章玉坤,張齊龍
·前沿進(jìn)展·
結(jié)核性腦膜炎實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)研究進(jìn)展
章玉坤,張齊龍
本文闡述了近5年來(lái)結(jié)核性腦膜炎實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)方面取得的研究進(jìn)展,從細(xì)菌學(xué)、免疫學(xué)、分子生物學(xué)、生物化學(xué)及細(xì)胞學(xué)等角度進(jìn)行分析、總結(jié),認(rèn)為雖然目前報(bào)道的結(jié)核性腦膜炎實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)眾多,但仍然缺乏一種簡(jiǎn)單、快捷、經(jīng)濟(jì)、可靠的實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù),而現(xiàn)有的實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)各有優(yōu)缺點(diǎn);結(jié)核性腦膜炎的基礎(chǔ)研究方面還有很大發(fā)展空間,抗結(jié)核治療后的臨床隨訪對(duì)結(jié)核性腦膜炎實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)的改良、創(chuàng)新有促進(jìn)和啟發(fā)作用。
結(jié)核,腦膜;診斷;臨床實(shí)驗(yàn)室技術(shù);綜述
章玉坤,張齊龍.結(jié)核性腦膜炎實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)研究進(jìn)展[J].實(shí)用心腦肺血管病雜志,2015,23(1):9-12.[www.syxnf.net]
Zhang YK,Zhang QL.Progress on laboratory diagnosis technology of tubercular meningitis[J].Practical Journal of Cardiac Cerebral Pneumal and Vascular Disease,2015,23(1):9-12.
在全球范圍內(nèi),結(jié)核性腦膜炎在肺結(jié)核中占有很大比例,其發(fā)病率和病死率均很高,尤其是在患兒和HIV感染患者中。由于結(jié)核性腦膜炎缺少特異性臨床表現(xiàn),因此確診較難,目前的實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)對(duì)結(jié)核性腦膜炎的靈敏度和特異度也較低[1-2]。早期診斷和治療結(jié)核性腦膜炎可以挽救更多患者的生命,近年來(lái)關(guān)于結(jié)核性腦膜炎治療方面的研究已取得很大進(jìn)展,并可能在不久的將來(lái)影響相關(guān)指南的制定,而其實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)方面研究相對(duì)不足。有鑒于此,筆者結(jié)合近5年來(lái)相關(guān)文獻(xiàn),就結(jié)核性腦膜炎實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)在細(xì)菌學(xué)、免疫學(xué)、分子生物學(xué)、生物化學(xué)、細(xì)胞學(xué)等[3]方面取得的進(jìn)展進(jìn)行綜述如下。
腦脊液細(xì)菌學(xué)檢查是診斷結(jié)核性腦膜炎的“金標(biāo)準(zhǔn)”,其研究進(jìn)展主要體現(xiàn)在以下3個(gè)方面:
