陳 峰,張 韜,郭 偉解放軍總醫(yī)院 血管外科,北京 00853;北京大學(xué)人民醫(yī)院 血管外科,北京 00044
動(dòng)脈粥樣硬化引起的外周動(dòng)脈疾病(peripheral arterial disease,PAD)是僅次于冠心病和卒中的最常見的血管疾病,全球70歲以上人群患病率超過了10%[1]。對(duì)于PAD患者的管理,目前美國(guó)心臟病學(xué)學(xué)院基金會(huì)/美國(guó)心臟協(xié)會(huì)指南推薦的手段主要是基礎(chǔ)治療和手術(shù)治療,手術(shù)治療借助于動(dòng)脈旁路移植術(shù)、動(dòng)脈內(nèi)膜剝脫術(shù)、經(jīng)皮腔內(nèi)血管成形術(shù)/支架置入術(shù)[2]。無論哪種手術(shù)方法,都存在20%~30%的血管再狹窄(restenosis,RS)并發(fā)癥,嚴(yán)重影響該病治療的遠(yuǎn)期療效[3-4]。RS發(fā)生的核心機(jī)制之一為炎性細(xì)胞和血管平滑肌細(xì)胞(vascular smooth muscle cell,VSMC)在趨化因子,如趨化素樣因子1(chemokine like factor 1,CKLF1)、單核細(xì)胞趨化因子1(macrophage chemoattractant protein 1,MCP-1)、Fractalkine等介導(dǎo)下的遷移[5-7]。CKLF1是北京大學(xué)人類疾病基因研究中心應(yīng)用抑制性減數(shù)雜交技術(shù)克隆出的一個(gè)新細(xì)胞因子,與MCP-1在結(jié)構(gòu)上具有同源性[6,8]。體內(nèi)和體外實(shí)驗(yàn)證實(shí)其具有廣譜的趨化活性,而且能夠促進(jìn)骨骼肌細(xì)胞、骨髓造血干/祖細(xì)胞的增殖和分化[8-9],與心血管疾病也存在著密切關(guān)聯(lián)[10-11]。傳統(tǒng)研究方法發(fā)現(xiàn)CKLF1具有誘導(dǎo)VSMC增殖和抗凋亡的雙重作用[12],還能促進(jìn)VSMC定向遷移[13]。本文主要介紹CKLF1在RS形成過程中的作用機(jī)制,并綜述既往相關(guān)的體外遷移研究實(shí)驗(yàn)。
近半個(gè)世紀(jì)以來,對(duì)RS機(jī)制的探究始終未曾停止。多數(shù)研究認(rèn)為,炎癥損傷和免疫反應(yīng)貫穿于整個(gè)病變過程,血管重建造成了內(nèi)皮損傷,病變處血管的擴(kuò)張或全層離斷使中膜彈性纖維層的破壞延伸到外膜,血管壁損傷會(huì)導(dǎo)致局部微血栓形成和炎癥反應(yīng)發(fā)生,進(jìn)而在眾多細(xì)胞因子[(MCP-1、巨噬細(xì)胞集落刺激因子(macrophage colonystimulating factor,M-CSF)、γ-干擾素、腫瘤壞死因子-α、血小板源性生長(zhǎng)因子(platelet-derived growth factor,PDGF)、堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(basic fibroblast growth factor,bFGF)和表皮生長(zhǎng)因子(epidermal growth factor,EGF)]的作用下使VSMC過度增殖,促進(jìn)細(xì)胞外基質(zhì)增多并同VSMC一起向內(nèi)膜遷移,最終共同構(gòu)成了增生的內(nèi)膜組織,引起了RS的發(fā)生[14-20]。
