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      飼料中粗蛋白測定的影響因素分析

      2015-11-27 18:26丁進(jìn)海
      現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科技 2015年17期
      關(guān)鍵詞:催化劑飼料影響因素

      丁進(jìn)海

      摘要 根據(jù)粗蛋白測定過程中的各個(gè)步驟研究了飼料中粗蛋白測定中消化爐的溫度、消化爐消化的時(shí)間、催化劑用量、硼酸吸收液加堿量、蒸餾時(shí)間以及鹽酸濃度等影響因素,并確定一些常規(guī)飼料中蛋白質(zhì)測定的條件。試驗(yàn)結(jié)果表明,消化溫度為420 ℃時(shí)效果最佳,消化時(shí)間最好控制在2 h以上,催化劑用量以6.4 g最為準(zhǔn)確,硼酸吸收液是否加堿對(duì)測定結(jié)果影響較小,蒸餾時(shí)間在5 min之后蒸餾完全,鹽酸的濃度選擇則需要根據(jù)試樣的大體粗蛋白含量進(jìn)行選擇,因此影響消化效果的因素主要有消化溫度、消化時(shí)間、催化劑用量。

      關(guān)鍵詞 飼料;粗蛋白測定;影響因素;消化溫度;消化時(shí)間;催化劑

      中圖分類號(hào) S816.4 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A 文章編號(hào) 1007-5739(2015)17-0302-03

      粗蛋白是食品以及飼料中含氮化合物的總稱,蛋白質(zhì)是生命活動(dòng)的基礎(chǔ),是構(gòu)成生命體細(xì)胞、抗體、免疫激素、酶等的主要成分,也是人類以及動(dòng)物個(gè)體補(bǔ)充能量的原料。特別是飼料中蛋白質(zhì)含量的高低或者蛋白質(zhì)的品質(zhì)都很重要,關(guān)乎一些動(dòng)物個(gè)體的生長速度、新陳代謝、繁殖發(fā)育,因此測定飼料中的蛋白質(zhì)對(duì)于人類生活顯得尤為重要。如今,隨著人民生活水平的提高,對(duì)肉蛋禽類食品的需求量日益增加,而與其對(duì)應(yīng)的飼料工業(yè)也快速發(fā)展和進(jìn)步。雖然粗蛋白測定仍然無法鑒別三聚氰胺、尿素以及添加劑中某些含氮物質(zhì),但是粗蛋白質(zhì)的含量也大體代表了飼料中蛋白含量,因此飼料中粗蛋白質(zhì)含量的測定也越來越重要[1-3]。

      粗蛋白檢測方法有國標(biāo)法、強(qiáng)堿直接蒸餾法、雙氧水測定法、雙縮脲法、凱氏定氮法,最常用的檢測方法是凱氏定氮法。凱氏定氮法是影響因素易控制的方法,原理是試樣與濃硫酸和催化劑一同消化,使蛋白質(zhì)遭到破壞,使試樣中的蛋白質(zhì)氮及其他有機(jī)氮轉(zhuǎn)化為氨態(tài)氮,然后與硫酸結(jié)合生成硫酸銨,加入堿進(jìn)行蒸餾使氨逸出,用硼酸吸收后,再以酸標(biāo)準(zhǔn)溶液滴定,測出含氮量[4-6]。

      凱氏定氮法影響因素:消化溫度對(duì)測定飼料中粗蛋白的影響,溫度過高或者過低都會(huì)造成數(shù)據(jù)偏高,溫度過低是因?yàn)橄煌耆?,溫度過高會(huì)造成氮的散失;消化時(shí)間對(duì)測定蛋白的影響和消化溫度差不多;催化劑影響了消化的速度;硼酸吸收液也會(huì)影響測定的精度;蒸餾時(shí)間對(duì)結(jié)果也會(huì)有影響;選用合適的鹽酸濃度,對(duì)測定飼料中粗蛋白的含量精度也很重要。