1.1 腦脊液涂片由于結(jié)核分枝桿菌是一種胞內(nèi)病原體,腦脊液中含量極少,因此采用常規(guī)的抗酸染色法檢出腦脊液中結(jié)核分枝桿菌常需要大量腦脊液標(biāo)本,且檢測(cè)陽(yáng)性率極低。我國(guó)第四軍醫(yī)大學(xué)西京醫(yī)院開(kāi)發(fā)的一種改良抗酸染色法采用細(xì)胞離心涂片及Triton破膜技術(shù)進(jìn)行標(biāo)本處理,只需要0.5 ml腦脊液,該方法不僅提高了細(xì)胞外結(jié)核桿菌陽(yáng)性檢出率,還能清晰顯示中性粒細(xì)胞、單核細(xì)胞及淋巴細(xì)胞等細(xì)胞內(nèi)結(jié)核桿菌,其較常規(guī)抗酸染色法更高效、更靈敏,是一項(xiàng)方便而準(zhǔn)確的結(jié)核性腦膜炎快速診斷技術(shù)[4]。此外,免疫細(xì)胞化學(xué)染色腦脊液巨噬細(xì)胞胞質(zhì)分枝桿菌抗原診斷結(jié)核性腦膜炎的靈敏度為73.5%,特異度為90.7%[5]。
1.2 腦脊液培養(yǎng)采用固體培養(yǎng)基進(jìn)行腦脊液結(jié)核桿菌培養(yǎng)是傳統(tǒng)的結(jié)核性腦膜炎診斷方法,但該培養(yǎng)過(guò)程需要4~7周,常導(dǎo)致不恰當(dāng)?shù)目菇Y(jié)核治療。在東京都立保健科學(xué)大學(xué)微生物學(xué)系進(jìn)行的一項(xiàng)納入了100例疑似結(jié)核性腦膜炎患兒的觀察性研究中,研究者利用BACTEC分枝桿菌生長(zhǎng)指示管(MGIT) 960系統(tǒng)作為一個(gè)快速驗(yàn)證工具進(jìn)行腦脊液分析,培養(yǎng)結(jié)果為陽(yáng)性者行一線抗結(jié)核藥物敏感試驗(yàn),并與基于臨床特征的診斷結(jié)果進(jìn)行對(duì)比,結(jié)果發(fā)現(xiàn)100份腦脊液標(biāo)本中只有14份標(biāo)本培養(yǎng)結(jié)果為陽(yáng)性,提示基于臨床特征的結(jié)核性腦膜炎診斷結(jié)果并不可靠;而B(niǎo)ACTEC MGIT 960系統(tǒng)與腦脊液生化檢查對(duì)結(jié)核性腦膜炎的診斷價(jià)值間未發(fā)現(xiàn)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P=2.260),但與腦脊液細(xì)胞學(xué)檢查對(duì)結(jié)核性腦膜炎的診斷價(jià)值間存在統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P=0.001),提示BACTEC MGIT 960系統(tǒng)可作為一種快速有效的肺外結(jié)核診斷技術(shù)[6]。
1.3 噬菌體生物擴(kuò)增法(PhaB)PhaB的原理是分枝桿菌噬菌體能夠感染待檢標(biāo)本中活分枝桿菌(結(jié)核分枝桿菌和少數(shù)幾種非結(jié)核分枝桿菌)并在菌體內(nèi)增殖,而未進(jìn)入感染菌體內(nèi)的噬菌體則被隨后加入的滅活劑滅活,增殖的噬菌體將細(xì)菌裂解后釋放出的噬菌體可感染其他目標(biāo)菌并將其裂解,導(dǎo)致瓊脂平板上出現(xiàn)噬菌斑,根據(jù)有無(wú)噬菌斑形成即可判定待檢標(biāo)本中是否存在活分枝桿菌。PhaB檢測(cè)過(guò)程只需1~2 d,靈敏、簡(jiǎn)便、價(jià)廉,還可同時(shí)進(jìn)行臨床標(biāo)本的直接藥敏試驗(yàn)[7],其已應(yīng)用于結(jié)核分枝桿菌的快速檢測(cè)和耐藥性檢測(cè)[8],但未見(jiàn)用于診斷結(jié)核性腦膜炎的報(bào)道,只是偶爾涉及體液標(biāo)本中少量腦脊液標(biāo)本檢查結(jié)果,因此其在結(jié)核性腦膜炎中的應(yīng)用價(jià)值尚不清楚,有待進(jìn)一步研究。