趨化因子是一類調(diào)控細(xì)胞定向遷移的重要細(xì)胞因子,根據(jù)結(jié)構(gòu)可以分為C、CC、CXC、CX3C亞族。目前,已發(fā)現(xiàn)與RS相關(guān)的趨化因子主要包含CC亞族中的MCP-1/MCAF、MIP-1α、MIP-1β,CXC亞族中的PAF、IL-8、GRO以及CX3C家族的Fractalkine等,其受體(XCR1、CCR1 ~ 11、CXCR1 ~ 5和CX3CR1)多屬于G蛋白偶連受體超家族[6-7]。新細(xì)胞因子CKLF1具有CC家族趨化因子的特征性結(jié)構(gòu),通過HEK293細(xì)胞實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)其受體之一是CCR4[21]。CKLF1不僅能夠趨化嗜中性細(xì)胞、單核細(xì)胞和淋巴細(xì)胞,而且可以刺激小鼠骨骼肌細(xì)胞的增殖,以及促進(jìn)人和小鼠骨髓造血干細(xì)胞的增殖和分化[8-9]。有報(bào)道稱其還能調(diào)控單核細(xì)胞向樹突狀細(xì)胞的轉(zhuǎn)化[22]。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),CKLF1可以改善大鼠急性心肌梗死后心臟功能,有助于心肌修復(fù)[23]。目前CKLF1與血管疾病關(guān)聯(lián)的研究較少。筆者之前的研究中[24]推測(cè)CKLF1協(xié)同基質(zhì)金屬蛋白酶參與了腹主動(dòng)脈瘤的發(fā)病,氫水治療可以有效阻斷前述病理進(jìn)程。宣成睿等[13,25]分別發(fā)現(xiàn)人CKLF1質(zhì)粒瞬時(shí)轉(zhuǎn)染的COS7和293T細(xì)胞培養(yǎng)上清液對(duì)VSMC具有趨化和促增殖作用,且該作用依賴于Gi蛋白偶聯(lián)受體。同樣的促增殖和遷移作用也表達(dá)在主動(dòng)脈內(nèi)皮細(xì)胞上,推測(cè)CKLF1具有促進(jìn)新生血管形成的功能[26]。CKLF1與MCP-1在結(jié)構(gòu)上具有同源性,且在大鼠主動(dòng)脈損傷模型中,發(fā)現(xiàn)內(nèi)膜組織中CKLF1與MCP-1在表達(dá)上存在高度正相關(guān)性,提示CKLF1在RS過程中可能與MCP-1發(fā)揮相似的功能[27]。
在對(duì)CKLF1促進(jìn)VSMC遷移作用的系列研究中,多位研究人員均證實(shí)CKLF1參與了VSMC遷移過程,是發(fā)生RS的危險(xiǎn)因素:1)人動(dòng)脈硬化斑塊的內(nèi)皮細(xì)胞、VSMC和巨噬細(xì)胞皆可表達(dá)CKLF1,其表達(dá)量較正常動(dòng)脈顯著上調(diào),斑塊中CKLF1、巨噬細(xì)胞和VSMC共定位存在,推測(cè)CKLF1在招募炎癥細(xì)胞,刺激VSMC遷移等RS關(guān)鍵步驟上可能起到了某種特殊的作用[12,28]。2)通過腺病毒和shRNA技術(shù)干擾CKLF1基因表達(dá),在體外實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)CKLF1促VSMC遷移功能分別得到增強(qiáng)和減弱,在大鼠頸動(dòng)脈局部損傷的體內(nèi)實(shí)驗(yàn)中對(duì)應(yīng)的內(nèi)膜增生變化趨勢(shì)與體外實(shí)驗(yàn)一致[28]。3)通過CKLF1的小分子多肽C19和化合物抑制劑S009阻斷VSMC上的CCR4受體,發(fā)現(xiàn)CKLF1引起的作用發(fā)生了改變[29],提示CCR4是CKLF1的受體之一,這一現(xiàn)象與王應(yīng)和馬大龍[21]的研究結(jié)論基本一致。4)VSMC轉(zhuǎn)染CKLF1后,內(nèi)含核因子(nuclear factor,NF)-κB的表達(dá)總量被增強(qiáng),推測(cè)NF-κB信號(hào)通路參與了CKLF1介導(dǎo)VSMC生物學(xué)功能的調(diào)控[30]。由此可見,CKLF1在RS的發(fā)展過程中起了重要作用,遺憾的是,目前CKLF1對(duì)VSMC作用機(jī)制尚無更深入研究,如受體變化、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、表型轉(zhuǎn)化和轉(zhuǎn)錄因子等層面,因而制約了其藥物拮抗靶點(diǎn)和臨床應(yīng)用價(jià)值的開發(fā)利用。
