周 瑜,曾艷平,周 琴,關(guān)景霞,盧祖能
單純皰疹病毒性腦炎(herpes simplex encephalitis,HSE)是臨床上常見的中樞神經(jīng)系統(tǒng)感染疾病,導(dǎo)致腦組織出血壞死性損害,神經(jīng)功能障礙較嚴(yán)重,但其具體的病理機(jī)制尚不明確。研究發(fā)現(xiàn),小膠質(zhì)細(xì)胞激活介導(dǎo)的繼發(fā)性免疫損傷在其中起著關(guān)鍵的作用[1,2]。在腦損傷的各種病理因素中,基質(zhì)金屬蛋白酶(MMPs)的作用受到廣泛關(guān)注,MMPs,尤其是MMP-9 可以促進(jìn)腦組織毛細(xì)血管破壞,導(dǎo)致腦組織繼發(fā)性腦水腫和腦出血[3,4]。MMP-9 在HSE 發(fā)病機(jī)制中的作用尚不清楚,本實(shí)驗(yàn)探討HSE 中MMP-9 的表達(dá)及其對血腦屏障的影響。
1.1 材料
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動物 3 周齡Balb/c 雄性小鼠95只,體重11~13 g,購自湖北省實(shí)驗(yàn)動物中心。
1.1.2 主要試劑 HSV-1 病毒和Vero 細(xì)胞由華中科技大學(xué)武漢協(xié)和醫(yī)院中心實(shí)驗(yàn)室病毒室惠贈,H-DMEM 培養(yǎng)基、新生牛血清購自Gibco 公司,胰酶(Trypsin)購自美國AMRESCO 公司,抗體均購自美國eBioscience 公司,BB-94 購自British Biotech Pharmaceuticals 公司,明膠(gelatin)購自美國Sigma公司。
1.1.3 主要儀器 超凈工作臺(蘇州凈化設(shè)備廠),臺式高速離心機(jī)(上海醫(yī)用分析儀器廠),CO2恒溫細(xì)胞培養(yǎng)箱(美國Napco 5410-220),低溫離心機(jī)(美國Beckman 公司),微量加樣器(美國基爾森公司),低溫冰柜(日本MDF-382E),恒溫水浴箱(重慶萬達(dá)有限公司),解剖剪、鑷(上海醫(yī)療儀器廠),血細(xì)胞計數(shù)板(西安化學(xué)試劑廠),相差顯微鏡(日本Olympus),激光掃描共聚焦顯微鏡(Olympus Fluoview FV500 Imaging System),6、24 孔培養(yǎng)板(美國Gibco 公司),一次性細(xì)胞培養(yǎng)瓶(美國Corning-Costar 公司)。
1.2 方法
1.2.1 病毒的滴定 HSV-1 病毒通過Vero 細(xì)胞中培養(yǎng)增殖后收集上清液,用維持液[含5%(體積分?jǐn)?shù))新生牛血清的DMEM 培養(yǎng)基]10 倍系列稀釋,Vero 細(xì)胞于96 孔板中長成單層細(xì)胞,接種系列稀釋的病毒液,對照孔和感染病毒孔均加入100 μl維持液。37 ℃、5%(體積分?jǐn)?shù))CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱孵育。每天觀察并記錄出現(xiàn)細(xì)胞病變(細(xì)胞折光性增強(qiáng)、細(xì)胞變大變圓或融合性病變)的孔數(shù)。細(xì)胞病變不再發(fā)展時,經(jīng)Reed-Muench 法計算TCID50 病毒滴度為10~5/20 μl,選擇100 倍TCID50 病毒滴度10~3/20 μl 接種小鼠。
1.2.2 實(shí)驗(yàn)分組 實(shí)驗(yàn)小鼠20 只分為對照組和病毒組各10 只,觀察14 d 內(nèi)小鼠的發(fā)病情況及存活率,留取腦組織行病理切片。30 只隨機(jī)分為對照組和病毒組,每組15 只,用于明膠酶譜及免疫熒光共聚焦檢測。另取45 只小鼠分為對照組、病毒組、BB-94 處理組各15 只,用于腦組織水含量及血腦屏障通透性分析。
