陳偉 ,周鵬宇,朱永杰,馬勝利,曹葉,4,張萍萍,5,何湘,魏從文,鐘輝,吳飛翔
1.廣西醫(yī)科大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院 肝膽外科,廣西 南寧 530021;2.軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院 生物工程研究所,北京 100850;3.安徽大學(xué) 健康科學(xué)院,安徽 合肥 230039;4.吉林大學(xué) 分子酶學(xué)工程實(shí)驗(yàn)室,吉林 長(zhǎng)春 130012;5.濟(jì)南軍區(qū)總醫(yī)院 實(shí)驗(yàn)檢驗(yàn)科,山東 濟(jì)南 250031
乳腺癌是現(xiàn)代女性最常見的腫瘤之一,它的發(fā)生發(fā)展和許多因素相關(guān),其中與雌激素受體(estrogen receptor,ER)的關(guān)系最為密切[1-2]。ER屬于類固醇核受體,包括ERα和ERβ兩個(gè)亞型,ERα促進(jìn)乳腺癌的發(fā)生發(fā)展,而ERβ抑制乳腺癌的發(fā)生[3-4]。目前關(guān)于ERα的研究相對(duì)較多。ERα含595個(gè)氨基酸殘基,相對(duì)分子質(zhì)量約為66×103,包含5 個(gè)結(jié)構(gòu)域,依次為不依賴配體激活的AF1、負(fù)責(zé)與靶基因啟動(dòng)子的雌激素反應(yīng)元件(estrogen receptor elements,ERE)特異結(jié)合的DNA 結(jié)合域(DNA binding domain,DBD)、核定位信號(hào)的鉸鏈區(qū)、配體結(jié)合功能區(qū)(ligand-binding domain,LBD)和配體依賴轉(zhuǎn)錄的AF2,以及功能不詳?shù)目勺儏^(qū)[5-7]。ERα常發(fā)生翻譯后修飾,如磷酸化、泛素化、甲基化、乙?;UMO、棕櫚化,其中以磷酸化最為常見?,F(xiàn)已報(bào)道的ERα磷酸化位點(diǎn)有十幾個(gè),其中研究比較透徹的有7個(gè),為S104、S106、S118、S167、S236、S305 及Y537[8-9]。不同區(qū)域磷酸化對(duì)ERα的作用也不同,如DBD區(qū)的S236 位點(diǎn)在蛋白激酶A 作用下發(fā)生磷酸化,從而抑制ERα二聚化形成,阻斷其與DNA 的結(jié)合;而由Src酪氨酸激酶介導(dǎo)的Y537 磷酸化主要調(diào)節(jié)ERα與E2的結(jié)合能力[10-11]。這些翻譯后修飾常常調(diào)節(jié)ERα與ERE的結(jié)合,從而激活或抑制下游基因的轉(zhuǎn)錄,包括c-myc、BCL-2、Bcl-XL、Cyclin D1、IL-8,這些下游基因與乳腺癌的發(fā)生、發(fā)展有著密切的關(guān)系[12-13]。因此,ERα翻譯后修飾常為乳腺癌研究的重點(diǎn)和熱點(diǎn)。
本課題組前期在乳腺癌相關(guān)研究中,通過質(zhì)譜分析發(fā)現(xiàn)在ERα DBD 區(qū)224 位蘇氨酸(T224)和可變區(qū)559 位絲氨酸(S559)發(fā)生磷酸化。雖然559 位絲氨酸發(fā)生磷酸化已有報(bào)道,但對(duì)其研究尚少[9],而224 位蘇氨酸磷酸化尚無報(bào)道。為此,我們構(gòu)建了ERα 224 位蘇氨酸、559 位絲氨酸磷酸化突變點(diǎn)載體,通過螢光素酶報(bào)告基因方法檢測(cè)這些突變位點(diǎn)對(duì)ERα活性是否產(chǎn)生影響。
HEK293T 細(xì)胞、感受態(tài)大腸桿菌DH5α、pRL 質(zhì)粒、ERE 啟動(dòng)子的螢光素酶報(bào)告基因質(zhì)粒(EREluc)及pcDNA3-Flag 均為本實(shí)驗(yàn)室保存;真核表達(dá)質(zhì)粒pcDNA3-Flag-ERα為本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建保存;引物合成及測(cè)序由奧科鼎盛生物技術(shù)公司完成;限制性內(nèi)切酶、T4DNA連接酶等購(gòu)自TaKaRa公司;高保真PfuDNA聚合酶、膠回收試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒購(gòu)自Tiangen 