在CKLF1對(duì)RS發(fā)生機(jī)制的研究中,VSMC遷移是基本實(shí)驗(yàn)?zāi)P汀S绊慥SMC遷移的因素很多,包括各種生長(zhǎng)因子、趨化因子、流體應(yīng)力等。為探索多因素介導(dǎo)VSMC遷移的機(jī)制,重復(fù)性好、可信度高的體外研究是十分必要的。傳統(tǒng)研究中VSMC遷移主要依賴于劃痕法和細(xì)胞趨化小室(Boyden Chamber)等經(jīng)典技術(shù)。前者是在孔板上,當(dāng)VSMC貼壁長(zhǎng)滿時(shí)用移液槍頭或刀片刮除一定范圍的細(xì)胞,觀察細(xì)胞向刮除細(xì)胞區(qū)的遷移運(yùn)動(dòng)。一般以某一細(xì)胞群的最大遷移距離為參數(shù)分析VSMC遷移能力。該方法操作簡(jiǎn)單,直觀,備受實(shí)驗(yàn)人員青睞,但其劃痕速度和尺寸一致性較差。在劃痕過程中,細(xì)胞受到機(jī)械性損傷,并釋放細(xì)胞內(nèi)容物于周圍環(huán)境,且細(xì)胞損傷程度不可控,導(dǎo)致遷移過程復(fù)雜多樣。另外,瓶皿表面修飾分子層會(huì)被劃痕破壞,上述問題說明該技術(shù)可重復(fù)性較差。后者以8μm孔徑濾膜為分界,將VSMC接種至上層小室,下室加入不同誘導(dǎo)物,于不同時(shí)間點(diǎn)取出濾膜擦掉膜正面的細(xì)胞后,固定、染色,在顯微鏡下計(jì)數(shù)膜背面視野中的細(xì)胞數(shù),也可以在電鏡下觀察VSMC跨膜的過程。但細(xì)胞趨化小室技術(shù)只能模擬VSMC在單一濃度、穩(wěn)態(tài)溶液環(huán)境中的反應(yīng),而體內(nèi)環(huán)境中VSMC遷移是一個(gè)多因素調(diào)控的復(fù)雜病理生理學(xué)過程。更為重要的是,相對(duì)于血管壁的微小尺寸,這些胞外環(huán)境與體內(nèi)微環(huán)境差異十分明顯,客觀上難以真實(shí)反映生理狀態(tài)下VSMC的生物學(xué)特征。因此,需要能更好模擬活體血管壁微環(huán)境并具有對(duì)活細(xì)胞從時(shí)間上和空間上進(jìn)行精確操作的細(xì)胞研究裝置。
微流控芯片又稱為“芯片實(shí)驗(yàn)室”,是通過半導(dǎo)體集成技術(shù)制成的新型固體元件,可對(duì)微量流動(dòng)細(xì)胞進(jìn)行復(fù)雜、精確的操作,該項(xiàng)技術(shù)與基因芯片技術(shù)并稱為21世紀(jì)最有發(fā)展前景的新技術(shù)。在基于微流控技術(shù)的細(xì)胞研究領(lǐng)域中,早在2006年《Nature》上就有針對(duì)微流控細(xì)胞培養(yǎng)芯片的相關(guān)綜述:包括芯片材料選擇、建立微環(huán)境、片上培養(yǎng)、細(xì)胞檢測(cè)等[31]。2014年《Nature》上進(jìn)一步綜述微流控技術(shù)在腫瘤細(xì)胞、骨細(xì)胞、干細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞等領(lǐng)域的重要應(yīng)用[32]。在基于微流控技術(shù)的細(xì)胞遷移研究中,Whitesides最早提出利用微流控技術(shù)的層流特性,在微溝道中產(chǎn)生溶液濃度梯度和束縛在襯底上的大分子密度梯度[33-34]。其優(yōu)勢(shì)是梯度定量可控,不僅產(chǎn)生線性梯度而且可以產(chǎn)生穩(wěn)定多樣的梯度,更好地模擬細(xì)胞微環(huán)境。使用這一技術(shù),量化了炎癥細(xì)胞[35]、腫瘤細(xì)胞[36-37]、小腸上皮細(xì)胞在不同梯度下的遷移[38]。Wong在Whitesides設(shè)計(jì)的“圣誕樹”結(jié)構(gòu)基礎(chǔ)上,通過控制交聯(lián)劑濃度梯度實(shí)現(xiàn)了束縛于襯底表面的硬度梯度[39]。