗設(shè)計與管理

適應(yīng)性飼養(yǎng)14 d后，挑選健壯無傷的齊口裂腹魚450尾隨機(jī)分為5組，每組3個重復(fù)，每個重復(fù)30尾，以重復(fù)為單位投放于1～15號規(guī)格為70.00 cm×50.00 cm×50.00 cm的魚缸中，按照1.1節(jié)方法將5個組分為對照組（C組）、OKGM1.6組、OKGM3.2組、RS41.6組、RS43.2組。按每缸齊口裂腹魚每天平均體質(zhì)量的2.5%投喂飼料，每天3次（9：00、13：30、19：30），每天換水1次，換水量占魚缸總體積1/3，并清除缸內(nèi)糞便。飼養(yǎng)期為60 d，每天記錄水溫，溶氧量，24 h不間斷充氣，保證水體溶氧量穩(wěn)定。實驗期間保持微流水，平均水溫為18～22℃，pH 7.4～7.6，自然光周期，透明度50 cm以上，溶氧量5.5 mg/L以上。實驗結(jié)束禁食1 d，進(jìn)行各指標(biāo)測定。

1.3.2樣品采集

飼養(yǎng)實驗結(jié)束后，禁食24 h，每缸隨機(jī)取出18尾齊口裂腹魚，尾靜脈取血，于室溫放置1 h后，4℃冰箱過夜，3 500 r/min離心15 min，收集上清液即血清置于-20℃冰箱保存?zhèn)溆?。取血后解剖魚體，迅速取出肝胰臟、肌肉（第1根背鰭至最后1根背鰭之間，側(cè)線以上及以下白?。┲糜?20℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

1.3.3指標(biāo)測定與方法

1.3.3.1生長性能測定

飼養(yǎng)60 d后，禁食24 h，以缸為單位稱量齊口裂腹魚體質(zhì)量，每缸取出剩余的齊口裂腹魚12尾，測量體長、體高，解剖后稱肝胰臟及腸系膜脂肪質(zhì)量，按以下公式計算各項指標(biāo)。

式中：m0為實驗開始時齊口裂腹魚的體質(zhì)量/g；mt為實驗結(jié)束齊口裂腹魚的體質(zhì)量/g；F為飼料攝入量/g；P為飼料中粗蛋白含量/（g/100 g）；t為實驗養(yǎng)殖時間/d。

1.3.3.2魚體營養(yǎng)成分含量測定

取1.3.2節(jié)所采集的肌肉樣品對各種營養(yǎng)成分含量測定：水分含量的測定采用GB 5009.3—2010《食品中水分的測定》中的105℃干燥法；粗脂肪含量的測定采用GB/T 5009.6—2003《食品中脂肪的測定》索氏提取法；肌肉粗蛋白含量的測定采用GB 5009.5—2010《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中蛋白質(zhì)的測定》中的凱氏定氮法；粗灰分含量的測定采用GB 5009.4—2010《食品中灰分的測定》中的馬弗爐（550℃）灼燒法。

1.3.3.3血清生化指標(biāo)測定

取1.3.2節(jié)所采集的齊口裂腹魚血清樣品，對TC、TG、LDL-C、HDL-C、Glu含量進(jìn)行測定，均按照試劑盒說明書方法操作。

1.4數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

2 結(jié)果與分析

2.1日糧中添加OKGM及RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚生長性能的影響

由表2可知，經(jīng)60 d養(yǎng)殖實驗后，與C組相比，OKGM3.2組、RS41.6組、RS43.2組齊口裂腹魚的體質(zhì)量增加率無顯著差異（P＞0.05），OKGM1.6組的體質(zhì)量增加率則顯著升高（P＜0.05），OKGM1.6組齊口裂腹魚的體質(zhì)量增加率顯著高于RS41.6組（P＜0.05），其余組之間無顯著差異（P＞0.05）；與C組相比，OKGM1.6組齊口裂腹魚的特定生長率顯著升高（P＜0.05），OKGM3.2組、RS41.6組、RS43.2組則無顯著差異（P＞0.05），OKGM1.6組的特定生長率顯著高于RS41.6組（P＜0.05）；與C組相比，OKGM1.6組齊口裂腹魚的蛋白質(zhì)效率顯著升高（P＜0.05），OKGM3.2組、RS41.6組、RS43.2組則無顯著差異（P＞0.05），其余組之間差異不顯著（P＞0.05）；與C組相比，OKGM1.6組、RS43.2組齊口裂腹魚的餌料系 數(shù)顯著降低（P＜0.05），其余各組無顯著差異（P＞0.05）；各組齊口裂腹魚的存活率之間差異不顯著（P＞0.05）。