2.1 細(xì)胞免疫結(jié)核分枝桿菌基因組分析方面取得的研究進(jìn)展使得結(jié)核分枝桿菌特異性抗原得以發(fā)現(xiàn),且這些抗原被發(fā)現(xiàn)后不久即用于診斷結(jié)核菌感染,其中ESAT-6和CFP-10具有很強(qiáng)的誘導(dǎo)致敏T細(xì)胞釋放干擾素γ(IFN-γ)作用,因此結(jié)核分枝桿菌特異性抗原試驗(yàn)也被稱為γ-干擾素釋放試驗(yàn)(IGRAs)。由于所有卡介苗和大多數(shù)非結(jié)核分枝桿菌均不含ESAT-6和CFP-10,因此,ESAT-6和CFP-10能準(zhǔn)確鑒別卡介苗接種者和大部分非結(jié)核分枝桿菌感染者。目前市面上銷售的IGRAs試劑有兩種,即QuantiFERON-TB Gold(在日本稱為QFT-2G)和基于ELISPOT方法的T-SPOT.TB,大多數(shù)學(xué)者認(rèn)為T(mén)-SPOT.TB較QFT-2G診斷結(jié)核性腦膜炎的靈敏度更高,但這兩種試劑應(yīng)用時(shí)間較短,仍存在一些問(wèn)題亟待解決:(1)IGRAs不能區(qū)分活動(dòng)性和潛伏性結(jié)核感染;(2) QFT-2G在血液標(biāo)本以外標(biāo)本中的應(yīng)用及在T細(xì)胞反應(yīng)中作用;(3)QFT-2G在判斷疾病預(yù)后方面的應(yīng)用;(4)外周血及炎性病灶對(duì)結(jié)核桿菌抗原的特異性免疫反應(yīng),有學(xué)者采用漿膜腔積液標(biāo)本進(jìn)行IGRAs,可用于鑒別活動(dòng)性結(jié)核性胸膜炎、結(jié)核性腹膜炎、結(jié)核性腦膜炎及結(jié)核性心包炎;(5)IGRAs在免疫系統(tǒng)脆弱患者(如嬰兒及艾滋病患者)中的應(yīng)用、化療藥物的影響、對(duì)活動(dòng)性結(jié)核患者預(yù)后的判斷、試驗(yàn)質(zhì)量保證等,解決這些問(wèn)題和改良IGRAs很重要,尚需基于基礎(chǔ)免疫學(xué)的研究[9]。
潛伏性結(jié)核感染的診斷和治療是全球結(jié)核病控制面臨的挑戰(zhàn)之一,結(jié)核菌素試驗(yàn)是目前廣泛采用的潛伏性結(jié)核感染診斷方法,但特異度較低,因此,尋找特異性抗原取代結(jié)核分枝桿菌純蛋白衍生物一直是國(guó)際研究重點(diǎn)。目前已確定的3種有診斷潛力的特異性抗原為ESAT-6、CFP-10和TB 7.7,在歐盟、美國(guó)和日本,這些抗原相關(guān)診斷試劑已經(jīng)進(jìn)入市場(chǎng)銷售,其有助于識(shí)別潛伏結(jié)核感染者和結(jié)核病全球防控。近年研究發(fā)現(xiàn),T-SPOT.TB較基于臨床特征的診斷標(biāo)準(zhǔn)對(duì)結(jié)核性腦膜炎的診斷價(jià)值更高,腦脊液?jiǎn)魏思?xì)胞RD-1 ELISPOT檢測(cè)與其他快速驗(yàn)證試驗(yàn)相結(jié)合(革蘭染色和隱球菌乳膠凝集試驗(yàn))可用于結(jié)核病和艾滋病流行地區(qū)結(jié)核性腦膜炎的快速、準(zhǔn)確診斷[10],但在醫(yī)療資源匱乏地區(qū),基于臨床特征的診斷標(biāo)準(zhǔn)可能對(duì)臨床醫(yī)生更為有用,因此,T-SPOT.TB可能只需要用在基于臨床特征的診斷可能性低于預(yù)先設(shè)定標(biāo)準(zhǔn)時(shí),其診斷準(zhǔn)確性仍需進(jìn)一步研究證實(shí)[11]。
2.2 體液免疫在結(jié)核性腦膜炎患者腦脊液標(biāo)本中,除50 kDa免疫球蛋白重鏈、25 kDa免疫球蛋白輕鏈條帶外,還可看到清晰的12 kDa、30~32 kDa、71 kDa、86 kDa、96 kDa、110 kDa、120 kDa條帶及模糊的69 kDa人血清蛋白條帶,正常對(duì)照者腦脊液標(biāo)本也顯示免疫球蛋白和人血清蛋白條帶,但無(wú)交叉反應(yīng)抗原條帶,其中12 kDa(7.7%)、30~32 kDa (23.0%)、71 kDa(19.2%)、96 kDa(77.0%)、86 kDa (57.5%)、110 kDa(23.0%)及120 kDa(15.4%)條帶為反應(yīng)帶,其結(jié)果要與反向被動(dòng)乳膠凝集試驗(yàn)做對(duì)比。