王艷+苗立中+付強+莊金秋+沈志強
摘要:為進一步了解鴨疫里默氏桿菌的生長特性,本研究利用改良酵母肉湯培養(yǎng)基運用正交設計的方法,在10L的小型發(fā)酵罐中對鴨疫里默氏桿菌各種發(fā)酵條件進行了優(yōu)化。隨后將優(yōu)化結果在GMP生產(chǎn)車間,利用200L大型發(fā)酵罐規(guī)?;嚿a(chǎn)3批鴨疫里默氏桿菌抗原進行驗證,結果顯示,鴨疫里默氏桿菌活菌數(shù)比優(yōu)化前提高30%,為鴨疫里默氏桿菌產(chǎn)業(yè)化奠定了基礎。
關鍵詞:鴨疫里默氏桿菌;發(fā)酵條件;大罐發(fā)酵
中圖分類號:S858.325.1+2 ? ? ?文獻標識碼:B ? ? ?文章編號:1673-1085(2014)05-0036-04
鴨疫里默氏桿菌(Riemerella anatipestifer RA)感染是全世界養(yǎng)鴨業(yè)的一種主要疾病。該病以病鴨死亡率高、消瘦、胴體淘汰、品質下降等造成巨大經(jīng)濟損失[1]。迄今為止,該病的防治主要有藥物防治及疫苗接種兩種方法[2],作為預防鴨疫里默氏桿菌病的有效措施,疫苗正在得到廣泛的應用[3]。在疫苗的制備過程中,菌體的濃度直接關系到疫苗質量的好壞和免疫保護效果。所以改善RA的培養(yǎng)條件,提高有效成分濃度對制苗非常重要。高密度發(fā)酵作為近年來新興產(chǎn)業(yè),可有效提高抗原產(chǎn)量和培養(yǎng)基的利用率,大幅度降低生產(chǎn)成本,顯著縮短生產(chǎn)周期,減少勞動強度,提高生產(chǎn)效率[4],為鴨疫里默氏桿菌滅活疫苗的生產(chǎn)提供了一種新的有效可行的抗原制備工藝。本研究旨在通過鴨疫里默氏桿菌發(fā)酵培養(yǎng)條件優(yōu)化達到菌液濃度最大化的目的,為研制高效疫苗打好基礎。
1 ?材料與方法
1.1 ?材料
1.1.1 ?試驗用菌株 ?菌株來源:鴨疫里默氏桿菌JX-2株,血清Ⅱ型,分離自北京金星鴨場病死鴨,并由山東綠都生物科技公司菌種室保存。
1.1.2 ?發(fā)酵培養(yǎng)基 ?改良酵母肉湯:大豆蛋白胨5g,水解乳蛋白8g,20%酵母浸液50ml,氯化鈉1.5g,豬胃消化液100ml,加蒸餾水至1000ml;116℃高壓滅菌20min,使用前加入5%馬血清。
1.1.3 ?主要儀器和試劑 ?SBA-40E型雙光束紫外分光光度計(Cecil);GUJS-10C型和GUJS-200C型發(fā)酵罐(鎮(zhèn)江東方生物);SHZ-82A型氣浴恒溫振蕩器(江蘇金壇中大);消泡劑;豆油。
1.2 ?方法
1.2.1 ?菌種復蘇 ?取凍干保存的鴨疫里默氏桿菌JX-2株,用2ml馬丁肉湯稀釋、混勻,接種于改良酵母肉湯中,37℃振蕩培養(yǎng)18~24h,取樣劃線接種于改良酵母固體培養(yǎng)基平板,置厭氧罐中,37℃培養(yǎng)18~24h,再挑選符合標準的典型菌落用改良酵母固體培養(yǎng)基進行純培養(yǎng)。
1.2.2 ?發(fā)酵細菌種子液的制備 ?用改良酵母肉湯洗下純培養(yǎng)菌落,按2%種子量接種于120ml改良酵母肉湯培養(yǎng)基中,37℃振蕩培養(yǎng)18~24h,經(jīng)純粹檢驗合格后,4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.3 ?高密度發(fā)酵工藝優(yōu)化試驗方案設計
1.2.3.1 ?正交試驗 ?運用正交試驗設計[4]的方法,將影響鴨疫里默氏桿菌發(fā)酵的條件分為通氣(L/S.L)、轉速(轉/min)、培養(yǎng)基pH值等,并將各條件分別設置3個水平,具體試驗分組見表1。
1.2.3.2 ?發(fā)酵 ?上述分組試驗均在37℃條件下,培養(yǎng)基為改良酵母肉湯,分別按照上述試驗條件各自發(fā)酵,發(fā)酵罐采用10L容量,發(fā)酵液為6000ml,分別采集發(fā)酵后6h、8h、10h、12h、14h、16h、18h、20h、22h、24h的發(fā)酵液,進行活菌計數(shù)及OD450nm值檢測。
1.2.4 ?優(yōu)化配方和優(yōu)化工藝在GMP生產(chǎn)車間規(guī)?;a(chǎn)應用 ?根據(jù)培養(yǎng)基配方優(yōu)化和發(fā)酵工藝優(yōu)化結果,在GMP生產(chǎn)車間規(guī)?;l(fā)酵生產(chǎn)3批鴨疫里默氏桿菌抗原,發(fā)酵罐采用200L,發(fā)酵液體積為150L,分別采集發(fā)酵后6h、8h、10h、12h、14h、16h、18h、20h、22h、24h和26h發(fā)酵液,進行活菌計數(shù)和OD450nm值檢測,查看規(guī)模化應用效果。