表2 日糧中添加OKGM及RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚生長性能的影響（xTable2 Effects of dietary OKGM and resistant starch on growth of Schizothorax prenanti Tchang ((x ± s

表2 日糧中添加OKGM及RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚生長性能的影響（xTable2 Effects of dietary OKGM and resistant starch on growth of Schizothorax prenanti Tchang ((x ± s

注：同列小寫字母不同表示差異顯著（P＜0.05）。表3、5同。

組別初始體質(zhì)量/g末體質(zhì)量/g體質(zhì)量增加率/%特定生長率/（%/d）蛋白質(zhì)效率/%餌料系數(shù)/%存活率/% C組88.87±3.45 104.43±4.93ab17.49±1.47b0.27±0.02b73.77±3.02b3.63±0.11a98.67±0.58 OKGM1.6組84.52±5.17 102.96±8.37b21.66±2.47a0.33±0.03a82.00±2.22a3.15±0.11b100.00±0.00 OKGM3.2組87.88±2.52 105.46±2.58ab20.01±0.50ab0.30±0.00ab78.19±3.44ab3.34±0.15ab99.33±0.58 RS41.6組85.00±7.40 107.86±0.11ab17.93±1.08b0.27±0.02b76.54±2.52ab3.41±0.11ab99.33±1.15 RS43.2組91.60±6.00 113.58±4.03a19.65±0.47ab0.30±0.01ab78.89±6.20ab3.32±0.26b99.67±0.58

2.2日糧中添加OKGM及RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚形體指標(biāo)及內(nèi)臟指數(shù)的影響

表3 日糧中添加OKGM 及RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚形體指標(biāo)及內(nèi)臟指數(shù)的影響（xTable3 Effects of dietary OKGM and resistant starch on body indexes and visceral indexes of Schizothorax prenanti Tchang ((x ± ss

表3 日糧中添加OKGM 及RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚形體指標(biāo)及內(nèi)臟指數(shù)的影響（xTable3 Effects of dietary OKGM and resistant starch on body indexes and visceral indexes of Schizothorax prenanti Tchang ((x ± ss

組別肥滿度/（g/cm3）體長/體高肝體比/%腸脂比/% C組1.50±0.02ab4.55±0.031.41±0.19 0.72±0.05abOKGM1.6組1.49±0.02ab4.54±0.011.45±0.24 0.77±0.09abOKGM3.2組1.50±0.03ab4.55±0.031.35±0.000.88±0.10aRS41.6組1.61±0.09a4.51±0.031.60±0.26 0.71±0.11abRS43.2組1.45±0.13b4.50±0.041.69±0.190.68±0.06b

由表3可知，RS43.2組齊口裂腹魚的肥滿度顯著低于RS41.6組（P＜0.05），與C組、OKGM1.6組、OKGM3.2組相比無顯著差異（P＞0.05），其余各組之間無顯著差異（P＞0.05）；RS43.2組齊口裂腹魚的腸脂比顯著低于OKGM3.2組（P＜0.05），與C組、OKGM1.6組、RS41.6組相比無顯著差異（P＞0.05），其余各組之間無顯著差異（P＞0.05）；各組齊口裂腹魚的體長/體高及肝體比均無顯著差異（P＞0.05）。

2.3日糧中添加OKGM及RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚營養(yǎng)成分含量的影響

由表4可知，在肌肉營養(yǎng)成分組成方面，與C組相比，OKGM1.6組、OKGM3.2組齊口裂腹魚肌肉的粗蛋白含量顯著增加（P＜0.05），RS41.6組、RS43.2組則無顯著差異（P＞0.05），OKGM組的粗蛋白含量顯著高于RS4組（P＜0.05）；與C組相比，OKGM3.2組、RS41.6組、RS43.2組齊口裂腹魚肌肉的粗脂肪含量差異不顯著（P＞0.05），OKGM1.6組則顯著降低（P＜0.05），其余各組無顯著差異（P＞0.05）。各組齊口裂腹魚肌肉的水分及灰分含量均無顯著差異（P＞0.05）。在肝胰臟營養(yǎng)成分組成方面，與C組相比，OKGM1.6組、OKGM3.2組、RS41.6組、RS43.2組齊口裂腹魚肝胰臟的粗脂肪含量顯著降低（P＜0.05），OKGM及RS4組內(nèi)無顯著差異（P＞0.05），OKGM1.6組的粗脂肪含量顯著低于RS41.6組（P＜0.05）；各組齊口裂腹魚肝胰臟的水分含量差異不顯著（P＞0.05）。

