黃仁發(fā)，賴(lài)虹伊，梁群卿，黃國(guó)東，向少偉，汪東濤，馬曉露，黃海燕，胡維，林心如，周巧玲

（1.廣西中醫(yī)藥大學(xué)附屬瑞康醫(yī)院 腎內(nèi)科，廣西 南寧530011；2.廣西中醫(yī)藥大學(xué)，廣西 南寧530023；3.廣西中醫(yī)藥大學(xué)附屬瑞康醫(yī)院 健康管理中心，廣西 南寧530011；4.中南大學(xué)湘雅醫(yī)院 腎內(nèi)科，湖南 長(zhǎng)沙410008）

前期研究表明，腎缺血-再灌注損傷（ischemia-reperfusion injury，IRI）可誘導(dǎo)大鼠血清腫瘤壞死因子-α（tumor necrosis factorsα，TNF-α）、白介素-6（interleukin-6，IL-6）表達(dá)增多，腎小管上皮細(xì)胞單核細(xì)胞趨化蛋白-1（monocyte chemotactic protein-1，MCP-1）表達(dá)上調(diào)，證實(shí)腎IRI存在炎癥過(guò)程，腎小管上皮細(xì)胞在腎IRI時(shí)可轉(zhuǎn)化為炎癥細(xì)胞[1]。但這種轉(zhuǎn)化的信號(hào)機(jī)制是什么？本研究應(yīng)用Notch信號(hào)關(guān)鍵酶γ-泌肽酶（γ-secretase）抑制劑DAPT阻斷Notch信號(hào)通路活化后，觀察Notch2/Hes-1信號(hào)通路活化是否參與調(diào)控腎缺血-再灌注（IR）誘導(dǎo)腎小管上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)化為炎癥細(xì)胞的過(guò)程。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 選取10～12周齡健康雄性清潔級(jí)SD（sprasue-dawley）大鼠，體重（210±34）g，共45只，購(gòu)自上海斯萊克景達(dá)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司長(zhǎng)沙分公司，動(dòng)物合格證號(hào)：SCXK（湘）2009-0004，于湘雅醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物學(xué)部飼養(yǎng)。在室溫18～25℃，相對(duì)濕度50%～60%，人工12 h晝/夜循環(huán)照明環(huán)境中，用全價(jià)營(yíng)養(yǎng)，分籠飼養(yǎng)。每日定時(shí)清洗籠舍，大鼠自由攝食及飲水。

1.1.2 DAPT的配置方法 5 mg的DAPT加入DMSO 1ml溶解，配制溶度為10mol/L（5mg/ml）的儲(chǔ)存液。實(shí)驗(yàn)前根據(jù)大鼠體重取適量?jī)?chǔ)存液，每次灌胃前加入生理鹽水，配制總體積為2ml的工作液。工作液使用前在超凈工作臺(tái)配制。

1.1.3 主要的儀器和試劑 BX-50生物光學(xué)顯微鏡和激光共聚焦顯微鏡（德國(guó)Carl Zeiss），γ-secretase抑制劑DAPT（5mg，美國(guó)Sigma公司），蛋白提取試劑盒（上海申能博彩生物技術(shù)公司），BCA蛋白定量試劑盒（江蘇碧云天生物技術(shù)公司，PMSF（江蘇碧云天生物技術(shù)公司），PDVF膜（蘇州廣惠科技有限公司），大鼠TNF-α ELISA kit和大鼠IL-6 ELISA kit（美國(guó)BPB Biomedical公司），兔抗大鼠MCP-1（武漢博士德生物技術(shù)有限公司），兔抗大鼠Notch2多克隆抗體、兔抗大鼠Hes-1多克隆抗體和FITC標(biāo)記的山羊抗兔IgG（美國(guó)Santa Cruz公司）。