公司;螢光素酶活性測(cè)定試劑盒購(gòu)自Promega公司;DMEM培養(yǎng)基購(gòu)自Gibco生物公司;胎牛血清購(gòu)自杭州江濱公司;轉(zhuǎn)染試劑LipofectAMINE 2000 購(gòu)自Invitrogen 公司;鼠抗Flag 抗體購(gòu)自Santa Cruz公司;雌激素、HRP標(biāo)記的鼠抗微管蛋白抗體購(gòu)自Sigma 公司;HRP 標(biāo)記的羊抗鼠購(gòu)自北京中杉金橋生物有限公司。
利用重組PCR擴(kuò)增ERα(T224A)、ERα(S559A)突變片段,即ACC突變?yōu)镚CC、TCC突變?yōu)镚CC。根據(jù)ERα基因序列及點(diǎn)突變需要設(shè)計(jì)引物(表1),由奧科鼎盛生物技術(shù)有限公司合成。
以本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建保存的野生型ERα質(zhì)粒為模板,用相應(yīng)的引物,通過PCR 擴(kuò)增出含有點(diǎn)突變的上、下游目的基因片段(擴(kuò)增條件:95℃預(yù)變性5 min;95℃變性30 s,55℃退火30 s,68℃延伸90 s,進(jìn)行30 個(gè)循環(huán);68℃延伸7 min),經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳及上、下游片段回收,以等摩爾比例的上、下游配對(duì)片段為共同模板,利用搭橋法進(jìn)行二次PCR(擴(kuò)增條件:95℃預(yù)變性5 min;95℃變性30 s,55℃退火30 s,68℃延伸120 s,進(jìn)行30 個(gè)循環(huán);68℃延伸7 min),擴(kuò)增出點(diǎn)突變的全長(zhǎng)目的基因片段。
把全長(zhǎng)點(diǎn)突變片段、pcDNA3-Flag 質(zhì)粒分別用限制性內(nèi)切酶BamHⅠ/EcoRⅠ于37℃雙酶切過夜,利用瓊脂糖凝膠電泳回收酶切片段和質(zhì)粒,再以6∶1(片段∶質(zhì)粒)的比例混合,室溫連接10 min后把連接產(chǎn)物直接轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,在氨芐西林培養(yǎng)板上于37℃培養(yǎng)過夜,篩選陽(yáng)性克隆,以陽(yáng)性克隆為模板再次行PCR,確定重組質(zhì)粒上含有目的基因片段后,送奧科鼎盛生物科技有限公司測(cè)序。
用含10%胎牛血清、200 U/mL 青霉素、200 U/mL鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基,在5% CO2、37℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)HEK293T細(xì)胞,當(dāng)細(xì)胞長(zhǎng)至10 mm培養(yǎng)皿的60%~80%時(shí)用于轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染前1 h 更換4 mL 新鮮培養(yǎng)基。先把4 μg 構(gòu)建的質(zhì)粒、4 μL 轉(zhuǎn)染試劑LipofectAMINE 2000 分別加入200 μL 生理鹽水中混合,靜置5 min,把混有轉(zhuǎn)染試劑的生理鹽水加入混有質(zhì)粒的生理鹽水中,靜置15 min,均勻地加入培養(yǎng)基中,4 h后補(bǔ)4~6 mL新鮮培養(yǎng)基。
轉(zhuǎn)染24 h 后收集細(xì)胞,加入SDS 上樣緩沖液(50 mmol/L Tris-HCl pH6.8,0.1%溴酚藍(lán),2%SDS,10%甘油,2.5% β-巰基乙醇),沸水浴10 min,離心10 min 后取上清進(jìn)行SDS-PAGE,電泳結(jié)束后轉(zhuǎn)移至PVDF 膜上,用5%脫脂牛奶室溫封閉1 h 或4℃過夜,然后加入稀釋的Flag 抗體,室溫孵育1 h或4℃孵育過夜;用1×TBST洗膜3次,每次5 min,再加入稀釋的帶有辣根過氧化物酶偶聯(lián)的羊抗鼠IgG,室溫孵育1 h,再次用1×TBST洗膜3次,每次5 min,然后將含有辣根過氧化物酶底物的ECL 滴加至膜上,隨即在暗室中壓片顯影。