表4 日糧中添加OKGM及RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚營養(yǎng)成分含量的影響Table4 Effects of dietary OKGM and resistant starch on body compositions of Schizothorax prenanti Tchang (x ± ss

表4 日糧中添加OKGM及RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚營養(yǎng)成分含量的影響Table4 Effects of dietary OKGM and resistant starch on body compositions of Schizothorax prenanti Tchang (x ± ss

注：同行小寫不同字母表示差異顯著（P＜0.05）。

g/100 g指標(biāo)C組OKGM1.6組OKGM3.2組RS41.6組RS43.2組肌肉水分含量79.00±0.07 78.89±0.16 78.97±1.22 79.15±0.35 79.52±0.09粗蛋白含量15.54±0.04b16.14±0.20a16.09±0.55a15.38±0.13b15.30±0.17b粗脂肪含量2.56±0.25a2.02±0.12b2.32±0.07ab2.38±0.43ab2.14±0.28ab粗灰分含量1.27±0.05 1.34±0.09 1.35±0.04 1.33±0.11 1.26±0.07肝胰臟水分含量68.03±7.54 71.27±3.82 71.05±1.66 72.84±4.25 75.87±3.92粗脂肪含量10.33±0.96a5.29±0.92c6.24±0.32bc7.00±0.85b6.05±0.55bc

2.4日糧中添加OKGM及RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚血清生化指標(biāo)的影響

表5 日糧中添加OKGM及RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚血清生化指標(biāo)的影響Table5 Effects of dietary OKGM and resistant starch on serum biochemical indexex of Schizothorax prenanti Tchang (x ± ss,

表5 日糧中添加OKGM及RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚血清生化指標(biāo)的影響Table5 Effects of dietary OKGM and resistant starch on serum biochemical indexex of Schizothorax prenanti Tchang (x ± ss,

注：同列大寫字母不同表示差異極顯著（P＜0.01）。

mmol/L組別TCTGLDL-CHDL-CGlu C組6.23±0.48ab1.57±0.30a3.24±0.94 1.66±0.44c3.84±0.25 OKGM1.6組5.55±0.68bc0.67±0.16c3.06±0.15 2.54±0.54b4.19±0.41 OKGM3.2組5.21±0.46bc0.56±0.04c3.05±0.87 1.26±0.21cC3.92±0.46 RS41.6組7.12±0.98a1.06±0.15b2.90±0.23 3.42±0.20aA3.68±0.56 RS43.2組4.63±0.34c0.90±0.25bc2.98±0.42 2.26±0.31b3.77±0.12

由表5可知，與C組相比，RS43.2組齊口裂腹魚血清的TC含量顯著降低（P＜0.05），RS41.6組的血清TC含量顯著高于OKGM1.6組、OKGM3.2組、RS43.2組（P＜0.05），其余各組無顯著差異（P＞0.05）；與C組相比，OKGM1.6組、OKGM3.2組、RS41.6組、RS43.2組齊口裂腹魚血清的TG含量顯著降低（P＜0.05），OKGM及RS4組內(nèi)無顯著差異（P＞0.05），RS41.6組的TG含量顯著高于OKGM1.6組、OKGM3.2組（P＜0.05）；與C組相比，OKGM1.6組、RS41.6組、RS43.2組齊口裂腹魚血清的HDL-C含量顯著增加（P＜0.05），OKGM3.2組則無顯著差異（P＞0.05），RS41.6組的血清HDL-C含量顯著高于OKGM1.6組、RS43.2組（P＜0.05），極顯著高于OKGM3.2組（P＜0.01），OKGM3.2組的血清HDL-C含量顯著低于OKGM1.6組、RS43.2組（P＜0.05），OKGM1.6組與RS43.2組之間無顯著差異（P＞0.05）。各組齊口裂腹魚的血清LDL-C、Glu含量差異不顯著（P＞0.05）。