1.2 方法

1.2.1 動(dòng)物模型的建立與分組 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物術(shù)前禁食12 h，自由進(jìn)水，術(shù)前用10%水合氯醛溶液（3.5ml/kg）腹腔注射麻醉。沿腹部正中線(xiàn)切口，逐層切開(kāi)分離皮膚、肌肉、腹白線(xiàn)進(jìn)入腹腔后，切除右側(cè)腎臟（作為正常組大鼠腎組織），于結(jié)腸脾曲外側(cè)切開(kāi)后腹膜，暴露左側(cè)腎臟，游離左輸尿管和腎上腺避免損傷，再游離左腎蒂。穩(wěn)定10min后將大鼠隨機(jī)分成3組，每組15只，持續(xù)夾閉左腎動(dòng)脈60min后恢復(fù)灌注。缺血-再灌注組（I/R組）恢復(fù)灌注后予以生理鹽水[2ml/（d·只）]灌胃；γ-secretase抑制劑組（DAPT組）恢復(fù)灌注后予以γ-secretase抑制劑DAPT[500μg/（100 g/d）]灌胃；假手術(shù)組（Sham組）分離腎蒂但不夾閉左腎動(dòng)脈，術(shù)后予以生理鹽水[2ml/（d·只）]灌胃。3組在灌注后24、48和72 h各處死大鼠5只。

1.2.2 檢測(cè)各組大鼠腎功能、血清TNF-α、IL-6水平 全自動(dòng)生化儀檢測(cè)大鼠腎功能，ELISA法檢測(cè)各組大鼠血清TNF-α、IL-6水平。

1.2.3 各組大鼠腎臟病理改變 取左側(cè)腎臟置于4%多聚甲醛磷酸緩沖液，將標(biāo)本依次行固定、脫水、石蠟包埋、切片、脫蠟，HE染色，每張切片在高倍鏡下取外髓質(zhì)部10個(gè)視野，作半定量分析并計(jì)算均值[2]：無(wú)病變?yōu)?分；病變≤10%為1分；11%～25%為2分；26%～45%為3分；46%～75%為4分；病變>75%為5分。光學(xué)顯微鏡下（×20）觀察各腎臟標(biāo)本病理切片的形態(tài)改變，分析各組大鼠腎小管病理?yè)p傷程度。

1.2.4 激光共聚焦免疫熒光法檢測(cè)各組大鼠腎組織Notch2、Hes-1、MCP-1蛋白的表達(dá) 冷凍切片95%固定，PBS沖洗，1%Triton透膜，羊血清工作液封閉，分別滴加Notch2多克隆抗體（1∶150）、Hes-1多克隆抗體（1∶150）、MCP-1多克隆抗體（1∶150），4℃孵育過(guò)夜，然后分別滴加FITC標(biāo)記（綠色熒光）的山羊抗兔IgG（二抗，1∶500），50%緩沖甘油封片，激光共聚焦顯微鏡下觀察并攝像。

1.2.5 W estern blot檢 測(cè) 腎 組 織Notch2、H es-1、MCP-1蛋白的表達(dá) 取新鮮腎組織50～100mg提取總蛋白后，測(cè)蛋白濃度，經(jīng)過(guò)SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳、轉(zhuǎn)膜，Notch2多克隆抗體（1∶300）、Hes-1多克隆抗體（1∶300）、MCP-1多克隆抗體（1∶300）孵育過(guò)夜，辣根過(guò)氧化酶標(biāo)記的羊抗兔IgG孵育（用含0.5%脫脂奶粉的TBET稀釋1∶10 000），最后用化學(xué)發(fā)光得到膠片，蛋白條帶用凝膠光密度分析軟件測(cè)其OD值，用β-actin蛋白作為內(nèi)參照，通過(guò)計(jì)算比值（OD目的蛋白/ODβ-actin蛋白），即目的蛋白的表達(dá)量來(lái)分析目的蛋白表達(dá)的相對(duì)水平，分析兩組大鼠腎組織Notch2、Hes-1、MCP-1蛋白的表達(dá)。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

采用SPSS 15.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析，計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差（±s）表示，如方差齊，組間比較用方差分析及LSD多重比較；如方差不齊，則用非參數(shù)檢驗(yàn)，P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 大鼠尿素氮和血肌酐水平比較

生化結(jié)果顯示，Sham組大鼠尿素氮（blood urea nitrogen，BUN）、血肌酐（serum creatinine，Scr）水平無(wú)明顯升高。而IR后大鼠腎功能明顯受損，術(shù)后BUN、Scr水平升高，24h達(dá)到高峰，48和72h逐漸降低。與相同時(shí)間Sham組比較，24、48和72 h I/R組大鼠BUN、Scr水平升高，差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.01）。經(jīng)DAPT處理后，與相同時(shí)間I/R組比較，大鼠24、48和72 h BUN、Scr水平顯著下降，差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.01）。見(jiàn)表1、2。