Ladoux使用微流控技術(shù)制作微陣列,通過調(diào)整微柱的尺寸,同樣實(shí)現(xiàn)了襯底表面的硬度梯度[40]。Du等[41-42]化繁為簡(jiǎn),摒棄了傳統(tǒng)微流控技術(shù)中的導(dǎo)管和泵,采用滑動(dòng)芯片法,在微溝道中產(chǎn)生溶液濃度梯度。與傳統(tǒng)方法比較,微流控技術(shù)不僅可以“真實(shí)”模擬細(xì)胞外環(huán)境,還能構(gòu)建細(xì)胞級(jí)精度的濃度梯度、分子密度梯度、硬度梯度等,成為細(xì)胞層面機(jī)制研究的優(yōu)勢(shì)平臺(tái)。
CKLF1在RS的病理過程中具有重要作用,CKLF1調(diào)控VSMC遷移過程,是發(fā)生RS的危險(xiǎn)因素。然而,CKLF1對(duì)VSMC的研究尚無深入到受體變化、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、表型轉(zhuǎn)化和轉(zhuǎn)錄因子等層面,現(xiàn)象表征的模型缺陷也制約了VSMC在趨化因子作用下遷移機(jī)制的研究,此方面空白亟需填補(bǔ),以期對(duì)RS的治療開拓新的思路和方案,并且基于高通量方法,可以提高體外實(shí)驗(yàn)進(jìn)行心血管藥物篩選的成功率。
1 Fowkes FG, Rudan D, Rudan I, et al. Comparison of global estimates of prevalence and risk factors for peripheral artery disease in 2000 and 2010: a systematic review and analysis[J]. Lancet, 2013, 382(991): 1329-1340.
2 Anderson JL, Halperin JL, Albert NM, et al. Management of patients with peripheral artery disease (compilation of 2005 and 2011 ACCF/AHA guideline recommendations): a report of the American College of Cardiology Foundation/American Heart Association Task Force on Practice Guidelines[J]. Circulation, 2013, 127(13): 1425-1443.
3 賈倩,李彥平,賈進(jìn)舉,等.雷帕霉素藥物洗脫支架的早中期安全性及有效性評(píng)價(jià)[J].解放軍醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2014,35(1):21-24.
4 Guo X, Xue G, Huang X, et al. Outcomes of endovascular treatment for patients with TASC II D femoropopliteal occlusive disease: a single center study[J]. BMC Cardiovasc Disord, 2015, 15(1):44.
5 Wu X, Lu Q. Expression and significance of α-SMA and PCNA in the vascular adventitia of balloon-injured rat aorta[J]. Exp Ther Med, 2013, 5(6): 1671-1676.
6 Filippatos G, Parissis JT, Adamopoulos S, et al. Chemokines in cardiovascular remodeling: clinical and therapeutic implications[J].Curr Mol Med, 2003, 3(2): 139-147.