1.2.3 動物模型 按體質(zhì)量3.5 ml/kg 予小鼠10%(體積分?jǐn)?shù))水合氯醛腹腔注射麻醉后,從右側(cè)眼外眥與外耳道口連線中點(diǎn)處進(jìn)針2~3 mm,向顱內(nèi)注入HSV-1 制造HSE 模型。對照組注入細(xì)胞培養(yǎng)上清液20 μl,病毒組注入病毒液20 μl,BB-94處理組在注入病毒液20 μl 后12 h 給予BB-94(30 mg/kg)腹腔注射。
1.2.4 腦組織MMP-9 及MMP-2 明膠酶譜檢測 分別于感染后第3 天、第7 天,每組小鼠取3 只深度麻醉后斷頭,取腦組織約0.2 g 在1 ml 冷勻漿緩沖液中勻漿,超聲20 s 后,4 ℃12 000 ×g,離心15 min,收集上清,考馬斯亮藍(lán)法測定各樣品中蛋白含量,隨后上樣于含1 mg/ml 明膠的10% SDSPAGE,電泳。電泳后,凝膠在50 mmol/L Tris-HCl buffer (pH 7.6,2.5% Triton X-100,5 mmol/L CaCl2,1 μmol/L ZnCl2)中漂洗兩次,每次45 min;之后在50 mmol/L Tris-HCl buffer (pH 7.6,5 mmol/L CaCl2,1 μmol/L ZnCl2)中再漂洗兩次,每次30 min;在孵育液[50 mmol/L Tris-HCl (pH 7.6),5 mmol/L CaCl2,1 μmol/L ZnCl2,0.02% Brij-35]中于37 ℃孵育42 h,使上樣液電泳后條帶中的金屬蛋白酶充分降解凝膠中的明膠底物,之后凝膠經(jīng)考馬斯亮蘭R-250 染色3 h,然后脫色,即可見在相應(yīng)質(zhì)量金屬蛋白酶所在條帶明膠降解處,為白色透明條帶,而其余凝膠背景為藍(lán)色。利用激光掃描光密度分析法半定量分析掃描條帶。
1.2.5 腦組織MMP-9 免疫熒光共聚焦檢測感染后第3 天,取3 只病毒組小鼠深度麻醉后斷頭,取右側(cè)大腦半球行冰凍切片,3% BSA(用TBS 稀釋)于室溫下封閉1 h;傾去封閉液,按1∶ 100 稀釋比加入一抗200 μl (兔抗OX-42 IgG,一抗稀釋液為含3% BSA 的TBS,pH 7.2,含0.02% NaN3),37 ℃孵育60 min,PBS(含0.3% TritonX-100)沖洗5 min×3;滴加熒光素標(biāo)記的二抗(1%BSA-PBS 1∶ 100稀釋)200 μl,37 ℃孵育45 min,PBS 沖洗5 min×3;滴加三抗200 μl(羊抗MMP-9 IgG,稀釋比為1 ∶100)和熒光素標(biāo)記的四抗200 μl(1% BSA-PBS 1∶100 稀釋)并重復(fù)上述孵育及PBS 沖洗步驟。異硫氰酸熒光素(FITC,顯綠色熒光)標(biāo)記OX-42,Cy3 熒光素(顯紅色熒光)標(biāo)記MMP-9。甘油封片,激光共聚焦顯微鏡下觀察。
1.2.6 腦組織含水量檢測 病毒感染后第3天、第7 天,將各組小鼠各3 只深度麻醉后斷頭,取右側(cè)大腦半球,精密電子天平稱濕重(wwt);置80 ℃烤箱中,連續(xù)烘烤48 h 至恒重(最后兩次質(zhì)量差≤0.2 mg)后稱干重(dw)。按Elliott 公式計算腦組織含水量(%)。腦組織含水量(%)=(wwt -dw)/wwt×100%。