表1 3組大鼠BUN水平比較 （n=5，mg/dl，±s）

表1 3組大鼠BUN水平比較 （n=5，mg/dl，±s）

注：1）與Sham組比較，P<0.01；2）與I/R組比較，P<0.01

組別 24 h 48 h 72 h Sham組 14.62±3.02 13.93±4.11 13.92±3.92 I/R組 50.44±6.621） 45.87±4.981） 31.77±6.001）t值 10.610 7.340 8.281 P值 0.000 0.000 0.000 DAPT組 46.03±5.112） 38.49±7.392） 25.13±6.482）t值 4.473 4.652 4.335 P值 0.002 0.001 0.005

表2 3組大鼠Scr水平比較 （n=5，mg/dl，±s）

表2 3組大鼠Scr水平比較 （n=5，mg/dl，±s）

注：1）與Sham組比較，P<0.01；2）與I/R組比較，P<0.01

組別 24 h 48 h 72 h Sham組 0.41±0.08 0.40±0.09 0.42±0.08 I/R組 3.91±0.361） 3.26±0.361） 2.32±0.261）t值 11.330 7.126 6.985 P值 0.000 0.000 0.000 DAPT組 3.33±0.282） 2.63±0.272） 1.70±0.322）t值 4.058 4.115 4.231 P值 0.005 0.003 0.002

2.2 大鼠腎臟病理改變

Sham組大鼠腎小球、腎小管間質(zhì)均未見(jiàn)明顯病變；I/R組大鼠腎小管病變以皮髓交界處最為明顯，可見(jiàn)刷狀緣丟失、基底膜裸露、小管擴(kuò)張、管腔內(nèi)管型形成、間質(zhì)炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)及小管上皮細(xì)胞再生等病變。經(jīng)DAPT處理后，腎小管結(jié)構(gòu)較I/R組明顯完整清晰，管腔內(nèi)容物較I/R組減少，炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)較I/R組明顯減輕。腎小管間質(zhì)半定量評(píng)分顯示，與相同時(shí)間Sham組比較，I/R組腎小管間質(zhì)評(píng)分明顯升高，差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.01）。與相同時(shí)間I/R組比較，DAPT組大鼠腎小管間質(zhì)評(píng)分明顯降低，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.01）。見(jiàn)圖1和表3。

2.3 大鼠血清腫瘤壞死因子-α 和白介素-6表達(dá)比較

結(jié)果顯示，腎IR誘導(dǎo)血清IL-6和TNF-α 水平顯著升高，再灌注后24 h達(dá)最高峰，之后逐漸下降，但72h仍高于Sham組，與相同時(shí)間Sham組比較，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.01）；經(jīng)DAPT處理后，與相同時(shí)間I/R組比較，大鼠血清IL-6和TNF-α 水平顯著降低，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.01）。見(jiàn)表4、5。

2.4 大鼠腎組織Notch2、Hes-1、MCP-1蛋白表達(dá)比較

圖1 3組大鼠腎臟病理改變 （HE染色×20）

表3 3組大鼠腎小管間質(zhì)半定量評(píng)分比較 （n=5，±s）

表3 3組大鼠腎小管間質(zhì)半定量評(píng)分比較 （n=5，±s）

注：1）與Sham組比較，P<0.01；2）與I/R組比較，P<0.01

組別 24 h 48 h 72 h Sham組 0.38±0.16 0.36±0.24 0.32±0.13 I/R組 3.52±0.221） 2.70±0.231） 2.32±0.311）t值 12.053 8.659 7.085 P值 0.000 0.000 0.000 DAPT組 2.78±0.332） 1.90±0.212） 1.06±0.402）t值 4.121 4.132 5.231 P值 0.002 0.002 0.001

表4 3組大鼠血清IL-6水平比較 （n=5，pg/L，±s）

表4 3組大鼠血清IL-6水平比較 （n=5，pg/L，±s）

注：1）與Sham組比較，P<0.01；2）與I/R組比較，P<0.01

組別 24 h 48 h 72 h Sham組 782.23±99.19 739.84±152.42 754.65±107.71 I/R組 3 749.26±588.921） 3 000.87±381.761） 1 286.43±215.381）t值 15.067 13.613 8.257 P值 0.000 0.000 0.000 DAPT組 2 179.62±391.942） 1 735.47±422.352） 849.45±157.132）t值 8.144 7.562 4.835 P值 0.000 0.000 0.002