腦脊液中至少出現(xiàn)1個(gè)分枝桿菌特異性抗原條帶診斷結(jié)核性腦膜炎的陽(yáng)性率為88.4%,排除86 kDa特異性抗原后,免疫電泳斑點(diǎn)法(EITB)診斷結(jié)核性腦膜炎的特異度可達(dá)100%,但該診斷技術(shù)比較費(fèi)時(shí)費(fèi)力[12]。有研究顯示,阿拉伯甘露聚糖脂(LAM)抗原檢測(cè)診斷結(jié)核性腦膜炎的靈敏度為64%、特異度為69% (LAM法切割點(diǎn)0.22),而細(xì)菌學(xué)涂片診斷結(jié)核性腦膜炎的靈敏度和特異度分別為0和100%,PCR診斷結(jié)核性腦膜炎的靈敏度和特異度分別為93%和77%,LAM抗原檢測(cè)可作為高艾滋病毒感染率地區(qū)快速診斷結(jié)核性腦膜炎的有效輔助手段[13]。
目前,對(duì)應(yīng)于結(jié)核分枝桿菌Ag 85復(fù)合物特異性抗原表位的4種肽(Ag 85肽1、2、3、4,均為7~10個(gè)氨基酸長(zhǎng))已被合成出來(lái),且均能用于結(jié)核病和結(jié)核性腦膜炎患者血清和腦脊液標(biāo)本ELISA。有學(xué)者對(duì)這4種肽的血清和腦脊液標(biāo)本的診斷價(jià)值進(jìn)行研究發(fā)現(xiàn),Ag 85肽1、3、4在肺結(jié)核患者中陽(yáng)性率最高,而Ag 85肽1、2在結(jié)核性腦膜炎患者中陽(yáng)性率很高,Ag 85肽ELISA是一項(xiàng)診斷肺結(jié)核及肺外結(jié)核的早期、敏感、特異、快速、廉價(jià)、有效的免疫學(xué)技術(shù),且該類合成肽較全抗原更易重復(fù)產(chǎn)生[14]。有學(xué)者報(bào)道,體液免疫反應(yīng)(包括IgG和IgA抗體)中16 kDa抗原介導(dǎo)的間接ELISA診斷各類型肺結(jié)核的靈敏度為73.8%~81.2%,診斷結(jié)核性腦膜炎的靈敏度為42.8%,診斷結(jié)核性胸腔積液的靈敏度為63.3%,且均具有很高的特異度(94.7%左右);而在所有的非疾病對(duì)照者中,16 kDa抗原介導(dǎo)的間接ELISA結(jié)果均為陰性[15]。
3.1 PCR腦脊液涂片及培養(yǎng)是診斷中樞神經(jīng)系統(tǒng)結(jié)核的“金標(biāo)準(zhǔn)”,其診斷過(guò)程復(fù)雜、耗時(shí),診斷結(jié)核性腦膜炎的靈敏度較低。近年來(lái),以分子生物學(xué)研究為基礎(chǔ)的結(jié)核性腦膜炎診斷技術(shù)取得較大發(fā)展,其中核酸擴(kuò)增(NAA)檢測(cè)技術(shù)(特別是PCR)由于快速、靈敏、特異而在中樞神經(jīng)系統(tǒng)結(jié)核的診斷方面具有較廣闊的應(yīng)用前景[16]。PCR較常規(guī)苯酚/三氯甲烷提取法靈敏度更高(84.2%比73.6%),檢測(cè)過(guò)程更快速,技術(shù)要求更低,其中單管法程序簡(jiǎn)單,可以早期、可靠地診斷結(jié)核性腦膜炎,是一項(xiàng)很有發(fā)展空間的實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)[17],而檢測(cè)腦脊液中結(jié)核分枝桿菌glcB/HspX抗原/DevR DNA有可能提高目前的結(jié)核性腦膜炎診斷效能,并加快診斷速度[18]。
3.2 定量巢式實(shí)時(shí)PCR有學(xué)者對(duì)4種腦脊液標(biāo)本結(jié)核分枝桿菌DNA檢測(cè)方法〔實(shí)時(shí)PCR、QIAGEN(R)、AMPLICOR (R)、MagNA Pure(R)〕進(jìn)行比較發(fā)現(xiàn),實(shí)時(shí)PCR的靈敏度高于其他方法,但無(wú)法檢測(cè)出<100個(gè)結(jié)核分枝桿菌/ml者[19]。