周媛媛,曾凡軍,熊曉琦,阮玉姝,萬(wàn)曉蓉,宋新宇
(三峽大學(xué)第一臨床醫(yī)學(xué)院宜昌市中心人民醫(yī)院,湖北宜昌443000)
肺性腦病是慢性阻塞性肺疾病(COPD)患者嚴(yán)重的并發(fā)癥,病死率高達(dá)60%左右[1]。其發(fā)病機(jī)制尚未完全闡明,神經(jīng)元自噬可能是其發(fā)病機(jī)制之一,β-葡糖腦苷酶(β-GBA)、Atg7、p62為神經(jīng)元自噬相關(guān)標(biāo)志物[2]。2012年1月~2014年1月,我們觀察了肺性腦病患者腦脊液β-GBA、Atg7、p62水平變化,并探討其臨床意義。現(xiàn)報(bào)告如下。
1.1 臨床資料 宜昌市中心人民醫(yī)院收治的COPD合并肺性腦病者50例(觀察組)及單純COPD患者50例(對(duì)照組),均符合中華醫(yī)學(xué)會(huì)呼吸病學(xué)會(huì)COPD診斷標(biāo)準(zhǔn)[3];排除合并結(jié)核性胸膜炎、病毒或寄生蟲(chóng)感染者,既往有中樞神經(jīng)系統(tǒng)損害及惡性腫瘤患者。觀察組男33例、女17例,年齡(66.8± 6.3)歲;合并消化道出血2例、代謝紊亂8例。對(duì)照組男29例、女21例,年齡(67.2±7.1)歲;合并消化道出血1例、代謝紊亂2例。兩組基本資料具有可比性,患者或家屬簽署知情同意書(shū),并經(jīng)宜昌市中心人民醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)。
1.2 方法
1.2.1 檢測(cè)方法 患者均行腰椎穿刺采集腦脊液,離心后采用ELISA法檢測(cè)β-GBA、Atg7蛋白,試劑盒購(gòu)自美國(guó)SIGMA公司,按說(shuō)明操作。Western blot法檢測(cè)p62蛋白:運(yùn)用全蛋白提取試劑盒提取兩組細(xì)胞蛋白,-80℃凍存?zhèn)溆谩?0%的SDS-PAGE膠分離相應(yīng)蛋白,采用濕法轉(zhuǎn)膜45 min,5%脫脂奶粉封閉1 h后加入1∶1 000稀釋的兔抗人p62一抗,4℃孵育過(guò)夜,次日PBS洗膜后加入稀釋比例為1∶5 000的山羊抗兔二抗,室溫孵育1 h,PBS洗膜后行ECL發(fā)光。選用β-actin蛋白為內(nèi)參蛋白對(duì)照,以蛋白灰度值表示其表達(dá)量。
1.2.2 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS13.0統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)量資料用s表示,兩組比較用t檢驗(yàn)。P≤0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
兩組腦脊液β-GBA、Atg7、p62水平比較,見(jiàn)表1。
表1 兩組腦脊液β-GBA、Atg7、p62水平比較(s)
表1 兩組腦脊液β-GBA、Atg7、p62水平比較(s)
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05。
組別 n β-GBA(pg/mL) Atg7(pg/mL)p62觀察組 50 34.6±6.8* 12.4±3.2*0.35±0.05對(duì)照組50 15.5±3.6 2.8±0.6 0.23±0.03
COPD患者合并感染時(shí)常會(huì)出現(xiàn)低氧及CO2潴留,極易并發(fā)肺性腦病,患者常表現(xiàn)為淡漠、反應(yīng)遲鈍、嗜睡、譫妄或昏迷等意識(shí)障礙。
肺性腦病發(fā)生、發(fā)展過(guò)程中,缺氧是核心因素。神經(jīng)元缺氧可致自噬死亡或凋亡。長(zhǎng)期以來(lái),自噬被認(rèn)為是神經(jīng)元的一種保護(hù)性作用,在維持缺血、缺氧等應(yīng)激狀態(tài)下細(xì)胞存活、清除細(xì)胞內(nèi)衰老細(xì)胞器及錯(cuò)誤折疊蛋白中起重要作用。近年發(fā)現(xiàn),在某些條件下細(xì)胞自噬也能導(dǎo)致細(xì)胞死亡。自噬作為一種重要的物質(zhì)代謝方式,它的發(fā)生受到嚴(yán)格的調(diào)節(jié)和控制。自噬的調(diào)控通路可分為mTOR調(diào)節(jié)途徑和mTOR途徑不依賴(lài)性調(diào)節(jié)途徑[4]。在缺血缺氧情況下,自噬的發(fā)生主要由mTOR途徑調(diào)控。p62與自噬密切相關(guān),p62偶聯(lián)于微管相關(guān)蛋白輕鏈3,參與自噬體的構(gòu)成,是一種調(diào)節(jié)因子,在自噬中、晚期會(huì)降解[5]。通常情況下,細(xì)胞內(nèi)p62表達(dá)水平與自噬活性存在負(fù)相關(guān)。例如,在饑餓誘導(dǎo)的細(xì)胞自噬缺陷狀態(tài)下,Mizushima等[6]觀察到p62的蓄積。研究證實(shí),細(xì)胞內(nèi)p62的表達(dá)水平與多種自噬相關(guān)因子關(guān)系密切[7],但細(xì)胞自噬不是p62惟一的降解途徑[8]。本研究發(fā)現(xiàn),COPD合并肺性腦病患者,腦脊液中p62蛋白水平顯著增高,表明肺性腦病患者中樞神經(jīng)元自噬增強(qiáng)。自噬增強(qiáng)有助于提高在缺氧及CO2潴留的病理狀態(tài)下,提高神經(jīng)元對(duì)缺氧及高CO2致?lián)p傷的耐受力,起到一定的保護(hù)性效應(yīng)。
β-GBA是一種水解酶,存在于溶酶體內(nèi)。最初發(fā)現(xiàn)與戈謝病相關(guān),基因突變導(dǎo)致β-GBA減少或缺乏,致使巨噬細(xì)胞內(nèi)的葡萄糖腦苷脂不能被水解,蓄積在溶酶體中,導(dǎo)致細(xì)胞功能受到影響。隨后發(fā)現(xiàn),β-GBA與帕金森病相關(guān)[9]。本研究發(fā)現(xiàn),β-GBA與肺性腦病相關(guān),肺性腦病患者,腦脊液中β-GBA水平升高。由于自噬與溶酶體相關(guān),肺性腦病誘發(fā)的自噬效應(yīng),是否與β-GBA有直接或間接關(guān)系,尚需進(jìn)一步研究。