表5 3組大鼠血清TNF-α 水平比較 （n=5，pg/L，±s）

表5 3組大鼠血清TNF-α 水平比較 （n=5，pg/L，±s）

注：1）與Sham組比較，P<0.01；2）與I/R組比較，P<0.01

組別 24 h 48 h 72 h Sham組 112.92±47.95 108.21±36.63 113.56±39.58 I/R組 2 071.08±391.811） 1 758.44±158.051） 647.26±164.571）t值 12.053 8.659 7.085 P值 0.000 0.000 0.000 DAPT組 1 557.81±237.252） 1 155.25±262.832） 173.97±111.132）t值 4.121 4.132 5.231 P值 0.002 0.002 0.001

免疫激光共聚焦結(jié)果表明，Sham組大鼠腎小管未見(jiàn)Notch2陽(yáng)性蛋白表達(dá)，可見(jiàn)少量的Hes-1和MCP-1陽(yáng)性蛋白表達(dá)，腎IR后24 h可見(jiàn)腎小管大量的Notch2、Hes-1和MCP-1陽(yáng)性蛋白表達(dá)，尤其以受損的遠(yuǎn)端腎小管熒光最強(qiáng)，48 h后熒光變?nèi)酰?2 h仍可見(jiàn)陽(yáng)性蛋白表達(dá)。DAPT處理24 h后，Notch2、Hes-1和MCP-1蛋白熒光均變?nèi)酰?2 h仍可見(jiàn)少量的熒光。Western blot結(jié)果與免疫組織化學(xué)結(jié)果相似，但經(jīng)DAPT處理72 h后，未見(jiàn)Notch2和Hes-1蛋白凝膠條帶。與相同時(shí)間Sham組大鼠比較，I/R組大鼠24、48和72h的Notch2、Hes-1和MCP-1蛋白表達(dá)上調(diào)，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.01）。與相同時(shí)間I/R組比較，DAPT組大鼠腎組織24、48和72 h的Notch2、Hes-1、MCP-1蛋白和Caspase-1 2蛋白表達(dá)下調(diào)，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.01）。見(jiàn)圖2～7和表6。

圖2 兩組大鼠腎組織Notch2蛋白的表達(dá) （免疫激光共聚焦法×400）

圖3 兩組大鼠腎組織Hes-1蛋白的表達(dá) （免疫激光共聚焦法×400）

圖4 兩組大鼠腎組織MCP-1蛋白的表達(dá) （免疫激光共聚焦法×400）

圖5 3組大鼠腎組織Notch2、Hes-1和MCP-1蛋白表達(dá)（Western blot）

圖6 3組大鼠腎組織中Hes-1蛋白的表達(dá)

圖7 3組大鼠腎組織MCP-1蛋白的表達(dá)

表6 兩組大鼠腎組織中Notch2蛋白表達(dá)的比較（n=5，±s）

表6 兩組大鼠腎組織中Notch2蛋白表達(dá)的比較（n=5，±s）

注：?與DAPT組比較，P<0.01

組別 24 h 48 h I/R組 0.59±0.06 0.49±0.06 DAPT組 0.42±0.06? 0.40±0.05?t值 4.786 4.679 P值 0.002 0.002

3 討論

Notch信號(hào)是一進(jìn)化上高度保守的細(xì)胞間信號(hào)傳導(dǎo)通路，作用廣泛，可精確調(diào)節(jié)細(xì)胞的增生、分化、遷移、生長(zhǎng)和死亡的過(guò)程，對(duì)個(gè)體的發(fā)育，尤其是三維結(jié)構(gòu)器官的發(fā)育起決定性作用。其由一系列的蛋白分子家族組成，包括Notch受體、Notch配體、正負(fù)修飾分子以及轉(zhuǎn)錄因子[3-4]。Notch信號(hào)具有高度保守性，人和老鼠有4個(gè)Notch受體，即Notch1～4；Notch的配體在果蠅為Delta、Serrate，線(xiàn)蟲(chóng)為L(zhǎng)ag-2。因此Notch的配體又被稱(chēng)為DSL蛋白[5]。Notch信號(hào)通路活化的關(guān)鍵是早老素依賴(lài)的γ-secretase（S3）裂開(kāi)Notch受體的胞內(nèi)段（notch intracellular domain，NICD），并釋放NICD轉(zhuǎn)位至細(xì)胞核，在細(xì)胞核與CSL蛋白相結(jié)合[5]。因此，筆者通過(guò)γ-secretase抑制劑DAPT阻斷Notch信號(hào)后，觀察下游轉(zhuǎn)錄分子的改變。