有學(xué)者采用蛋白B、MPB 64及IS6110引物多重PCR對(duì)18例確診結(jié)核性腦膜炎患者(腦脊液培養(yǎng)陽(yáng)性)、92例疑診結(jié)核性腦膜炎患者、100例非結(jié)核性腦膜炎患者進(jìn)行檢測(cè)發(fā)現(xiàn),多重PCR對(duì)確診病例的靈敏度為94.4%,特異度為100.0%,對(duì)疑診病例的陽(yáng)性檢出率為84.78%,鏡檢、腦脊液培養(yǎng)、多重PCR診斷結(jié)核性腦膜炎的總體靈敏度分別為1.8%、16.7%、86.6%,特異度均100.0%[20];蛋白B PCR對(duì)確診病例的靈敏度為90.0%,特異度為100.0%,對(duì)疑診病例的陽(yáng)性檢出率為81.7%,鏡檢、腦脊液培養(yǎng)、蛋白B PCR診斷結(jié)核性腦膜炎的總體靈敏度分別為1.4%,14.3%、82.8%,特異度均為100.0%[21]。巢式PCR診斷結(jié)核性腦膜炎的靈敏度依次較Bac T/Alert、LJ培養(yǎng)、鏡檢為高,但由于巢式PCR假陽(yáng)性率和假陰性率較高,因此其不能單獨(dú)作為啟動(dòng)或終止抗結(jié)核治療的標(biāo)準(zhǔn),而應(yīng)該結(jié)合臨床、影像學(xué)、細(xì)胞學(xué)和微生物學(xué)檢查結(jié)果綜合判斷[22]。
3.3 環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(LAMP)有學(xué)者采用了6種識(shí)別結(jié)核分枝桿菌IS6110基因組序列的特異性引物(1個(gè)正向外引物、1個(gè)反向外引物、2個(gè)內(nèi)引物、2個(gè)環(huán)引物)來(lái)快速檢測(cè)和診斷結(jié)核性腦膜炎,其設(shè)定的最佳反應(yīng)溫度和反應(yīng)時(shí)間分別為63℃和60 min,結(jié)果顯示LAMP診斷結(jié)核性腦膜炎的靈敏度和特異度分別為88.2%和80.0%,而巢式PCR分別為52.9%和90.0%[23]。
3.4 其他目前,線性探針雜交(LiPA)、基因芯片、Xpert Mtb/RIF檢測(cè)技術(shù)、高分辨熔鏈曲線分析等最新結(jié)核分枝桿菌檢測(cè)技術(shù)已應(yīng)用于實(shí)驗(yàn)室,但仍處于研發(fā)階段,尚無(wú)應(yīng)用于臨床診斷結(jié)核性腦膜炎的研究報(bào)道[24]。
4.1 腺苷脫氨酶(ADA)目前,已有較多文獻(xiàn)報(bào)道腦脊液ADA用于診斷結(jié)核性腦膜炎,但腦脊液ADA診斷結(jié)核性腦膜炎的界值還沒(méi)有達(dá)成共識(shí),大多數(shù)學(xué)者認(rèn)為9.5 U/L是腦脊液ADA鑒別診斷結(jié)核性腦膜炎的最佳臨界值,同時(shí)監(jiān)測(cè)結(jié)核性腦膜炎患者腦脊液ADA變化可為評(píng)價(jià)抗結(jié)核治療效果提供參考[25];但考慮到腦脊液ADA不能準(zhǔn)確鑒別結(jié)核性腦膜炎和細(xì)菌性腦膜炎[26],而疑診患者可能會(huì)接受不必要的抗結(jié)核治療,為提高診斷靈敏度和特異度,有學(xué)者建議將腦脊液ADA的最佳臨界值定為10.5 U/L[27]。有學(xué)者通過(guò)研究發(fā)現(xiàn),把鑒別診斷結(jié)核性腦膜炎和非結(jié)核性腦膜炎的血清ADA水平定為15 U/L時(shí),其靈敏度為84%、特異度為82%,聯(lián)合腦脊液ADA≥10 U/L和血清ADA≥15 U/L時(shí),其特異度可達(dá)92%~97%。因此,腦脊液和血清ADA檢測(cè)是鑒別診斷結(jié)核性腦膜炎的一項(xiàng)簡(jiǎn)單、可靠的實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)[28-29]。
4.2 神經(jīng)元特異性烯醇化酶(NSE)NSE是一種神經(jīng)組織損傷特異性生化標(biāo)志物,有學(xué)者認(rèn)為其較腦脊液/血清NSE對(duì)早期結(jié)核性腦膜炎的診斷效能更高[30]。