7 Maeda DY, Peck AM, Schuler AD, et al. Discovery of 2-[5-(4-Fluorophenylcarbamoyl)pyridin-2-ylsulfanylmethyl]phenylboronic acid (SX-517): noncompetitive boronic acid antagonist of CXCR1 and CXCR2[J]. J Med Chem, 2014, 57(20):8378-8397.
8 Han W, Lou Y, Tang J, et al. Molecular cloning and characterization of chemokine-like factor 1 (CKLF1), a novel human cytokine with unique structure and potential chemotactic activity[J]. Biochem J,2001, 357(Pt 1): 127-135.
9 孫雅純,李鐘珊,楊高云.趨化素樣因子1研究進(jìn)展[J].臨床和實(shí)驗(yàn)醫(yī)學(xué)雜志,2013,12(2):146-148.
10 Tan Y, Wang Y, Li L, et al. Chemokine-like factor 1-derived C-terminal peptides induce the proliferation of dermal microvascular endothelial cells in psoriasis[J]. PLoS One, 2015, 10(4):e0125073.
11 李云松,王偉,郭躍輝,等.炎癥因子與下肢動(dòng)脈腔內(nèi)成形術(shù)后再狹窄的研究進(jìn)展[J].中國(guó)普通外科雜志,2013,22(12):1636-1639.
12 張韜, 熊江, 沈晨陽, 等. 趨化素樣因子1對(duì)人血管平滑肌細(xì)胞增殖及凋亡的影響[J]. 中華醫(yī)學(xué)雜志, 2012, 92(29): 2069-2074.
13 宣成睿,陳瑤,何培英,等.人趨化素樣因子1對(duì)人動(dòng)脈血管平滑肌細(xì)胞的趨化作用[J].北京大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2009,41(2):148-151.
14 Lee CH, Yu CY, Chang SH, et al. Promoting endothelial recovery and reducing neointimal hyperplasia using sequential-like release of acetylsalicylic acid and paclitaxel-loaded biodegradable stents[J].Int J Nanomedicine, 2014, 9: 4117-4133.
15 楊水祥.冠狀血管內(nèi)支架的研究進(jìn)展[J].軍醫(yī)進(jìn)修學(xué)院學(xué)報(bào),1995,16(1):45-48.
16 Karper JC, Ewing MM, Jukema JW, et al. Future potential biomarkers for postinterventional restenosis and accelerated atherosclerosis[J]. Biomark Med, 2012, 6(1): 53-66.
17 Kruger D. Neo-intimal hyperplasia, diabetes and endovascular injury[J]. Cardiovasc J Afr, 2012, 23(9): 507-511.
18 Zeller I, Wiedemann D, Schwaiger S, et al. Inhibition of cell surface expression of endothelial adhesion molecules by ursolic acid prevents intimal hyperplasia of venous bypass grafts in rats[J]. Eur J Cardiothorac Surg, 2012, 42(5): 878-884.
19 Soehnlein O, Wantha S, Simsekyilmaz S, et al. Neutrophil-derived cathelicidin protects from neointimal hyperplasia[J]. Sci Transl Med, 2011, 3(13): 103ra98.
20 Linic IS, Sosa I, Kovacevic M, et al. Predicting carotid restenosis by comparison of plaque MCP-1 mRNA expression and serum levels[J].Med Hypotheses, 2013, 80(1): 26-28.
21 王應(yīng),馬大龍.新細(xì)胞因子趨化素樣因子(CKLF1)的發(fā)現(xiàn)與新藥開發(fā)[J].中國(guó)藥學(xué)雜志,2011,46(4):241-244.
22 Shao L, Li T, Mo X, et al. Expressional and functional studies of CKLF1 during dendritic cell maturation[J]. Cell Immunol, 2010,263(2): 188-195.
23 劉倩竹,洪濤,楊波,等.人趨化素樣因子1促使大鼠心肌梗死后心肌細(xì)胞增殖[J].中國(guó)介入心臟病學(xué)雜志,2009,17(3):164-167.