1.2.7 腦組織血腦屏障通透性的測定 各組鼠3 只在相應(yīng)時間點(diǎn)麻醉后,經(jīng)尾靜脈注入4% EB(160 mg/kg),觀察小鼠眼球結(jié)膜、四肢,于注射后幾秒鐘變藍(lán),表明注入成功。2 h 后開胸通過左心室灌注生理鹽水,直至右心房流出無色液體。斷頭取右側(cè)大腦半球,稱重后加入2 ml 甲酰胺,54 ℃恒溫水浴箱中,孵育24 h。將溶有EB 的甲酰胺溶液過濾,用分光光度計(λ=610 nm)檢測光密度值。根據(jù)EB 標(biāo)準(zhǔn)曲線計算腦組織EB 含量(ng/mg)。
1.3 統(tǒng)計學(xué)分析 采用SPSS 13.0 統(tǒng)計軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,采用One-Way ANOVA 法進(jìn)行檢驗(yàn)。數(shù)據(jù)均以均數(shù)± 標(biāo)準(zhǔn)差(χ ± s)表示,以P <0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 小鼠生存狀況 各組小鼠在HSV-1 感染后14 d 內(nèi)作生存率觀察,對照組至第14 天結(jié)束時均存活,病毒組小鼠于病毒感染后第3 天開始發(fā)病,表現(xiàn)為消瘦、聳毛、蜷縮、肢體麻痹、低反應(yīng)性、衰竭和死亡。感染后第5~6 天癥狀達(dá)高峰,并多于2 d內(nèi)死亡,14 d 結(jié)束時病死率為100%。
2.2 HSV-1 感染后腦組織MMP-9、MMP-2 表達(dá)活性 明膠酶譜實(shí)驗(yàn)顯示,在相對分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)92 kb、72 kb 處均出現(xiàn)明顯的透明酶解帶,分別為MMP-9、MMP-2 對應(yīng)條帶。對條帶進(jìn)行掃描分析(條帶吸收峰值),結(jié)果以對照組腦組織明膠酶活性水平標(biāo)準(zhǔn)化,分析數(shù)據(jù)顯示,HSV-1 病毒感染后3 d和7 d,腦組織中有較高M(jìn)MP-9 活性水平,分別為對照組的1.98 ±0.22、2.18 ±0.16 倍。而腦組織中MMP-2 活性水平在病毒感染后無顯著改變(見圖1A、1B)。
2.3 免疫熒光觀察腦組織MMP-9 表達(dá) 免疫熒光共聚焦顯示,MMP-9 主要在OX-42 陽性細(xì)胞中表達(dá),表明單純皰疹病毒性腦炎中激活的小膠質(zhì)細(xì)胞是MMP-9 的主要來源(見圖2)。
2.4 病毒感染后腦組織水含量及血腦屏障通透性的變化 HSV-1 感染后破壞血腦屏障,與對照組比較,腦組織水含量與血腦屏障通透性在感染后第3 天和第7 天均顯著增加(P <0.05),MMP-9 抑制劑BB-94 處理組可見血腦屏障通透性較病毒組降低,腦組織水含量亦下降(見表1)。
表1 腦組織血腦屏障通透性及水含量的變化(,n=3)
表1 腦組織血腦屏障通透性及水含量的變化(,n=3)
注:與對照組比較* P <0.05;與病毒組比較#P <0.05
圖1 HSV-1 感染后腦組織MMP-9、MMP-2 表達(dá)活性與對照組比較* P <0.01
HSV-1 所致單純皰疹病毒性腦炎目前病死率仍高達(dá)20%,半數(shù)以上的患者常遺留嚴(yán)重的神經(jīng)功能缺損[5]。研究發(fā)現(xiàn),HSV-1 主要從兩個方面造成神經(jīng)損害:(1)病毒復(fù)制增殖直接造成神經(jīng)細(xì)胞和神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞的損害;(2)病毒激活了顱內(nèi)的免疫炎癥過程,并不斷擴(kuò)大,引起腦組織的免疫病理損傷,包括腦水腫、顱內(nèi)壓增高和出血壞死。HSE 患者長期存在免疫激活反應(yīng),與患者不良的預(yù)后和嚴(yán)重后遺癥相關(guān)[6],即使早期給予抗病毒治療,預(yù)后仍不佳。因此,較之病毒的直接損害作用,病毒感染后繼發(fā)的炎性反應(yīng)在病理過程中可能起著關(guān)鍵作用。