4.3 其他也有文獻(xiàn)報(bào)道將定量蛋白質(zhì)組學(xué)[31]、可溶性DLL-1等用于診斷結(jié)核性腦膜炎,但其實(shí)用價(jià)值尚有待進(jìn)一步研究。
結(jié)核性腦膜炎患者腦脊液細(xì)胞數(shù)為100~1 000個(gè)/μl,并以淋巴細(xì)胞為主;有文獻(xiàn)報(bào)道結(jié)核感染者外周血或腦脊液T細(xì)胞、T細(xì)胞、γδ T細(xì)胞均明顯增加,并與疾病嚴(yán)重程度及患者預(yù)后密切相關(guān)。但細(xì)胞學(xué)檢查易受到多種因素影響,診斷結(jié)核性腦膜炎的特異度欠佳[32]。
綜上所述,雖然目前報(bào)道的結(jié)核性腦膜炎實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)眾多,但仍然缺乏一種簡(jiǎn)單、快捷、經(jīng)濟(jì)、可靠的實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù),而現(xiàn)有的實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)各有優(yōu)缺點(diǎn):(1)腦脊液細(xì)菌學(xué)檢查出結(jié)核分枝桿菌仍是診斷結(jié)核性腦膜炎的“金標(biāo)準(zhǔn)”,但腦脊液涂片陽(yáng)性檢出率低,培養(yǎng)周期長(zhǎng),改良抗酸染色法及BACTEC MGIT 960系統(tǒng)對(duì)傳統(tǒng)腦脊液涂片方法有所改進(jìn);(2)以T-SPOT.TB為代表的免疫學(xué)檢查技術(shù)診斷結(jié)核性腦膜炎的靈敏度和特異度均很高,但其不能有效鑒別潛伏期感染及是否受到結(jié)核藥物等因素的影響,尚需進(jìn)一步研究; (3)目前PCR技術(shù)已非常成熟,且應(yīng)用廣泛,其診斷結(jié)核性腦膜炎的特異度接近100%,但由于靈敏度較高,核酸擴(kuò)增過(guò)程中產(chǎn)生的假陽(yáng)性問(wèn)題亟待解決;(4)腦脊液/血清ADA、NSE等生化指標(biāo)檢測(cè)對(duì)診斷結(jié)核性腦膜炎有一定幫助,但特異度較低;(5)實(shí)驗(yàn)室技術(shù)人員技術(shù)水平參差不齊,其檢測(cè)效能和質(zhì)量控制高低不一。
筆者總結(jié)認(rèn)為:(1)各級(jí)醫(yī)院應(yīng)根據(jù)當(dāng)?shù)貙?shí)際情況選擇性開(kāi)展結(jié)核性腦膜炎實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù),并結(jié)合臨床以提高結(jié)核性腦膜炎診斷效率;(2)實(shí)驗(yàn)室技術(shù)人員需進(jìn)行規(guī)范培訓(xùn)及系統(tǒng)學(xué)習(xí),并對(duì)目前的實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)進(jìn)行系統(tǒng)評(píng)價(jià)和比較,以了解各項(xiàng)診斷技術(shù)的優(yōu)缺點(diǎn);(3)開(kāi)展多部門(mén)、多學(xué)科協(xié)作,進(jìn)行結(jié)核性腦膜炎診斷技術(shù)的創(chuàng)新性開(kāi)發(fā);(4)結(jié)核性腦膜炎的基礎(chǔ)研究方面還有很大發(fā)展空間,抗結(jié)核治療后的臨床隨訪對(duì)結(jié)核性腦膜炎實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)的改良、創(chuàng)新有促進(jìn)和啟發(fā)作用。
[1]Ho J,Marais BJ,Gilbert GL,et al.Diagnosing tuberculous meningitis——have we made any progress?[J].Trop Med Int Health,2013,18(6):783-793.
