岳 卓,常玲玲,許方倩偉,佘銳萍
(1.北京天壇生物制品股份有限公司,北京 朝陽 100024;2.中國農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院,北京 海淀 100193;3.西北農(nóng)林科技大學(xué),陜西 楊凌 712100;4.中國生物技術(shù)股份有限公司科研與國際合作部,北京 朝陽 100029)
3-甲基-4-硝基酚對大鼠腎臟氧化損傷作用的研究
岳 卓1,2,常玲玲2,3,許方倩偉4,佘銳萍2
(1.北京天壇生物制品股份有限公司,北京 朝陽 100024;2.中國農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院,北京 海淀 100193;3.西北農(nóng)林科技大學(xué),陜西 楊凌 712100;4.中國生物技術(shù)股份有限公司科研與國際合作部,北京 朝陽 100029)
為了探討3-甲基-4-硝基酚(PNMC)對大鼠腎臟的氧化損傷作用,選擇SPF級雄性SD大鼠,隨機(jī)分為4組(每組10只),設(shè)立3個染毒組和1個對照組。染毒組采用皮下注射的途徑分別給予每天劑量為1mg/kg體重、10mg/kg體重和100mg/kg體重的PNMC,連續(xù)5 d。對照組采用同樣的途徑給予溶劑(PBS+0.05%tween80),最后一次染毒后第24小時剖檢取材。稱量體重和器官重量,觀察腎臟組織病理學(xué)變化,檢測血清中肌酐和尿素氮的含量,以及超氧化物歧化酶、谷胱甘肽過氧化物酶、總抗氧化能力及丙二醛等抗氧化指標(biāo)的含量。結(jié)果顯示,染毒組大鼠體重和日增重出現(xiàn)不同程度的下降;各劑量組大鼠腎臟均有不同程度的病理損傷;100mg/kg體重組大鼠肌酐濃度顯著升高,所有染毒組大鼠超氧化物歧化酶的含量均顯著下降,10mg/kg體重染毒組大鼠總抗氧化能力也顯著低于對照組。綜上所述,PNMC染毒后血清中超氧化物歧化酶的活性降低,同時伴有總抗氧化能力下降,提示大鼠體內(nèi)抗氧化系統(tǒng)遭到破壞,導(dǎo)致過多的過氧化物在體內(nèi)蓄積,從而對大鼠腎臟造成氧化損傷。
3-甲基-4-硝基酚;SD大鼠;腎臟;氧化損傷
3-甲基-4-硝基酚(PNMC)是柴油機(jī)尾氣的重要組織成分,也是殺蟲劑殺螟松在生物體內(nèi)的主要降解產(chǎn)物。研究表明,隨著柴油機(jī)尾氣的大量排放和農(nóng)藥的廣泛使用,PNMC不斷地在環(huán)境中蓄積,通過呼吸道、消化道、皮膚等途徑進(jìn)入人及動物體內(nèi),嚴(yán)重威脅動植物乃至人類的健康[1-2]。
現(xiàn)有研究已經(jīng)證實,氧化應(yīng)激(OS)是外源性物質(zhì)產(chǎn)生毒性作用最基本的分子機(jī)制[3-4]。它主要是由活性氧和脂質(zhì)過氧化物介導(dǎo)生物大分子和脂膜產(chǎn)生自由基,引起氧化損傷和細(xì)胞死亡[5]。有報道表明,PNMC可以引起雞胚精原細(xì)胞產(chǎn)生OS[6],而且當(dāng)暴露于柴油機(jī)尾氣中時可引起OS[7],這些結(jié)果提示,OS可能是PNMC產(chǎn)生毒性作用的重要發(fā)病機(jī)制。我們前期研究證明,PNMC可損傷大鼠腎臟的形態(tài)結(jié)構(gòu)[8],本研究中,我們擬探討PNMC誘導(dǎo)腎臟損傷與OS之間的關(guān)系,為揭示PNMC誘導(dǎo)的腎臟損傷的發(fā)病機(jī)制提供理論依據(jù)。