      1 材料與方法

      1.1 試驗(yàn)材料

      試驗(yàn)飼料選用大豆粕、進(jìn)口魚粉、玉米秸稈,其他試驗(yàn)儀器與試劑詳見《GB/T6432—1994飼料中粗蛋白測定方法》[7]。

      1.2 試驗(yàn)方法

      1.2.1 凱氏定氮法測定飼料中的粗蛋白。蛋白質(zhì)是一種含氮有機(jī)化合物,飼料中的蛋白質(zhì)包括真蛋白和非蛋白氮,統(tǒng)稱為為粗蛋白,凱氏定氮法適合一些配合飼料、濃縮飼料和一些單一飼料粗蛋白的測定[7],將試樣中的含氮物質(zhì)經(jīng)過催化劑和濃硫酸的共同消化,把試樣中的含氮有機(jī)物轉(zhuǎn)化成硫酸銨的形式,再經(jīng)過凱氏定氮儀進(jìn)行蒸餾,加堿,使硫酸銨中的氨反應(yīng)生成氨氣。再用硼酸吸收液將氨氣或者氨水吸收,再用鹽酸進(jìn)行滴定,根據(jù)換算系數(shù)、計(jì)算公式,計(jì)算出試樣中含有的粗蛋白含量。

      1.2.2 消化爐設(shè)定溫度的影響試驗(yàn)??刂撇煌O(shè)定溫度,進(jìn)行單因素試驗(yàn),試驗(yàn)樣品采用大豆粕。溫度設(shè)置380、400、420、440、460 ℃ 5個(gè)梯度,設(shè)定空白試驗(yàn)(即不加大豆粕,其他試驗(yàn)條件相同)作為對(duì)照,根據(jù)凱氏定氮法進(jìn)行消化蒸餾滴定。

      1.2.3 消化爐消化時(shí)間的影響試驗(yàn)??刂撇煌瘯r(shí)間進(jìn)行單因素變量試驗(yàn),設(shè)定消化時(shí)間分別為30、60、120、180、240、300 min 6個(gè)不同的溫度,試驗(yàn)樣品采用大豆粕,每個(gè)溫度稱取2組,再做2個(gè)空白組對(duì)照試驗(yàn),其他試驗(yàn)條件保持不變,均采用GB/T6432—94中規(guī)定的試驗(yàn)條件,根據(jù)凱氏定氮法進(jìn)行消化蒸餾滴定。

      1.2.4 催化劑用量的影響試驗(yàn)。采用硫酸銅∶硫酸鉀=1∶15的混合催化劑進(jìn)行對(duì)比試驗(yàn),試驗(yàn)樣品采用大豆粕,分別設(shè)置3.4、4.4、5.4、6.4、7.4 g 5個(gè)不同量的催化劑用量,不同溫度稱取2組,再做2個(gè)空白組對(duì)照試驗(yàn),其他試驗(yàn)條件保持不變,均采用GB/T6432—94中規(guī)定的試驗(yàn)條件,根據(jù)凱氏定氮法進(jìn)行消化蒸餾滴定。

      1.2.5 硼酸吸收液加堿的影響試驗(yàn)。配置不同的催化劑進(jìn)行單一因素變量試驗(yàn),根據(jù)GB/T6432—94中硼酸的配置方法進(jìn)行配置,設(shè)2個(gè)處理,即1 000 mL硼酸吸收液中加入0.5 mL 4%氫氧化鈉(A),硼酸吸收液中不加氫氧化鈉(B),其他試驗(yàn)因素按照GB/T6432—94中規(guī)定的試驗(yàn)條件進(jìn)行蒸餾滴定。并分別做了空白和回收率試驗(yàn),每組試驗(yàn)做了3個(gè)平行試驗(yàn)。在試驗(yàn)中吸收液的酸堿度是否合適,可以通過以下方式進(jìn)行簡單的判斷:移取10 mL硼酸吸收液,先加入100 mL蒸餾水,再加入幾滴蛋白指示劑,如果指示劑變色,則說明酸度合適;如果仍然為紅色,那么需要往硼酸吸收液中加適量的堿。硼酸的濃度對(duì)結(jié)果影響不大,均能夠完全吸收氨氣,因?yàn)榕鹚崾亲銐蜻^量的。由于硼酸是一種酸性極弱的酸,所以pH值比較容易調(diào)節(jié),而且容易與蒸餾出來的氨結(jié)合形成硼酸銨,利于用鹽酸進(jìn)行滴定,無其他化學(xué)反應(yīng)的干擾。