表1 引物及序列
把HEK293T 細(xì)胞接種到6 孔板培養(yǎng),用無指示劑的白色DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h,等長(zhǎng)至60%~80%時(shí)進(jìn)行轉(zhuǎn)染。實(shí)驗(yàn)組設(shè)立分別為:①pcDNA3-Flag(1 μg/孔);②pcDNA3-Flag-ERα質(zhì)粒(1 μg/孔);③pcDNA3-Flag-ERα(T224A)突變質(zhì)粒(1 μg/孔);④pcDNA3-Flag-ERα(S559A)突變質(zhì)粒(1 μg/孔)。以上組均與ERE-luc 質(zhì)粒(0.8 μg/孔)、pRL 質(zhì)粒(0.008 μg/孔)共轉(zhuǎn),培養(yǎng)基中加入或不加入雌激素(10 nmol/L),共8組,每組設(shè)3個(gè)復(fù)孔。培養(yǎng)24 h后進(jìn)行螢光素酶報(bào)告基因檢測(cè)。先用1×PBS洗滌細(xì)胞2 次,再向各孔中加入100 μL 細(xì)胞裂解緩沖液,室溫輕搖15 min,把細(xì)胞裂解物收集到1.5 mL離心管中,4℃、12 000 r/min 離心5 min,取30 μL 上清用于螢光素酶活性測(cè)定。
實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用SPSS13.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件處理,采用t檢驗(yàn)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。顯著性概率水平定為P<0.05。
以pcDNA3-Flag-ERα質(zhì)粒為模板,通過重組PCR 擴(kuò)增點(diǎn)突變的上、下游片段。經(jīng)電泳鑒定(圖1),T224A上、下游片段為600~1000 bp,S559A上游約1700 bp,下游約100 bp;再以配對(duì)上、下游片段為共同模板,二次PCR擴(kuò)增出全長(zhǎng)的突變基因片段,均約1800 bp。
將T224A、S559A 突變體擴(kuò)增產(chǎn)物和pcDNA3-Flag質(zhì)粒均用BamHⅠ/EcoRⅠ雙酶切,回收,連接后轉(zhuǎn)入大腸桿菌DH5α,用氨芐西林培養(yǎng)板培養(yǎng)。以陽(yáng)性克隆菌液為模板,重復(fù)PCR 檢測(cè)質(zhì)粒中是否含有目的基因片段。電泳結(jié)果如圖2,PCR 產(chǎn)物約1800 bp,證明質(zhì)粒上含有目的基因片段。測(cè)序結(jié)果進(jìn)一步證明插入片段為ERα突變體片段(序列略)。
圖1 瓊脂糖凝膠檢測(cè)PCR擴(kuò)增ERα突變體產(chǎn)物
分別將pcDNA3-Flag-ERα、pcDNA3-Flag-ERα(T224A)、pcDNA3-Flag-ERα(S559A)及對(duì)空載體對(duì)照pcDNA3-Flag質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞,培養(yǎng)24 h后收集細(xì)胞,用抗Flag 抗體檢測(cè)pcDNA3-Flag-ERα(T224A)、pcDNA3-Flag-ERα(S559A)的表達(dá),Western 印跡結(jié)果如圖3。與空載體對(duì)照組相比,轉(zhuǎn)染pcDNA3-Flag-ERα、pcDNA3-Flag-ERα(T224A)和pcDNA3-Flag-ERα(S559A)的細(xì)胞,均顯示有一條相對(duì)分子質(zhì)量約66×103的特異性條帶,與預(yù)期大小吻合,說明pcDNA3-Flag-ERα、pcDNA3-Flag-ERα(T224A)、pcDNA3-Flag-ERα(S559A)在HEK293T細(xì)胞中均獲得良好表達(dá)。
圖2 突變體表達(dá)質(zhì)粒的PCR鑒定
圖3 ERα及突變體的Western印跡檢測(cè)
圖4 ERα及其突變體在有或無E2時(shí)的轉(zhuǎn)錄激活活性檢測(cè)