[2]Thakur R,Goyal R,Sarma S,et al.Laboratory diagnosis of tuberculous meningitis-is there a scope for further improvement?[J].J Lab Physicians,2010,2(1):21-24.
[3]Thwaites GE.Advances in the diagnosis and treatment of tuberculous meningitis[J].Curr Opin Neurol,2013,26(3):295-300.
[4]Chen P,Shi M,F(xiàn)eng GD,et al.A highly efficient Ziehl-Neelsen stain:identifying de novo intracellular Mycobacterium tuberculosis andimproving detection of extracellular M.tuberculosis in cerebrospinal fluid[J].J Clin Microbiol,2012,50(4):1166-1170.
[5]Shao Y,Xia P,Zhu T,et al.Sensitivity and specificity of immunocytochemicalstainingofmycobacterialantigensinthe cytoplasmofcerebrospinalfluidmacrophagesfordiagnosing tuberculous meningitis[J].J Clin Microbio,2011,49(3): 3388-3391.
[6]Hannan A,Hafeez A,Chaudary S,et al.Rapid confirmation of tuberculous meningitis in children by liquid culture media[J].J Ayub Med Coll Abbottabad,2010,22(4):171-175.
[7]PiuriM,JacobsWRJr,HatfullGF,etal.Fluoromycobacteriophagesforrapid,specific,andsensitive antibioticsusceptibilitytestingofMycobacteriumtuberculosis[J].PLoS One,2009,4(3):e4870.
[8]Minion J,Pai M.Bacteriophage assays for rifampicin resistance detection in Mycobacterium tuberculosis:updated meta-analysis[J].Int J Tuberc Lung Dis,2010,14(8):941-951.
[9]Ariga H,Harada N.Evolution of IGRA researches[J].Kekkaku,2008,83(9):641-652.
[10]Patel VB,Singh R,Connolly C,et al.Cerebrospinal T-cell responses aid in the diagnosis of tuberculous meningitis in a human immunodeficiency virus-and tuberculosis-endemic population[J].Am J Respir Crit Care Med,2010,182(4):569-577.
[11]Patel VB,Singh R,Connolly C,et al.Comparative utility of cytokine levels and quantitative RD-1-specific T cell responses for rapid immunodiagnosis of tuberculous meningitis[J].J Clin Microbiol,2011,49(11):3971-3976.
[12]Venkatesh K,Parija SC.Electroimmunotransferblot assay for the detection of mycobacterialantigens in the cerebrospinal fluid for diagnosis of tubercular meningitis[J].Indian J Tuberc,2010,57 (3):141-147.
[13]Patel VB,Bhigjee AI,Paruk HF,et al.Utility of a novel lipoarabinomannan assay for the diagnosis of tuberculous meningitis in a resource-poor high-HIV prevalence setting[J].Cerebrospinal Fluid Res,2009,6:13.
[14]Kashyap RS,Shekhawat SD,Nayak AR,et al.Diagnosis of tuberculosis infection based on synthetic peptides from Mycobacterium tuberculosis antigen 85 complex[J].Clin Neurol Neurosurg,2013,115(6):678-683.
[15]Kaushik A,Singh UB,Porwal C,et al.Diagnostic potential of 16 kDa(HspX,α-crystalline)antigenforserodiagnosisof tuberculosis[J].Indian J Med Res,2012,135(5):771-777.
[16]Takahashi T,Tamura M,Takasu T,et al.The PCR-Based Diagnosis of Central Nervous System Tuberculosis:Up to Date[J].Tuberc Res Treat,2012:831292.[Epub 2012 May 13].doi: 10.1155/2012/831292.
[17]Nagdev KJ,Kashyap RS,Deshpande PS,et al.Determination of polymerase chain reaction efficiency for diagnosis of tuberculous meningitis in Chelex-100 extracted DNA samples[J].Int J Tuberc Lung Dis,2010,14(8):1032-1038.
[18]HaldarS,SankhyanN,SharmaN,etal.Detectionof Mycobacterium tuberculosis GlcB or HspX Antigens or devR DNA impacts the rapid diagnosis of tuberculous meningitis in children[J].PLoS One,2012,7(9):e44630.
[19]Thakur R,Sarma S,Goyal R,et al.Comparison of DNA Extraction Protocols for Mycobacterium Tuberculosis in Diagnosis of Tuberculous Meningitis by Real-time Polymerase Chain Reaction[J].J Glob Infect Dis,2011,3(4):353-356.