最近研究表明，Notch信號(hào)通路參與腫瘤的侵襲、轉(zhuǎn)移[6]，心肌細(xì)胞IRI[7]，以及肝纖維化過(guò)程[8]，而且通過(guò)影響核轉(zhuǎn)錄因子κB轉(zhuǎn)錄，調(diào)控TNF-α、IL-6、MCP-1等炎癥因子表達(dá)增多，參與類(lèi)風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎滑膜炎癥的形成過(guò)程[9]。前期研究表明，腎IRI存在炎癥過(guò)程，腎小管上皮細(xì)胞可以轉(zhuǎn)化為炎癥細(xì)胞[1]。有研究表明，腎IRI可以誘發(fā)Notch2/Hes-1信號(hào)通路重新活化，參與腎小管的再生過(guò)程[10]。那么，Notch2/Hes-1信號(hào)通路是否參與腎IRI誘發(fā)的炎癥過(guò)程？

本研究結(jié)果顯示，腎I/R后，腎小管可見(jiàn)刷狀緣丟失、小管擴(kuò)張、管腔內(nèi)管型、間質(zhì)炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)等腎小管壞死改變，腎小管間質(zhì)半定量評(píng)分明顯高于Sham組，提示模型建立成功。而經(jīng)DAPT處理后，腎小管病理改善，半定量評(píng)分降低，表明DAPT可能具有良好的腎保護(hù)作用。

進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)，正常的腎組織無(wú)Notch2蛋白表達(dá)，僅見(jiàn)少量的Hes-1蛋白表達(dá)，與既往的文獻(xiàn)報(bào)道一致[11]。然而IR誘導(dǎo)腎組織Notch2和Hes-1蛋白表達(dá)顯著增多，提示腎IRI時(shí)腎小管上皮細(xì)胞Notch2/Hes-1信號(hào)通路被重新激活。本研究結(jié)果還發(fā)現(xiàn)，Notch2和Hes-1蛋白表達(dá)的高峰時(shí)間與TNF-α、IL-6和MCP-1表達(dá)一致，于再灌注后24 h達(dá)高峰，提示Notch2/Hes-1信號(hào)通路的活化可能參與腎IRI時(shí)腎小管上皮細(xì)胞TNF-α、IL-6和MCP-1的轉(zhuǎn)錄。筆者進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)，DAPT選擇性地阻斷Notch信號(hào)活化后，TNF-α、IL-6和MCP-1表達(dá)顯著下調(diào)，表明活化的Notch2/Hes-1信號(hào)通路可能參與調(diào)控TNF-α、IL-6和MCP-1的轉(zhuǎn)錄。

目前，國(guó)內(nèi)外尚未見(jiàn)Notch信號(hào)通路活化是否參與腎IRI相關(guān)炎癥的報(bào)道，但較多研究表明，Notch信號(hào)通路的活化參與多種炎癥病理過(guò)程，如KANG等[12]研究證實(shí)，Notch信號(hào)通路參與過(guò)敏性哮喘的炎癥病理過(guò)程，γ-secretase抑制劑可通過(guò)調(diào)節(jié)Th1和Th2細(xì)胞的反應(yīng)，抑制NF-κB信號(hào)活化，從而減輕過(guò)敏性哮喘的炎癥反應(yīng)。NAKAZAWA等[13-14]研究表明，類(lèi)風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎滑膜細(xì)胞的Notch1信號(hào)表達(dá)增多，γ-secretase酶抑制劑可以抑制TNF-α 誘導(dǎo)的類(lèi)風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎滑膜細(xì)胞增生，提示Notch信號(hào)通路可能參與類(lèi)風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎的炎癥過(guò)程。FERNANDEZ等[15]研究發(fā)現(xiàn)，在TNF-α 刺激下，骨髓的微環(huán)境表達(dá)Notch受體及配體增多。因此，筆者推測(cè)Notch信號(hào)通路的活化可能參與腎IRI相關(guān)的炎癥過(guò)程。DAPT處理可降低血清BUN、Scr水平，改善腎小管間質(zhì)損傷，提示DAPT具有良好的腎保護(hù)作用。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)，DAPT可下調(diào)Notch2、Hes-1、TNF-α、IL-6、MCP-1的表達(dá)，提示DAPT的腎保護(hù)作用可能與一定程度地阻斷Notch2/Hes-1信號(hào)通路活化后，繼而抑制TNF-α、IL-6和MCP-1的轉(zhuǎn)錄，發(fā)揮抗炎作用有關(guān)。本研究從體內(nèi)外證實(shí)Notch信號(hào)通路有望作為急性腎損傷治療的新靶點(diǎn)。

