宋雙雙,王 曉,杜金華,劉 峰,Dan Staerk,耿巖玲,崔 莉,*
(1.山東省分析測試中心,山東濟南 250014;2.山東農(nóng)業(yè)大學食品科學與工程學院,山東泰安 271018)
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不同品種皺皮木瓜過氧化物酶特性的比較研究
宋雙雙1,2,王 曉1,杜金華2,劉 峰1,Dan Staerk1,耿巖玲1,崔 莉1,*
(1.山東省分析測試中心,山東濟南 250014;2.山東農(nóng)業(yè)大學食品科學與工程學院,山東泰安 271018)
以不同品種的皺皮木瓜為原料,用Tris-HCl緩沖液提取過氧化物酶(POD),以愈創(chuàng)木酚-H2O2為底物,采用比色法對3個品種的皺皮木瓜POD酶學性質(zhì)進行了比較研究。結(jié)果顯示,品種YATS 066(A)、YATS153(B)、YATS251(C)的POD最適溫度分別為20、25、30℃,都在20℃以內(nèi)能較好的保持活性。三個品種的POD都有兩個最適pH,pH穩(wěn)定性范圍分別在7.5~9、3~6、3.5~7。金屬離子對A、B的影響基本相同。對三個品種的抑制能力最強的抑制劑是SDS,其次為抗壞血酸。
皺皮木瓜,過氧化物酶,酶學特性
皺皮木瓜又名湯木瓜、宣木瓜等,是薔薇科貼梗海棠[Chaenomelesspiciosa(Sweet)Nakai]的近成熟果實,主要產(chǎn)于安徽、浙江、湖北、四川等地[1],具有舒筋活絡,和胃化濕的功效[2]。由于含有多種氧化相關(guān)酶類,木瓜在生產(chǎn)加工過程中易發(fā)生褐變,嚴重的影響產(chǎn)品的感官品質(zhì)和食用價值。目前,皺皮木瓜的研究主要集中在化學成分、功能活性成分[3-5]以及揮發(fā)性成分[6]等方面,抗氧化相關(guān)酶類方面,相關(guān)報道主要有SOD酶的分離純化[7]、多酚氧化酶(PPO)的性質(zhì)研究[8]等,對于過氧化物酶(POD),僅見番木瓜中POD的純化及性質(zhì)研究[9],關(guān)于皺皮木瓜中POD的酶學特性的研究尚未見報道。
POD廣泛存在于動植物和微生物體內(nèi),是一種以血紅素為輔基的氧化酶[10],可催化由過氧化氫參與氧化各種還原劑的反應[11],是果實成熟和衰老的生理指標,催化酚類物質(zhì)、谷胱甘肽、抗壞血酸的氧化,從而參與果實酶促褐變,對果實的色澤及成分含量等造成不良影響,降低產(chǎn)品品質(zhì),因而在果實加工中需要對過氧化物酶進行防治,抑制或降低其酶活[12]。目前,對POD的純化及酶學性質(zhì)研究較廣泛,但是對于大部分原料,其不同品種間的POD酶學性質(zhì)的比較研究還較少。
本文通過研究不同品種的皺皮木瓜中POD的酶學性質(zhì),比較不同品種皺皮木瓜的POD的酶學特性差異,為進一步深入的研究POD的分子結(jié)構(gòu),進而指導生產(chǎn),提高皺皮木瓜加工產(chǎn)品的品質(zhì)等提供理論基礎(chǔ)。
1.1 材料與儀器
不同品種皺皮木瓜由山東亞特生態(tài)技術(shù)有限公司提供,-20℃貯藏,品種及編號見表1。
表1 不同品種皺皮木瓜的編號Table1 The serial number of different cultivars of Chaenomeles
Tris、谷胱甘肽(還原型) Klontech公司,分析純;濃鹽酸、愈創(chuàng)木酚、30% H2O2、聚乙烯吡咯烷酮、Triton X-100、磷酸一氫鈉、磷酸二氫鈉、硫酸鈉、氯化鈣、六水氯化鎂、七水硫酸鋅、四水氯化錳、氯化鉀、抗壞血酸、亞硫酸鈉、DTT、Kojic acid、吐溫-80、SDS、EDTA-2Na、Tropolone 國藥集團化學試劑有限公司,分析純;石英砂、偏重亞硫酸鈉 天津市科密歐化學試劑有限公司,分析純;檸檬酸、檸檬酸鈉 天津市光復科技發(fā)展有限公司,分析純。
GENESYS 10S UV-VIS紫外可見分光光度計 Thermo公司;HH-S2數(shù)顯恒溫水浴鍋 金壇市醫(yī)療儀器廠;Thermo Multifuge X1R離心機 Thermo公司;人工氣候箱 寧波萊??萍加邢薰尽?/p>
1.2 實驗方法
1.2.1 粗酶液的提取 取不同品種的皺皮木瓜果肉各10.00g,以1∶1.5料液比(20mmol/L Tris-HCl緩沖液 pH7.5)低溫下研磨,研磨液4℃ 10000r/min離心20min,上清液即為所需粗酶液,于4℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.2 POD活性的測定 測定溶液體系為pH7.5、20mmol/L Tris-HCl緩沖液3mL,其中2.95mL底物含有10mmol/L愈創(chuàng)木酚和10mmol/L H2O2,0.05mL酶液。于25℃條件下測定反應20min在470nm的吸光度變化值。以每分鐘每毫升反應體系OD值改變0.01為一個酶活力單位(U)[13]。