目前,研究發(fā)現(xiàn)自噬體的形成至少需要16種Atg基因的參與。Atg1是第一個(gè)被成功克隆的自噬基因[10],Atg1缺乏時(shí)自噬發(fā)生受到抑制[11]。Atg7是一種泛素E1樣連接酶,可以激活泛素樣蛋白Atg12和Atg8。Atg7可以激活哺乳動(dòng)物中的所有3種Atg8,即GATE-16、GABARAP和LC3。自噬體的形成需要一個(gè)泛素樣連接體系,其中Atg12和Atg5共價(jià)結(jié)合,并定位到自噬體囊泡中。Atg7是泛素樣蛋白通路中位置上游的關(guān)鍵基因,為自噬泡形成的必需蛋白質(zhì)分子[12]。有研究證實(shí),在阻斷小鼠L929細(xì)胞中Atg7的表達(dá)后,可以顯著降低自噬性細(xì)胞死亡的發(fā)生率[13]。本研究發(fā)現(xiàn),肺性腦病患者腦脊液Atg7水平顯著升高,可能是神經(jīng)元損傷后部分神經(jīng)元裂解后蛋白釋放到蛛網(wǎng)膜中。
綜上所述,COPD肺性腦病患者腦脊液β-GBA、Atg7、p62蛋白水平升高,而Atg7及其參與的泛素樣蛋白通路可能是肺性腦病患者神經(jīng)元自噬發(fā)生的一條重要通路。通過(guò)這一研究,我們可更進(jìn)一步了解肺性腦病神經(jīng)元自噬發(fā)生的分子機(jī)制,從而為肺性腦病的診治尋找到新靶點(diǎn)。
[1]Pauwels RA,Buist AS,Calverley PM,et al.Global strategy for the diagnosis,management,and prevention of chronic obstructive pulmonary disease.NHLBI/WHO Global Initiative for Chronic Obstructive Lung Disease(GOLD)Workshop summary[J].Am J Respir Crit Care Med,2001,163(5):1256-1276.
[2]Castino R,Davies J,Beaucourt S,et al.Autophagy is a prosurvival mechanism in cells expressing an autosomal dominant familial neurohypophyseal diabetes insipidus mutant vasopressin transgene[J].FASEB J,2005,19(8):1021-1023.
[3]中華醫(yī)學(xué)會(huì)呼吸病學(xué)分會(huì)慢性阻塞性肺疾病學(xué)組.慢性阻塞性肺疾病診治指南(2007修訂版)[J].中華結(jié)核和呼吸雜志,2007,30(1):8-17.
[4]Meijer AJ,Codogno P.Signalling and autophagy regulation in health,aging and disease[J].Mol Aspects Med,2006,27(5-6): 411-425.
[5]Kirkin V,McEwan DG,Novak I,et al.A role for ubiquitin in selective autophagy[J].Mol Cell,2009,34(3):259-269.
[6]Mizushima N,Yoshimori T.How to interpret LC3 immunoblotting[J].Autophagy,2007,3(6):542-545.
[7]Bjorkoy G,Lamark T,Brech A,et al.p62/SQSTM1 forms protein aggregates degraded by autophagy and has a protective effect on huntingtin-induced cell death[J].J Cell Biol,2005,171(4): 603-614.
[8]He C,Klionsky DJ.Regulation mechanisms and signaling pathways of autophagy[J].Annu Rev Genet,2009(43):67-93.
[9]Lwin A,Orvisky E,Goker-Alpan O,et al.Glucocerebrosidase mutations in subjects with parkinsonism[J].Mol Genet Metab,2004,81(1):70-73.
[10]Matsuura A,Tsukada M,Wada Y,et al.Apg1p,a novel protein kinase required for the autophagic process in Saccharomyces cerevisiae[J].Gene,1997,192(2):245-250.
[11]Jung CH,Jun CB,Ro SH,et al.ULK-Atg13-FIP200 complexes mediate mTOR signaling to the autophagy machinery[J].Mol Biol Cell,2009,20(7):1992-2003.
[12]Komatsu M,Waguri S,Ueno T,et al.Impairment of starvation-induced and constitutive autophagy in Atg7-deficient mice[J].J Cell Biol,2005,169(3):425-434.
[13]Yu L,Alva A,Su H,et al.Regulation of an ATG7-beclin 1 program of autophagic cell death by caspase-8[J].Science,2004,304(5676):1500-1502.