24 陳峰,張韜,熊江,等.氫氣抑制趨化素樣因子1在大鼠腹主動(dòng)脈瘤進(jìn)展中的作用[J].中華醫(yī)學(xué)雜志,2014,94(1):59-61.
25 宣成睿,塔拉,沈晨陽.趨化素樣因子1對(duì)人動(dòng)脈平滑肌細(xì)胞的增殖促進(jìn)作用[J].中國(guó)老年學(xué)雜志,2011,31(4):597-598.
26 陳琛,洪濤,盛琴慧,等.人趨化素樣因子對(duì)大動(dòng)脈內(nèi)皮細(xì)胞的促增殖和促遷移作用初探[J].中國(guó)介入心臟病學(xué)雜志,2010,18(3):157-160.
27 李清樂,張小明,沈晨陽,等.趨化素樣因子1在大鼠主動(dòng)脈損傷模型中的表達(dá)[J].中華普通外科雜志,2009,24(12):1015-1018.
28 Zhang T, Zhang X, Yu W, et al. Effects of chemokine-like factor 1 on vascular smooth muscle cell migration and proliferation in vascular inflammation[J]. Atherosclerosis, 2013, 226(1): 49-57.
29 Zhang T, Qiao Z, Chen F, et al. Antagonistic effect of C19 on migration of vascular smooth muscle cells and intimal hyperplasia induced by chemokine-like factor 1[J]. Mol Biol Rep, 2013, 40(4):2939-2946.
30 張韜, 沈晨陽, 李清樂, 等. 趨化素樣因子1對(duì)血管平滑肌細(xì)胞核因子-KB的影響[J]. 中華實(shí)驗(yàn)外科雜志, 2011, 28(4):503-505.
31 El-Ali J, Sorger PK, Jensen KF. Cells on chips[J]. Nature, 2006,442(7101):403-411.
32 Sackmann EK, Fulton AL, Beebe DJ. The present and future role of microfluidics in biomedical research[J]. Nature, 2014, 507(7491):181-189.
33 Ricoult SG, Kennedy TE, Juncker D. Substrate-bound protein gradients to study haptotaxis[J]. Frontiers in bioengineering and biotechnology, 2015, 3: 40.
34 Jiang X, Xu Q, Dertinger SK, et al. A general method for patterning gradients of biomolecules on surfaces using microfluidic networks[J].Anal Chem, 2005, 77(8): 2338-2347.
35 Wu J, Hillier C, Komenda P, et al. A microfluidic platform for evaluating neutrophil chemotaxis induced by sputum from COPD patients[J]. PLoS One, 2015, 10(5): e0126523.
36 Ma H, Xu H, Qin J. Biomimetic tumor microenvironment on a microfluidic platform[J]. Biomicrofluidics, 2013, 7(1): 11501.
37 Polacheck WJ, Zervantonakis IK, Kamm RD. Tumor cell migration in complex microenvironments[J]. Cell Mol Life Sci, 2013, 70(8):1335-1356.
38 Zhan M, Chingozha L, Lu H. Enabling systems biology approaches through microfabricated systems[J]. Anal Chem, 2013, 85(19):8882-8894.
39 Zaari N, Rajagopalan P, Kim SK, et al. Photopolymerization in microfluidic gradient generators: Microscale control of substrate compliance to manipulate cell response[J]. Advanced Materials,2004, 16(23/24): 2133.
40 Saez A, Ghibaudo M, Buguin A, et al. Rigidity-driven growth and migration of epithelial cells on microstructured anisotropic substrates[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2007, 104(20): 8281-8286.
41 Du W, Li L, Nichols KP, et al. SlipChip[J]. Lab Chip, 2009, 9(16): 2286-2292.
42 Shen CH, Xu P, Huang Z, et al. Bacterial chemotaxis on SlipChip[J].Lab Chip, 2014, 14(16): 3074-3080.
解放軍醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào)2015年11期