將pcDNA3-Flag、pcDNA3-Flag-ERα、pcDNA3-Flag-ERα(T224A)、pcDNA3-Flag-ERα(S559A)分別與ERE-luc 和pRL 共轉(zhuǎn)入HEK293T 細(xì)胞,用無指示劑的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h后收集細(xì)胞,行螢光素酶活性檢測(cè),結(jié)果如圖4。無雌激素時(shí),pcDNA3-Flag-ERα、pcDNA3-Flag-ERα(T224A)和pcDNA3-Flag-ERα(S559A)的活性分別是pcDNA3-Flag 的1.94、1.49 和1.84 倍(P<0.05);與pcDNA3-Flag-ERα(T224A)相比,pcDNA3-Flag-ERα和pcDNA3-Flag-ERα(S559A)的活性明顯減低(P<0.05),pcDNA3-Flag-ERα(S559A)與pcDNA3-Flag-ERα的活性差異不顯著(P<0.05)。有雌激素時(shí),pcDNA3-Flag 活性增加了0.54 倍,pcDNA3-Flag-ERα活性增強(qiáng)了1.57 倍,而pcDNA3-Flag-ERα(T224A)和pcDNA3-Flag-ERα(S559A)活性分別增強(qiáng)了0.54 和0.61 倍,說明在雌激素作用下,pcDNA3-Flag-ERα活性增強(qiáng)明顯高于pcDNA3-Flag-ERα(T224A)和pcDNA3-Flag-ERα(S559A)(P<0.05)。因此,在HEK293T 細(xì)胞中,224 位蘇氨酸的磷酸化修飾對(duì)ERα活性起著重要的作用,同時(shí)2 個(gè)磷酸化位點(diǎn)對(duì)雌激素調(diào)節(jié)ERα的活性也發(fā)揮重要作用。
ERα與乳腺癌的發(fā)生、發(fā)展、轉(zhuǎn)移和治療效果密切相關(guān),因此乳腺癌的內(nèi)分泌治療主要以ERα介導(dǎo)的通路為靶點(diǎn),如氟維司群(fulvestrant)抑制ERα的表達(dá);他莫昔芬(tamoxifen)競(jìng)爭(zhēng)性結(jié)合ERα,減少雌激素與ERα結(jié)合[14-15]。但在臨床上內(nèi)分泌治療常常出現(xiàn)耐藥性,這些耐藥性常與翻譯后修飾有關(guān),其中以磷酸化最為常見[2],因此,研究ERα的磷酸化對(duì)探討耐藥機(jī)制及藥物開發(fā)都有重要意義[16-17]。
有關(guān)ERα磷酸化的研究很多,已報(bào)道有十幾個(gè)磷酸化位點(diǎn)分布在各個(gè)區(qū)域,其中研究較透徹的位點(diǎn)有7 個(gè),包括AF1 區(qū)的S104、S106、S118、S167,DBD 區(qū)的S236,LBD 區(qū)的S305 及AF2 區(qū)的Y537。前期我們通過質(zhì)譜分析發(fā)現(xiàn),ERα在DBD 區(qū)的224位蘇氨酸和可變區(qū)的559 位絲氨酸發(fā)生磷酸化,而目前關(guān)于559位絲氨磷酸化的研究甚少,而224位蘇氨酸磷酸化的研究尚無報(bào)道。我們通過構(gòu)建ERα 224 位蘇氨酸、559 位絲氨磷酸化位點(diǎn)突變體,利用螢光素酶報(bào)告基因活性檢測(cè)法檢測(cè)其活性的改變,發(fā)現(xiàn)224位蘇氨酸突變體活性減弱,而559位絲氨突變體對(duì)雌激素調(diào)控減弱。這可能與224位蘇氨酸處于DBD 區(qū)有關(guān),該區(qū)主要負(fù)責(zé)與靶基因啟動(dòng)子的ERE 結(jié)合,發(fā)生突變后可能與ERE 的結(jié)合能力減弱,從而使ERα活性減弱[18]??勺儏^(qū)功能研究尚未清楚,因結(jié)構(gòu)上與AF2區(qū)相鄰,可能與AF2區(qū)有相似的依賴配體調(diào)節(jié)ERα活性功能。因此,可變區(qū)的559 位絲氨突變后,ERα也發(fā)生受雌激素調(diào)控減弱,但需要進(jìn)一步研究驗(yàn)證??傊珽Rα磷酸化位點(diǎn)突變體的構(gòu)建及其活性的檢測(cè),對(duì)ERα的研究有重要意義,對(duì)乳腺癌的研究也可提供一定的幫助。
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