單純皰疹病毒性腦炎后血腦屏障破壞導(dǎo)致腦炎后腦水腫、顱內(nèi)高壓及相關(guān)并發(fā)癥的產(chǎn)生,直接影響到患者的生存率和神經(jīng)功能的恢復(fù)?;|(zhì)金屬蛋白酶(MMPs)破壞血腦屏障、影響神經(jīng)血管單位的完整性,在促進(jìn)炎性損害過程中起著重要的作用[7,8]。神經(jīng)血管基質(zhì)的破壞,外周炎性細(xì)胞侵入中樞神經(jīng)系統(tǒng),可進(jìn)一步觸發(fā)腦血管并發(fā)癥,加重繼發(fā)性病理損傷[9]。Ⅳ型膠原、層粘連蛋白以及纖維結(jié)合素是血管細(xì)胞外基質(zhì)骨架的主要組成部分,基質(zhì)金屬蛋白酶中明膠酶A(MMP-2)和明膠酶B(MMP-9)是破壞血腦屏障的主要成分,在病毒性腦膜炎患者腦脊液及血清中MMP-9 水平均增加[10,11]。但MMPs 在單純皰疹病毒性腦炎病理損傷中的作用尚不明確。
本研究發(fā)現(xiàn),在病毒感染后第3 天,即單純皰疹病毒性腦炎早期,MMP-9 表達(dá)明顯增高,到第7 天時活性水平更高,相應(yīng)的血腦屏障的通透性增高,腦組織水含量增加,腦水腫加重。但MMP-2 的表達(dá)在病毒感染后第3 天、第7 天并未見明顯改變。表明單純皰疹病毒性腦炎中,MMP-9 而非MMP-2 在其病理機(jī)制中發(fā)揮重要作用。進(jìn)一步我們觀察到使用MMP-9 抑制劑BB-94 組小鼠腦組織EB 含量及水含量均較病毒組明顯降低,說明BB-94 可以保護(hù)血腦屏障的通透性,從而減輕腦水腫。
圖2 腦組織MMP-9、OX-42 免疫熒光共聚焦
小膠質(zhì)細(xì)胞作為存在于腦中的單核細(xì)胞,被認(rèn)為具有抗原提呈、分泌細(xì)胞因子及吞噬作用,在多種病毒性腦炎中的作用受到日益關(guān)注[12]。小膠質(zhì)細(xì)胞激活在病毒性腦炎中具有雙重作用(抗病毒或免疫損傷),在HSE 中病毒可促發(fā)小膠質(zhì)細(xì)胞產(chǎn)生一系列強(qiáng)有力的免疫炎性反應(yīng),但并不能保護(hù)小鼠的發(fā)病與死亡[13]。HSV-1 可通過Toll 樣受體2(Tolllike receptor 2,TLR-2)誘發(fā)顱內(nèi)的炎性反應(yīng),TLR-2基因敲除小鼠病毒感染后炎癥因子表達(dá)減少,并顯著提高了小鼠的存活率[14]。本實(shí)驗(yàn)中我們發(fā)現(xiàn)MMP-9 主要在OX-42 陽性細(xì)胞中表達(dá),表明激活的小膠質(zhì)細(xì)胞是MMP-9 的主要來源。我們推測病毒感染后激活腦內(nèi)小膠質(zhì)細(xì)胞,表達(dá)MMP-9 及系列炎性因子,破壞腦實(shí)質(zhì)的神經(jīng)血管基質(zhì)結(jié)構(gòu),形成典型的出血壞死性病理改變。
通過本實(shí)驗(yàn)的初步研究表明,小膠質(zhì)細(xì)胞激活表達(dá)的MMP-9 在單純皰疹病毒性腦炎發(fā)病機(jī)制中起著重要作用,通過抑制MMP-9 的表達(dá)有可能為治療單純皰疹病毒性腦炎提供新的治療策略。
[1]Wang JP,Bowen GN,Zhou S,et al.Role of specific innate immune responses in herpes simplex virus infection of the central nervous system[J].J Virol,2012,86(4):2273-2281.