3 討 論

3.1兩種多糖對齊口裂腹魚生長性能的影響

OKGM是天然魔芋葡甘露聚糖經(jīng)H2O2氧化而得到的一種多糖，其分子質(zhì)量介于KGM與甘露寡糖之間，具有與甘露寡糖和葡聚糖相同的結(jié)構(gòu)單元，因而其生理功能與前兩者可能有一定的相似性。研究表明，甘露寡糖能影響后腸微生物的多樣性并改善腸道吸收面積，顯著增加腸道微絨毛長度和密度[9]。Reza等[10]認(rèn)為水產(chǎn)飼料中添加適量的益生菌或不消化物質(zhì)能選擇性地促進(jìn)腸道益生菌生長并加速其新陳代謝，從而對魚類產(chǎn)生積極影響。van Hai等[11]研究了益生元對西方幼對蝦的影響，結(jié)果表明0.5%甘露寡糖和0.2% β-1,3葡聚糖改善了西方幼對蝦的生長狀況。Zhang Liao等[12]研究了OKGM對齊口裂腹魚生長性能的影響，結(jié)果表明與對照組相比，0.8%OKGM添加量組齊口裂腹魚的體質(zhì)量增加率、蛋白質(zhì)利用率均升高，餌料系數(shù)降低。向世瓊等[13]研究發(fā)現(xiàn)，適當(dāng)添加抗性淀粉能夠增加齊口裂腹魚的攝食量及特定生長率。本實驗結(jié)果表明，OKGM1.6組齊口裂腹魚的體質(zhì)量增加率、特定生長率、蛋白質(zhì)效率最高，餌料系數(shù)最低。此結(jié)果與Ye等[14]對牙鲆、Xu Chengxiao等[15]對紅沼澤鰲蝦的研究結(jié)果一致。這可能與OKGM促進(jìn)齊口裂腹魚腸道乳酸菌的生長有關(guān)[16]，也可能是OKGM提高了齊口裂腹魚的免疫功能，從而促進(jìn)了其生長，但當(dāng)OKGM添加量為3.2%時，其促生長作用反而不明顯；RS4可刺激腸道運(yùn)動加劇，增加細(xì)胞膜滲透壓，加速營養(yǎng)物質(zhì)的擴(kuò)散，提高齊口裂腹魚攝食量并強(qiáng)化腸道對營養(yǎng)物質(zhì)的吸收，促進(jìn)齊口裂腹魚生長。但也有一些報道認(rèn)為在飼料中添加多糖對魚類生長和飼料系數(shù)并無影響，如Gültepe等[17]通過給金頭鯛飼喂甘露寡糖發(fā)現(xiàn)與對照組相比，實驗組金頭鯛的體質(zhì)量增加率、特定生長率、餌料系數(shù)均無顯著變化；Enes等[18]研究發(fā)現(xiàn)，玉米淀粉對金頭鯛的特定生長率、飼料利用率及蛋白質(zhì)效率均無顯著影響。這表明多糖對魚類生長的作用效果可能受品種、生長階段、飼料組成與營養(yǎng)水平、飼養(yǎng)方式、季節(jié)等影響。

Gatesoupea等[19]研究了抗性淀粉及糯米淀粉對鱸魚幼魚生長的影響，結(jié)果發(fā)現(xiàn)抗性淀粉組和糯米淀粉組的鱸魚幼魚與纖維素組相比肝體比增加，尤其是抗性淀粉組。本實驗中，與對照組相比，各實驗組齊口裂腹魚的體長/體高差異均不顯著（P＞0.05），RS4組齊口裂腹魚的肝體比升高，但差異不顯著（P＞0.05），與Enes等[20]對鱸魚的研究結(jié)論相似。