      1.2.6 蒸餾時(shí)間的影響試驗(yàn)。蒸餾時(shí)間設(shè)3、4、5、6、7 min 5個(gè)梯度,其他因素保持不變,試驗(yàn)具體操作根據(jù)GB/T6432—94中試驗(yàn)步驟進(jìn)行的標(biāo)準(zhǔn)鹽酸滴定溶液測定,根據(jù)凱氏定氮法進(jìn)行消化蒸餾滴定。

      1.2.7 鹽酸濃度的影響試驗(yàn)。選用0.10、0.05、0.01 mol/L 3個(gè)濃度的標(biāo)準(zhǔn)鹽酸滴定溶液和3種蛋白質(zhì)含量不同的樣品(魚粉、大豆粕、玉米秸稈飼料)進(jìn)行分組交叉試驗(yàn),同時(shí)分別做空白對(duì)照試驗(yàn),共12組平行試驗(yàn)。其他試驗(yàn)條件保持不變,均采用GB/T6432—94中規(guī)定的試驗(yàn)條件,根據(jù)凱氏定氮法進(jìn)行消化蒸餾滴定。

      1.3 數(shù)據(jù)計(jì)算endprint

      設(shè)定3個(gè)平行試驗(yàn),運(yùn)用Excel對(duì)結(jié)果進(jìn)行處理制表和繪圖。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 消化溫度的影響

      控制消化爐溫度試驗(yàn)結(jié)果見圖1。380、400 ℃的消化管中顏色為不透明的黑色,證明沒有消化完全,而其他溫度下的消化管均為藍(lán)色透明。分析數(shù)據(jù)表明,消化溫度以420 ℃效果最佳。

      2.2 消化時(shí)間的影響

      控制消化時(shí)間試驗(yàn)結(jié)果見圖2。30 min消化出的樣品為黑色,60 min為淡藍(lán)色,其他時(shí)間消化出的樣品均為藍(lán)透明色。分析試驗(yàn)數(shù)據(jù)表明:在樣品變綠后消化30 min蛋白質(zhì)的含量偏低,隨著消化時(shí)間的不斷增大,蛋白含量逐漸增加,從2 h開始,蛋白質(zhì)含量增加緩慢,消化2 h的蛋白質(zhì)含量和消化5 h的蛋白含量沒有顯著差異,由此可見樣品消化時(shí)間最好控制在樣品變綠后2 h以上。

      2.3 催化劑用量的影響

      控制催化劑用量的單因素變量試驗(yàn)結(jié)果見圖3。催化劑用量為3.4、4.4 g的試驗(yàn)組消化完的樣品顏色均為黑色,催化劑用量為6.4 g的試驗(yàn)組為藍(lán)色透明色,催化劑用量為7.4 g的試驗(yàn)組樣品消化管內(nèi)壁有黑色渣子。通過試驗(yàn)數(shù)據(jù)表明,在催化劑用量6.4 g的情況下消化最為完全準(zhǔn)確,催化劑用量過多會(huì)造成消化管內(nèi)壁有黑色殘?jiān)?,催化劑用量太少?dǎo)致消化不完全,均對(duì)結(jié)果有不利影響。

      2.4 硼酸吸收液是否加堿的影響

      通過控制硼酸吸收液是否加堿用量,探究硼酸吸收液是否加堿對(duì)試驗(yàn)結(jié)果的影響,分析數(shù)據(jù)見表1??梢钥闯?,試驗(yàn)中硼酸吸收液中加入適量的堿,會(huì)導(dǎo)致空白值增大。但是對(duì)測定結(jié)果影響并不大,因?yàn)榕鹚嵛找核釅A度對(duì)飼料樣品和空白對(duì)照組的作用是一致的,這樣就可以將影響抵消。

      2.5 蒸餾時(shí)間的影響

      對(duì)蒸餾時(shí)間進(jìn)行控制的單因素變量試驗(yàn)結(jié)果見圖4。通過試驗(yàn)數(shù)據(jù)表明,蒸餾時(shí)間在5 min之后,消化管中的游離氨全部被蒸餾出來,被硼酸吸收。3~4 min時(shí)未蒸餾完全;5~7 min都在允差范圍內(nèi),表明蒸餾完全;但是在7 min時(shí),蒸餾液已經(jīng)超過了錐形瓶的2/3,不利于進(jìn)行滴定試驗(yàn)。