1.2.3 酶學性質(zhì)的測定
1.2.3.1 最適溫度和溫度穩(wěn)定性 將底物分別置于4、10、15、20、25、30、35、40、45、50、55℃的水浴鍋中保溫5min,加入不同品種皺皮木瓜的粗酶液,反應20min,于470nm下測定吸光度。以最適溫度的酶活性為100%,其余溫度下測定的酶活性與之的比值即為相對酶活性[5]。
不同品種皺皮木瓜的粗酶液分別保存于10、20、30、40℃,待20、40、60min取出于25℃反應20min,470nm測定酶活性[14]。以每個溫度下的初始酶活性為100%,不同時間測定的酶活性與之相比即為相對酶活性。
1.2.3.2 最適pH和pH穩(wěn)定性 測定不同品種皺皮木瓜的粗酶液在不同pH(pH3~5,檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液;pH5.5~7.5,磷酸一氫鈉-磷酸二氫鈉緩沖液;pH8~9,Tris-Hcl緩沖液)時的酶活性[15],每間隔0.5測酶活性。以最適條件下的酶活性為100%,其余pH條件下測定的酶活性與之的比值即為相對酶活性。
將不同品種皺皮木瓜的粗酶液分別在不同pH的緩沖液中4℃保存6h,于25℃反應20min,470nm測定酶活性。以最適條件下的酶活性為100%。
1.2.3.3 金屬離子的影響 分別配成終濃度為含有1、5、10mmol/L金屬離子的底物溶液,25℃條件下反應20min,測定酶活力,以不含金屬離子時的酶活力為100%,分析不同的金屬離子對POD酶活性的影響。
圖1 不同品種皺皮木瓜POD的最適溫度Fig.1 The optimum temperature of Chaenomeles peroxidase
1.2.3.4 底物濃度的影響 在25℃的條件下,分別改變愈創(chuàng)木酚和H2O2的濃度,470nm測定酶活性,采用雙倒數(shù)作圖法(Lineweaver-Burk法)[16],分別求出POD對于底物愈創(chuàng)木酚和H2O2的米氏常數(shù)。
1.2.3.5 抑制劑和表面活性劑的影響 將各種金屬離子及表面活性劑與底物混合成終濃度分別為1、5、10mmol/L的溶液,于25℃條件下反應20min,470nm測定酶活性。以不含金屬離子時的酶活性為100%。
1.2.4 數(shù)據(jù)處理方法 實驗數(shù)據(jù)用DPS v3.01專業(yè)版和Excel 2003處理。
2.1 POD最適溫度
溫度對酶促反應的影響很大,在最適溫度下,POD活性可以達到最大。POD活性與溫度的關(guān)系見圖1,溫度對品種B、C的影響相似,隨著溫度升高,POD活性均呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢,35℃以后下降較大,B的POD最適反應溫度為30℃,C的最適作用溫度為40℃,而品種A的溫度影響趨勢則不同,在低于35℃條件下酶活性均較高,之后迅速降低,最適反應溫度為25℃。
2.2 溫度穩(wěn)定性
如圖2所示,三個品種的POD在10、20℃保存60min,都能較好的保持活性,而在30℃保存60min后,品種A損失大約70%的酶活性,品種B和C損失約60%酶活性。在40℃保存20min之后,三個品種的POD均失活。可見三個品種皺皮木瓜的POD受溫度的影響均較大,穩(wěn)定性較差。
圖2 不同品種皺皮木瓜POD的溫度穩(wěn)定性Fig.2 Temperature stability of Chaenomeles peroxidase
2.3 最適pH
由圖3可以看出,每個品種的POD都有兩個最適pH,其中一個最適pH在三個品種中均為5,品種A的另一個最適pH大約在7左右,品種B的另一個最適pH為6,品種C的另一個最適pH為6.5,該性質(zhì)與番木瓜中POD的性質(zhì)相似,其最適pH也有兩個,分別為5.5和6.0[17]。
圖3 不同品種皺皮木瓜POD的最適pHFig.3 The optimum pH of Chaenomeles peroxidase
2.4 pH穩(wěn)定性
由圖4可以看出,三個品種的POD的pH穩(wěn)定性差別很大。品種A的POD的活性隨著pH的增大而逐漸增強;而B的POD活性隨pH的增大呈現(xiàn)降低趨勢,在pH9時保存6h之后,酶活性可損失60%。品種C的POD活性受pH影響不大,在酸性條件下較穩(wěn)定,略高于堿性條件下,但堿性條件下的穩(wěn)定性也高于B。
圖4 不同品種皺皮木瓜POD的pH穩(wěn)定性Fig.4 pH stability of Chaenomeles peroxidase
2.5 不同金屬離子的影響