3.2兩種多糖對齊口裂腹魚體營養(yǎng)成分組成的影響

多糖對魚類生長影響的報道雖不完全一致，但在降低魚體脂肪含量方面取得了較為一致的結(jié)果。S?rensen等[21]對虹鱒的研究證實，非淀粉多糖會阻礙脂質(zhì)在胃腸道形成乳糜微粒，減少脂肪的吸收，從而降低魚體脂質(zhì)含量。Genc等[22]發(fā)現(xiàn)，1.5～4.5 g/kg添加量的甘露寡糖能夠提高虹鱒魚體粗蛋白含量。Akrami[23]通過對鯉魚幼魚飼喂不同劑量的甘露寡糖發(fā)現(xiàn)，當(dāng)甘露寡糖添加量為1 g/kg時，魚體粗蛋白含量最高，粗脂肪含量最低。本實驗結(jié)果表明，日糧中添加OKGM能提高魚體肌肉粗蛋白含量（P＜0.05），降低肌肉和肝胰臟粗脂肪含量，肌肉水分和灰分含量均無顯著變化（P＞0.05）。與Thongprajukaew[24]、Yilmaz[25]等的研究結(jié)論相似。造成以上結(jié)果的可能原因是一方面OKGM的黏滯性阻礙脂質(zhì)在胃腸道形成乳糜微粒，因此減少了魚體對脂肪的消化吸收；另一方面OKGM被微生物分解，從而改善了胃腸道環(huán)境，加快了肝臟脂質(zhì)代謝轉(zhuǎn)化[14]。任鳴春[26]研究了纖維素與生玉米淀粉對軍曹魚體組成的影響，結(jié)果表明與生玉米淀粉組相比，纖維素組軍曹魚的肌肉粗脂肪含量降低，粗蛋白及灰分含量無顯著變化。本實驗結(jié)果表明，日糧中添加RS4型抗性淀粉可降低齊口裂腹魚肝胰臟和肌肉中的粗脂肪含量（P＜0.05），而肌肉水分、粗蛋白及灰分含量未發(fā)生顯著變化（P＞0.05）。可能是RS4型抗性淀粉在后腸發(fā)酵產(chǎn)生了短鏈脂肪酸，從而減少了魚體對脂肪的消化吸收，也可能是一部分吸收的葡萄糖在參與脂肪合成前已經(jīng)被排出了體外所致。

3.3兩種多糖對齊口裂腹魚血清生化指標(biāo)的影響

膽固醇在肝臟中的主要代謝途徑是轉(zhuǎn)化為膽汁酸，然后膽汁酸鹽進(jìn)入腸道幫助腸內(nèi)脂類物質(zhì)的消化，其中85%～95%的膽汁被腸道重新吸收入血液返回肝臟，剩余少部分在腸道細(xì)菌的作用下被轉(zhuǎn)化為類固醇直接排出體外。可溶性非淀粉多糖能與膽固醇、脂肪相結(jié)合，顯著降低血清膽固醇含量，使脂肪的消化吸收顯著下降[27]。研究發(fā)現(xiàn)，抗性淀粉由于具有抗消化的特征，在小腸不被吸收但能在結(jié)腸發(fā)酵產(chǎn)生大量短鏈脂肪酸，而這些短鏈脂肪酸被結(jié)腸上皮細(xì)胞利用并經(jīng)過肛門靜脈進(jìn)入血液循環(huán)，影響脂質(zhì)代謝，且增加類固醇的排泄量，從而降低血清中膽固醇的含量[28]。張振龍[29]在黃顙魚日糧中添加8%果膠，養(yǎng)殖8周后發(fā)現(xiàn)實驗組黃顙魚的血清TC及LDL含量均顯著低于對照組，而血清TG含量與對照組差異不顯著。孫立威等[30]通過給吉富羅非魚飼喂殼寡糖發(fā)現(xiàn)，當(dāng)殼寡糖添加量為1%時，羅非魚的血清TC、TG含量均最低。Gatesoupe等[19]研究了抗性淀粉及糯米淀粉對鱸魚幼魚TG及血糖水平的影響，結(jié)果表明抗性淀粉組鱸魚幼魚的血清TG含量變化不大，血糖含量顯著增加，而糯米淀粉組鱸魚幼魚的血清TG含量則顯著升高，血糖含量變化不大。本實驗結(jié)果表明，與對照組相比，OKGM1.6組齊口裂腹魚的血清TC、TG及LDL-C水 平均降低，HDL-C水平升高（P＜0.05）；RS43.2組齊口裂腹魚的血清TC、TG及LDL-C水平均降低，HDL-C水平升高（P＜0.05），與肌肉及肝胰臟粗脂肪含量測定結(jié)果相符。造成上述結(jié)果的可能原因是OKGM吸附腸道中的膽汁酸鹽，阻礙了膽汁酸鹽的重吸收，促使多余的膽固醇在肝胰臟內(nèi)加速轉(zhuǎn)化為膽汁酸，從而大大減少進(jìn)入血液中的膽固醇量，達(dá)到調(diào)節(jié)血脂的作用；RS4型抗性淀粉可能因其獨特的物理性質(zhì)而降低了肝腸膽汁酸循環(huán)量及脂肪吸收，最終增加了膽汁酸的排泄，減少膽固醇的合成，但當(dāng)RS4型抗性淀粉添加量較低（1.6%）時，其降血脂的效果不明顯。Enes等[31]研究了瓜爾得膠對重牙鯛血清生化指標(biāo)的影響，結(jié)果表明與對照組相比，實驗組重牙鯛的血糖含量升高。血糖生成指數(shù)（glycemic index，GI）可反映食物最初消化和葡萄糖吸收的應(yīng)答關(guān)系。王竹等[32]的研究表明，RS不能被直接吸收，其GI值較低，使餐后血糖水平維持在相對較低的狀態(tài)，此外，RS可以減少對胰島素分泌的刺激作用。本實驗結(jié)果表明，與對照組相比，實驗組齊口裂腹魚的Glu水平差異不顯著（P＞0.05）。這與上述OKGM及RS4型抗性淀粉調(diào)節(jié)機(jī)體葡萄糖的研究結(jié)果基本一致，OKGM可能影響葡萄糖的吸收，從而延長血糖峰值。OKGM及RS4型抗性淀粉調(diào)節(jié)血脂水平的機(jī)制目前還不清楚，進(jìn)一步分析應(yīng)在分子水平上進(jìn)行，從而研究完善其主要作用機(jī)理。