[20]Kusum S,Aman S,Pallab R,et al.Multiplex PCR for rapid diagnosis of tuberculous meningitis[J].J Neurol,2011,258 (10):1781-1787.
[21]Sharma K,Sharma A,Singh M,et al.Evaluation of polymerase chain reactionusingproteinbprimersforrapiddiagnosisof tuberculous meningitis[J].Neurol India,2010,58(5):727-731.
[22]Sastry AS,Bhat KS,Kumudavathi,et al.The Diagnostic Utility of Bact/ALERT and Nested PCR in the Diagnosis of Tuberculous Meningitis[J].J Clin Diagn Res,2013,7(1):74-78.
[23]Nagdev KJ,Kashyap RS,Parida MM,et al.Loop-mediated isothermal amplification for rapid and reliable diagnosis of tuberculous meningitis[J].J Clin Microbiol,2011,49(5):1861-1865.
[24]朱長(zhǎng)太,胡忠義.結(jié)核性腦膜炎實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù)進(jìn)展[J].中國(guó)防癆雜志,2011,33(12):822-824.
[25]Sun Q,Sha W,Xiao HP,et al.Evaluation of cerebrospinal fluid adenosinedeaminaseactivityforthedifferentialdiagnosisof tuberculous and nontuberculous meningitis[J].Am J Med Sci,2012,344(2):116-121.
[26]Tuon FF,Higashino HR,Lopes MI,et al.Adenosine deaminase and tuberculous meningitis-a systematic review with meta-analysis[J].Scand J Infect Dis,2010,42(3):198-207.
[27]Moghtaderi A,Niazi A,Alavi-Naini R,et al.Comparative analysis of cerebrospinal fluid adenosine deaminase in tuberculous and non-tuberculous meningitis[J].Clin Neurol Neurosurg,2010,112(6):459-462.
[28]Karsen H,Koruk ST,Karahocagil MK,et al.Comparative analysis of cerebrospinal fluid adenosine deaminase activity in meningitis[J].Swiss Med Wkly,2011,141:w13214.
[29]Gupta BK,Bharat A,Debapriya B,et al.Adenosine Deaminase Levels in CSF of Tuberculous Meningitis Patients[J].J Clin Med Res,2010,2(5):220-224.
[30]Song TJ,Choi YC,Lee KY,et al.Serum and cerebrospinal fluid neuron-specific enolase for diagnosis of tuberculous meningitis[J].Yonsei Med J,2012,53(6):1068-1072.
[31]Kumar GS,Venugopal AK,Mahadevan A,et al.Quantitative proteomics for identifying biomarkers for tuberculous meningitis[J].Clin Proteomics,2012,9(1):12.
[32]Vidal JE,de Oliveira AC,Hernández AV,et al.T-cell count and cerebrospinal fluid findings in HIV-infected patients with tuberculous meningitis[J].Int J Tuberc Lung Dis,2010,14 (11):1496-1497.
R 529.3
A
10.3969/j.issn.1008-5971.2015.01.004
2014-07-20;
2014-12-15)
(本文編輯:鹿飛飛)
·論著·
江西省自然科學(xué)基金(20114BAB205060)
330006江西省南昌市,江西省胸科醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科
【編者按】女性、老年人均屬特殊人群,老年女性急性ST段抬高型心肌梗死患者更是特殊人群中的“特殊人群”,王麗等在既往研究基礎(chǔ)上通過(guò)探討這一特殊人群臨床特征及院內(nèi)死亡危險(xiǎn)因素發(fā)現(xiàn),老年女性急性ST段抬高型心肌梗死患者年齡偏大、非典型癥狀發(fā)生率較高、病情較重、誤診誤治率及院內(nèi)病死率較高,女性、腦鈉肽水平升高是老年急性ST段抬高型心肌梗死患者院內(nèi)死亡的獨(dú)立危險(xiǎn)因素,提示臨床應(yīng)更多地關(guān)注這一特殊人群。目前老年急性ST段抬高型心肌梗死患者出現(xiàn)明顯性別差異的具體機(jī)制尚不明確,期望能有更多相關(guān)研究進(jìn)一步深入探討。