      2.6 鹽酸濃度的影響

      對(duì)魚粉、豆粕、秸稈飼料3個(gè)樣品分別用3種不同濃度鹽酸進(jìn)行滴定的結(jié)果見圖5~7。通過分析,魚粉組在3種鹽酸濃度中濃度大小與誤差的大小成正相關(guān)關(guān)系,即鹽酸的濃度越小,對(duì)測定的結(jié)果差異越大。而玉米秸稈飼料組的數(shù)據(jù)也與鹽酸的濃度成一定的規(guī)律(僅限這3種濃度下),即鹽酸濃度越大,其平行數(shù)據(jù)間的誤差越大,標(biāo)準(zhǔn)差較大。經(jīng)過試驗(yàn)統(tǒng)計(jì),每種樣品鹽酸滴定的平均消耗用量見表2。通過以上數(shù)據(jù)表格分析,鹽酸在滴定量小于5 mL或者大于40 mL時(shí),滴定誤差比較大,蛋白含量較高時(shí)適合用高濃度酸滴定,蛋白含量較低時(shí)適合用低濃度的鹽酸滴定溶液更準(zhǔn)確。

      3 結(jié)論與討論

      消化溫度會(huì)影響消化的完全程度,從而影響測定粗蛋白的試驗(yàn)結(jié)果,溫度小于420 ℃會(huì)導(dǎo)致數(shù)據(jù)偏小,溫度過高導(dǎo)致蛋白質(zhì)變性,氨類物質(zhì)散失,也會(huì)導(dǎo)致數(shù)據(jù)偏小,造成試驗(yàn)誤差。消化時(shí)間的長短就比較容易控制,只要消化時(shí)間達(dá)到2 h,消化就可以反應(yīng)完全,而超過2 h,試驗(yàn)數(shù)據(jù)表明,粗蛋白的含量沒有顯著增加或減少,因此建議達(dá)到2 h。催化劑用量在6.4 g最為準(zhǔn)確,過少導(dǎo)致消化不完全,過多會(huì)導(dǎo)致消化管產(chǎn)生黑殘?jiān)?;而硼酸?duì)于粗蛋白測定結(jié)果的影響較小,在調(diào)節(jié)pH值加入堿后,試驗(yàn)滴定空白更加明顯,有利于顏色判斷;蒸餾時(shí)間在5 min之后蒸餾完全;鹽酸的濃度選擇則需要根據(jù)試樣的大體粗蛋白含量進(jìn)行選擇,通過對(duì)影響粗蛋白測定的每個(gè)因素進(jìn)行單因素變量試驗(yàn)的分析,對(duì)粗蛋白測定結(jié)果影響最大的是消化階段,而影響消化效果的因素主要為消化溫度、消化時(shí)間、催化劑用量。

      4 參考文獻(xiàn)

      [1] 李成會(huì),朱蓮英.不同消化方法對(duì)飼料中粗蛋白質(zhì)測定值的影響[J].江西飼料,2006(2):25-26.

      [2] 朱蓮英,邰秀林.溫度、水分對(duì)貯藏中配合飼料蛋白質(zhì)的影響[J].飼料工業(yè),2005(5):46-48.

      [3] 李興芳,王士長,李廣平.粗蛋白不同測定方法的比較[J]飼料工業(yè),2003(8):37-38.

      [4] 程彥偉,李培睿,李宗義,等.飼料粗蛋白含量分析方法比較[J].飼料工業(yè),2001(11):36-37.

      [5] 龍翔,邰秀林.溫度、水分對(duì)貯藏中配合飼料蛋白質(zhì)的影響[J].飼料工業(yè),2005(5):46-48.

      [6] 路蘋,于同泉,王淑英,等.蛋白質(zhì)測定方法評(píng)價(jià)[J].北京農(nóng)學(xué)院學(xué)報(bào),2006(2):69-73.

      [7] 飼料中粗蛋白測定方法:GB/T 6432-1994 [S].北京:中國標(biāo)準(zhǔn)出版社,1994.endprint

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