綜上所述，日糧中添加1.6%的OKGM能改善齊口裂腹魚的生長性能，降低魚體粗脂肪含量，調(diào)節(jié)血脂水平。

[1] GRISDALE-HELLAND B, HELLAND S J, GATLIN D M. The effects of dietary supplementation with mannanoligosaccharide, fructooligosaccharide or galactooligosaccharide on the growth and feed utilization of Atlantic salmon (Salmo salar)[J]. Aquaculture, 2008, 283(1)∶ 163-167.

[2] SAJILATA M G, SINGHAL R S, KULKARNI P R. Resistant starch∶a review[J]. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, 2006, 5(1)∶ 1-17.

[3] 解萬翠, 曾恩輝, 楊錫洪, 等. 魔芋葡甘露聚糖改善冷凍蝦仁持水品質(zhì)的條件優(yōu)化[J]. 食品科學(xué), 2013, 34(11)∶ 134-137. doi∶ 10.7506/ spkx1002-6630-201311030.

[4] 別同玉, 許加生, 別同德. 抗性淀粉衛(wèi)生保健功能及膳食應(yīng)用研究進(jìn)展[J]. 現(xiàn)代預(yù)防醫(yī)學(xué), 2011, 38(23)∶ 4845-4854.

[5] 向梟, 周興華, 陳建. 飼料中豆粕蛋白替代魚粉蛋白對齊口裂腹魚幼魚生長性能、體成分及血清生化指標(biāo)的影響[J]. 水產(chǎn)學(xué)報, 2012, 36(5)∶ 723-730.

[6] 葉凌, 鄔應(yīng)龍. 響應(yīng)面法對漂白魔芋微粉制備工藝的優(yōu)化研究[J].食品科學(xué), 2008, 29(6)∶ 151-155.

[7] 王步樞, 鄔應(yīng)龍. 檸檬酸甘薯淀粉酯制備工藝優(yōu)化及性質(zhì)研究[J].食品科學(xué), 2012, 33(24)∶ 86-91.

[8] 段彪, 向梟, 周興華, 等. 齊口裂腹魚飼料中適宜脂肪需要量的研究[J].動物營養(yǎng)學(xué)報, 2007, 19(3)∶ 232-236.

[9] DIMITROGLOU A, MERRIFIELD D L, CARNEVALI O, et al. Microbial manipulations to improve fish health and production∶ a Mediterranean perspective[J]. Fish & Shellfish Immunology, 2011, 30(1)∶ 1-16.

[10] REZA A, ABDOLMAJID H, ABBAS M, et al. Effect of dietary prebiotic inulin on growth performance, intestinal microflora, body composition and hematological parameters of juvenile Beluga, Huso huso (Linnaeus, 1758)[J]. Journal of the World Aquaculture Society, 2009, 40(6)∶ 771-779.

[11] van HAI N, FOTEDAR R. Comparison of the effects of the prebiotics (Bio-Mos?and β-1,3-D-glucan) and the customised probiotics (Pseudomonas synxantha and P. aeruginosa) on the culture of juvenile western king prawns (Penaeus latisulcatus Kishinouye, 1896)[J]. Aquaculture, 2009, 289(3)∶ 310-316.