1.2.5 ?發(fā)酵液檢測
1.2.5.1 ?活菌計數(shù) ?按中華人民共和國獸藥典2010年版三部進行。即將發(fā)酵不同時間樣品分別進行10-1~10-10系列稀釋,然后取合適的稀釋度接種改良酵母瓊脂平板,每個稀釋度接種3個平板,0.1ml/板,置蠟燭罐中,37℃培養(yǎng)24h,進行菌落計數(shù),3個平板上菌落的平均數(shù)即為該稀釋度的細菌數(shù),再乘以稀釋倍數(shù)即為該菌液的細菌濃度。
1.2.5.2 ?OD450nm值測定 ?取不同發(fā)酵時間樣品,應用紫外分光光度計對其OD450nm值進行測定,并記錄數(shù)據(jù)以進行比較。
2 ?結果
2.1 ?RA JX-2株在發(fā)酵不同時間各組CFU測定結果見表2。以108CFU為縱坐標,生長時間為橫坐標,分別繪出RA JX-2株在發(fā)酵不同時間的生長曲線(見圖1)。
由表2及圖1可見,正交試驗組別序號2獲得的菌液活菌數(shù)最高,在發(fā)酵18h可達2.87×1010cfu/ml。此組發(fā)酵條件是通氣0.1L/S.L;轉速150r/min;培養(yǎng)基pH值7.4。
2.2 ?RA JX-2株在發(fā)酵不同時間各組OD450nm值測定結果見表3。以OD450nm值為縱坐標,生長時間為橫坐標,分別繪出RA JX-2株在發(fā)酵不同時間的OD450nm值變化曲線(見圖2)。
由表3及圖2可見,正交試驗組別序號2獲得的菌液濃度最高,在發(fā)酵22h,OD450nm值可達6.37,測定結果與菌液活菌數(shù)測定結果相一致。
2.3 ?RA JX-2株在發(fā)酵不同時間各批次活菌數(shù)及OD450nm值測定結果見表4。分別以活菌數(shù)及OD450nm值為縱坐標,生長時間為橫坐標,繪出RA JX-2株在發(fā)酵不同時間的生長曲線(見圖3、圖4)。
從表4、圖3、圖4可見,20130803批次取得的菌液濃度及活菌數(shù)目最高,分別為6.47、2.96x1010cfu/ml,20130801批次和20130802批次取得的菌液濃度及活菌數(shù)目分別為6.34、2.92x1010cfu/ml和6.43、2.83x1010cfu/ml。
3 ?分析與討論
3.1 ?利用高密度發(fā)酵培養(yǎng)的方式,RA在18h時菌液活菌數(shù)達到高峰,較搖床培養(yǎng)到達菌數(shù)高峰時間要提前6個小時左右,且活菌數(shù)也提高了60%多[5],由此可見高密度發(fā)酵培養(yǎng)的優(yōu)越性。
3.2 ?從GMP生產(chǎn)車間規(guī)模化發(fā)酵生產(chǎn)3批鴨疫里默氏桿菌抗原的菌液濃度及活菌數(shù)目來看,3批發(fā)酵檢測數(shù)值非常穩(wěn)定,獸用生物制品GMP車間利用優(yōu)化的培養(yǎng)基配方和發(fā)酵工藝大規(guī)模發(fā)酵鴨疫里默氏桿菌的效果和實驗室試驗結果基本相同,可以大規(guī)模推廣應用。
3.3 ?根據(jù)培養(yǎng)基配方優(yōu)化和發(fā)酵工藝優(yōu)化結果,在GMP生產(chǎn)車間規(guī)?;l(fā)酵生產(chǎn)3批鴨疫里默氏桿菌抗原活菌數(shù)均達到了280億/ml以上,而優(yōu)化之前活菌數(shù)最高是200億/ml,優(yōu)化后比優(yōu)化前提高了約30%,這大大節(jié)約了生產(chǎn)成本。
3.4 ?在高密度發(fā)酵過程中,我們采用活菌計數(shù)及OD450nm值測定2種方法進行培養(yǎng)菌液的菌液濃度測定,以此來確立2種檢測方法的相關性,在以后的生產(chǎn)中可通過測定RA發(fā)酵液的OD450nm值來推算其活菌數(shù),這樣不但可以避免活菌計數(shù)的繁瑣操作,且可更加及時地得知培養(yǎng)結果,大大提高了生產(chǎn)效率。
3.5 ?本研究通過提高發(fā)酵工藝,優(yōu)化其工藝參數(shù),提高菌體的發(fā)酵密度,最終提高產(chǎn)物的生產(chǎn)率,不僅可以減少培養(yǎng)體積,還可以縮短生產(chǎn)周期、提高設備利用率從而降低生產(chǎn)成本,達到提高生產(chǎn)效率的目的。這對工業(yè)化發(fā)酵生產(chǎn)鴨疫里默氏桿菌抗原提供了理論依據(jù)并具有一定實用價值。
參考文獻:
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