[2]Conrady CD,Zheng M,van Rooijen N,et al.Microglia and a functional type I IFN pathway are required to counter HSV-1-driven brain lateral ventricle enlargement and encephalitis[J].J Immunol,2013,190(6):2807-2817.
[3]Vilalta A,Sahuquillo Barris J,Poca MA.Matrix metaloproteinases inneurological brain lesions:a new therapeutic target[J].Rev Neurol,2010,51(2):95-107.
[4]Min H,Hong J,Cho IH,et al.TLR2-induced astrocyte MMP9 activation compromises the blood brain barrier and exacerbates intracerebral hemorrhage in animal models[J].Mol Brain,2015,8:23.
[5]Andrei G,Snoeck R.Herpes simplex virus drug-resistance:new mutations and insights[J].Curr Opin Infect Dis,2013,26(6):551-560.
[6]Marques CP,Cheeran MC,Palmquist JM,et al.Prolonged microglial cell activation and lymphocyte infiltration following experimental herpes encephalitis[J].J Immunol,2008,181(9):6417-6426.
[7]Cunningham LA,Wetzel M,Rosenberg GA.Multiple roles for MMPs and TIMPs in cerebral ischemia[J].Glia,2005,50 (4):329-339.
[8]Yang Y,Thompson JF,Taheri S,et al.Early inhibition of MMP activity in ischemic rat brain promotes expression of tight junction proteins and angiogenesis during recovery[J].J Cereb Blood Flow Metab,2013,33(7):1104-1114.
[9]Sashindranath M,Sales E,Daglas M,et al.The tissue-type plasminogen activator-plasminogen activator inhibitor 1 complex promotes neurovascular injury in brain trauma:evidence from mice and humans[J].Brain,2012,135(11):3251-3264.
[10]Candelario-Jalil E,Yang Y,Rosenberg GA.Diverse roles of matrix metalloproteinases and tissue inhibitors of metalloproteinases in neuroinflammation and cerebral ischemia[J].Neuroscience,2009,158(3):983-994.
[11]Kolb SA,Lahrtz F,Paul R,et al.Matrix metalloproteinases and tissue inhibitors of metalloproteinases in viral meningitis:upregulation of MMP-9 and TIMP-1 in cerebrospinal fluid[J].J Neuroimmunol,1998,84(2):143-150.
[12]Hanisch UK,Kettenmann H.Microglia:active sensor and versatile effector cells in the normal and pathologic brain[J].Nat Neurosci,2007,10(11):1387-1394.
[13]Lundberg P,Ramakrishna C,Brown J,et al.The immune response to herpes simplex virus type 1 infection in susceptible mice is a major cause of central nervous system pathology resulting in fatal encephalitis[J].J Virol,2008,82(14):7078-7088.
[14]Kurt-Jones EA,Chan M,Zhou S,et al.Herpes simplex virus 1 interaction with Toll-like receptor 2 contributes to lethal encephalitis[J].Proc Natl Acad Sci USA,2004,101(5):1315-1320.