[12] ZHANG Liao, WU Yinglong, WANG Lei, et al. Effects of oxidized konjac glucomannan (OKGM) on growth and immune function of Schizothorax prenanti[J]. Fish & Shellfish Immunology, 2013, 35(4)∶1105-1110.

[13] 向世瓊, 鄔應(yīng)龍. RS4型抗性淀粉對齊口裂腹魚生長, 脂肪代謝及相關(guān)基因表達(dá)的影響[J]. 食品科學(xué), 2014, 35(7)∶ 223-228. doi∶ 10.7506/ spkx1002-6630-201407044.

[14] YE J D, WANG K, LI F D, et al. Single or combined effects of fructoand mannan oligosaccharide supplements and Bacillus clausii on the growth, feed utilization, body composition, digestive enzyme activity, innate immune response and lipid metabolism of the Japanese flounder Paralichthys olivaceus[J]. Aquaculture Nutrition, 2011, 17(4)∶ 902-911.

[15] XU Chengxiao, HAN Dong, ZHU Xiaoming, et al. Effect of dietary cornstarch levels on growth performance, enzyme activity and hepatopancreas histology of juvenile red swamp crayfish, Procambarus clarkii (Girard)[J]. Aquaculture, 2014, 426/427∶ 112-119.

[16] ANDREWS S R, SAHU N P, PAL A K, et al. Haematological modulation and growth of Labeo rohita fingerlings∶ effect of dietary mannan oligosaccharide, yeast extract, protein hydrolysate and chlorella[J]. Aquaculture Research, 2009, 41(1)∶ 61-69.

[17] G?LTEPE N, HISAR O, SALNUR S, et al. Preliminary assessment of dietary mannanoligosaccharides on growth performance and health status of gilthead seabream Sparus auratus[J]. Journal of Aquatic Animal Health, 2012, 24(1)∶ 37-42.

[18] ENES P, PANSERAT S, KAUSHIK S, et al. Growth performance and metabolic utilization of diets with native and waxy maize starch by gilthead sea bream (Sparus aurata) juveniles[J]. Aquaculture, 2008, 274(1)∶ 101-108.

[19] GATESOUPE F J, HUELVAN C, le BAYON N, et al. The effects of dietary carbohydrate sources and forms on metabolic response and intestinal microbiota in sea bass juveniles, Dicentrarchus labrax[J]. Aquaculture, 2014, 422∶ 47-53.

[20] ENES P, PANSERAT S, KAUSHIK S, et al. Effect of normal and waxy maize starch on growth, food utilization and hepatic glucose metabolism in European sea bass (Dicentrarchus labrax) juveniles[J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part A∶ Molecular & Integrative Physiology, 2006, 143(1)∶ 89-96.

[21] S?RENSEN M, PENN M, EL-MOWAFI A, et al. Effect of stachyose, raffinose and soya-saponins supplementation on nutrientdigestibility, digestive enzymes, gut morphology and growth performance in Atlantic salmon (Salmo salar, L.)[J]. Aquaculture, 2011, 314(1)∶ 145-152.

[22] GENC M A, YILMAZ E, GENC E, et al. Effects of dietary mannan oligosaccharides (MOS) on growth, body composition, and intestine and liver histology of the hybrid tilapia (Oreochromis niloticus x O. aureus)[J]. Israeli Journal of Aquaculture∶ Bamidgeh, 2007, 59(1)∶ 10-16.

[23] AKRAMI R. Effect of dietary mannan oligosaccharide on growth performance, survival, body composition and some hematological parameters of carp juvenile (Cyprinus carpio)[J]. Journal of Animal Science Advances, 2012, 2(11)∶ 879-885.

[24] THONGPRAJUKAEW K, KOVITVADHI U, KOVITVADHI S, et al. Effects of different modified diets on growth, digestive enzyme activities and muscle compositions in juvenile Siamese fighting fish (Betta splendens Regan, 1910)[J]. Aquaculture, 2011, 322/323∶ 1-9.

[25] YILMAZ E, GENCE M A, GENCE E. Effect of dietary mannan oligosaccharides on growth, body composition, intestine and liver histology of rainbow trout (Oncorhychus mykiss)[J]. The Israeli Journal of Aquaculture-Bamidgeh, 2007, 59∶ 182-188.

[26] 任鳴春. 軍曹魚和虹鱒糖類營養(yǎng)生理研究[D]. 青島∶ 中國海洋大學(xué), 2012∶ 28.