[1]黃仁發(fā),周巧玲,彭衛(wèi)生,等.腎缺血-再灌注損傷后TNF-α、IL-6和MCP-1表達(dá)變化的意義[J].中國(guó)現(xiàn)代醫(yī)學(xué)雜志,2012,22(21):13-17.

[2]NAKAGAWA T,ZHU H,MORISHIMA M,et al.Caspase-12 mediates endoplasmic-reticulum-specific apoptosis and cytotoxicity by amyloid-β[J].Nature,2000,403(5):98-103.

[3]NANTIE LB,HIMES AD,GETZ DR,et al.Notch signaling in postnatal pituitary expansion:proliferation,progenitors,and cell specification[J].Mol Endocrinol,2014,28(5):731-744.

[4]ILAGAN MX,KOPAN R.Snapshot:notch signaling pathway[J].Cell,2007,128(6):1246-1249.

[5]PERCO P,PLEBAN C,KAINZ A,et al.Gene expression and biomarkers in renal transplant ischemia reperfusion injury[J].Transpl Int,2007,20(1):2-11.

[6]裘鎧杰,胡彥華,吳德全.Notch信號(hào)通路與腫瘤侵襲、轉(zhuǎn)移的研究進(jìn)展[J].胃腸病學(xué)和肝病學(xué)雜志,2014,23(11):1362-1364

[7]趙峻峰,祝驥,陳微,等.丹參酮ⅡA對(duì)缺血再灌注損傷的乳鼠心肌細(xì)胞Notch信號(hào)通路的影響[J].中國(guó)現(xiàn)代應(yīng)用藥學(xué),2014,31(12):1435-1439

[8]黃穎而,許嘉彬,安海燕.Notch信號(hào)通路對(duì)肝纖維化EMT環(huán)節(jié)的影響[J].世界華人消化雜志,2014,22(30):4588-4592.

[9]秦亞錄,劉天虎.Notch信號(hào)通路在風(fēng)濕性心臟病炎癥相關(guān)發(fā)病機(jī)制中的研究進(jìn)展[J].心血管病學(xué)進(jìn)展,2014,35(6):740-743.

[10]KOBAYASHI T,TERADA Y,KUWANA H,et al.Expression and function of the Delta-1/Notch-2/Hes-1 pathway during experimental acute kidney injury[J].Kidney International,2008,73(11):1240-1250.

[11]SCHWEISGUTH F.Notch signaling activity[J].Curr Biol,2004,14(3):129-138.

[12]KANG JH,KIM BS,UHM TG,et al.Gamma-secretase inhibitor reduces allergic pulmonary inflammation by modulating Th1 and Th2 responses[J].Am J Respir Crit Care Med,2009,179(10):875-882

[13]NAKAZAWA M,ISHII H,NAKAMURA H,et al.NF kappa B2 (p52)promoter activation via Notch signaling pathway in rheumatoid synoviocytes[J].Int JMol Med,2001,7(1):31-35.

[14]NAKAZAWA M,ISHII H,AONO H,et al.Role of Notch-1 intracellular domain in activation of rheumatoid synoviocytes[J].Arthritis Rheum,2001,44(7):1545-1554.

[15]FERNANDEZ L,RODRIGUEZ S,HUANG H,et al.Tumor necrosis factor-alpha and endothelial cells modulate notch signaling in the bone marrow microenvironment during inflammation[J].Exp Hematol,2008,36(5):545-558.