[27] EBIHARA K, SCHNEEMAN B O. Interaction of bile acids, phospholipids, cholesterol and triglyceride with dietary fibers in the small intestine of rats[J]. The Journal of Nutrition, 1989, 119(8)∶1100-1106.

[28] 尚曉婭, 高群玉, 楊連生. 抗性淀粉對糖、脂以及腸道代謝影響的研究[J]. 食品工業(yè)科技, 2005, 26(4)∶ 170-182.

[29] 張振龍. 果膠和木聚糖對中華絨螯蟹和黃顙魚生長、消化和腸道菌群的影響[D]. 蘇州∶ 蘇州大學(xué), 2014∶ 48-49.

[30] 孫立威, 文華, 蔣明, 等. 殼寡糖對吉富羅非魚幼魚生長性能、非特異性免疫及血液學(xué)指標(biāo)的影響[J]. 廣州海洋大學(xué)學(xué)報, 2011, 31(3)∶43-49.

[31] ENES P, POUS?O-FERREIRA P, SALMER?N C, et al. Effect of guar gum on glucose and lipid metabolism in white sea bream Diplodus sargus[J]. Fish Physiology and Biochemistry, 2013, 39(2)∶159-169.

[32] 王竹, 楊月欣, 周瑞華, 等. 抗性淀粉的代謝及對血糖的調(diào)節(jié)作用[J].營養(yǎng)學(xué)報, 2003, 25(2)∶ 190-195.

Effect of Two Kinds of Polysaccharides on Growth Performance, Body Compositions and Serum Biochemical Indices of Schizothorax prenanti Tchang

XIA Xiaojie, WU Yinglong*, FENG Jiao, ZENG Liping, WANG Hongjie, TANG Haolan
(College of Food Science, Sichuan Agricultural University, Ya’an 625014, China)

Objective∶ To investigate the effects ofwater-soluble oxidized konjac glucomannan (OKGM) and water-insoluble RS4-type resistant starchon growth performance, body composition and serum biochemical indices ofSchizothorax prenantiTchang (SPT). Methods∶ A total of four hundred and fifty healthy SPT with average body weight of (87.58±5.16) g were randomly divided into 5 groups with each group including 3 replicates of 30 fish. The control group (C) was fed with a basal diet without OKGM or RS4-type resistant starch, and the treatment groups OKGM1.6, OKGM3.2, RS41.6, and RS43.2were fed with the same basal diet supplemented with 1.6%and 3.2%of OKGM, and 1.6%and 3.2%of RS4-type res istant starch, respectively. The experiment lasted for 60 days. Growth performance, body composition and serum biochemical indices were measured. Results∶ Compared with the control group, the highest weight gain ratio (WGR), specific growth ratio (SGR) and protein efficiency ratio (PER) and the lowest feed conversion ratio (FCR) were obtained by dietary supplementation with 1.6%OKGM (P＜ 0.05). These four paramers were not significantly changed by dietary RS4-type resistant starch. The FCR was moderately reduced by dietary supplementation with 3.2%RS4-type resistant starch (P＜ 0.05). The crude protein content of muscle was increased by adding OKGM to the diet. The crude lipid content of muscle and hepatopancreas were minimized by 3.2%dietary OKGM (P＜ 0.05). The moisture and crude ash contents of muscle were not significantly affected by dietary OKGM or RS4-type resistant starch (P> 0.05). The serum concentration of triglyceride was significantly decreased and serum high density lipoprotein cholesterol (HDL-C) was significantly increased in OKGM1.6group (P＜ 0.05). Similarly, the serumconcentrations of total cholesterol and triglyceride were significantly decreased and serum HDL-C was increased in RS43.2group (P＜ 0.05). Conclusion∶ Dietary supplementation with 1.6%OKGM could ameliorate the growth performance of SPT, increase the PER, decrease the levels of crude lipid in muscle and hepatopancreas, and regulate serum biochemical indexes.

Schizothorax prenantiTchang;oxidized konjac glucomannan; RS4-type resistant starch; growth; body composition; serum biochemical indices

TS241.1

1002-6630（2015）17-0240-07

10.7506/spkx1002-6630-201517045

2014-10-29

四川農(nóng)業(yè)大學(xué)“211”工程雙支計劃項目（2013）

夏曉杰（1988—），女，碩士研究生，研究方向為功能性食品。E-mail：472269396@qq.com

*通信作者：鄔應(yīng)龍（1963—），男，教授，博士，研究方向為功能性食品。E-mail：wuyinglong99@163.com