1.1 實驗動物及飼養(yǎng) 體重160~180 g SPF級 SD雄性大鼠40只,購自中國人民解放軍軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院實驗動物中心,分籠飼養(yǎng)(2~3只/籠),自由飲食。飼養(yǎng)環(huán)境:室溫21℃~24℃,相對濕度:30%~40%,每兩天更換1次墊料。大鼠對飼養(yǎng)環(huán)境適應(yīng)1周后進(jìn)行染毒試驗。大鼠隨機(jī)均分為4組,3個染毒組和1個對照組。其中染毒組分別是1mg/kg體重、10mg/kg體重和100mg/kg體重劑量組,每天采用皮下注射的途徑進(jìn)行染毒,連續(xù)進(jìn)行5 d,對照組皮下注射等量的溶劑(PBS+ 0.05%tween80)。每天觀察大鼠的活動情況并稱重。最后1次染毒后第24小時,無痛處死大鼠,采血并分離血清備用,摘取兩側(cè)的腎臟,稱量器官濕重并計算其臟器系數(shù)(腎臟濕重/體重),右側(cè)腎臟液氮冷凍備用,左側(cè)腎臟用2.5%多聚甲醛-戊二醛固定液充分固定備用。
1.2 組織病理學(xué)觀察 腎臟組織塊經(jīng)固定液充分固定后,按常規(guī)方法進(jìn)行脫水、透明和石蠟包埋,制作成厚度為4μm的連續(xù)切片,進(jìn)行蘇木素-伊紅(H.E.)染色,OLYMPUS顯微鏡進(jìn)行觀察,拍照。
1.3 血清中肌酐和尿素氮水平的測定 為了評價腎臟功能,利用肌酐(Cre)測試盒和尿素氮(BUN)測試盒(均購自南京建成生物工程研究所)檢測血清中的Cre和BUN的水平變化。具體
方法按照試劑盒說明書進(jìn)行操作。
1.4 血清和組織中抗氧化水平的測定 為評價機(jī)體抗氧化能力,利用超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)、總抗氧化能力(TAOC)和丙二醛(MDA)等試劑盒(均購自南京建成生物工程研究所)分別檢測了血清和腎臟組織中SOD、GSH-Px、T-AOC及MDA等抗氧化指標(biāo)的活性。具體方法按照試劑盒說明書進(jìn)行操作。
1.5 數(shù)據(jù)處理和統(tǒng)計 數(shù)據(jù)處理采用SPSS12.0軟件進(jìn)行方差分析和顯著性差異檢驗。數(shù)據(jù)表達(dá)方式以“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差”表示,P<0.05表示與對照組相比差異顯著。
2.1 PNMC對大鼠體重和腎臟重量的影響 由表1可知,SD大鼠經(jīng)PNMC染毒5 d后,各劑量組大鼠體重及日增重均顯著低于對照組(P<0.05),但是腎臟的相對重量與對照組相比并無顯著性差異(P>0.05)。
表1 PNMC對大鼠體重及腎臟重量的影響
2.2 PNMC對大鼠腎臟組織形態(tài)結(jié)構(gòu)的影響 組織病理學(xué)觀察結(jié)果(見中插彩版圖1)顯示,對照組大鼠腎臟腎小管上皮細(xì)胞排列緊密、有序,刷狀緣清晰、致密(見中插彩版圖1A),而PNMC染毒組大鼠腎臟均出現(xiàn)了不同程度的損傷:經(jīng)1mg/kg體重和10mg/kg體重劑量的PNMC處理的大鼠腎臟近曲小管的刷狀緣溶解消失(見中插彩版圖1B、圖1C),經(jīng)10mg/kg體重和100mg/kg體重劑量的PNMC處理的大鼠腎臟皮質(zhì)和髓質(zhì)的腎小管上皮細(xì)胞出現(xiàn)不同程度的壞死,細(xì)胞核固縮凝聚,且髓質(zhì)部的壞死程度較皮質(zhì)部嚴(yán)重(見中插彩版圖1C、圖1D)。腎小管上皮細(xì)胞死亡的特點與我們以前研究所描述的壞死損傷特點基本一致[8]。
2.3 PNMC對大鼠血清中肌酐和尿素氮水平的影響 血清學(xué)分析結(jié)果(圖2)顯示,與對照組相比,經(jīng)PNMC染毒后,大鼠血清BUN水平并沒有明顯變化,大鼠血清Cre水平在1mg/kg體重和10mg/ kg體重PNMC劑量組也只是略有升高,但是在100mg/kg體重PNMC劑量組大鼠血清肌酐的濃度卻顯著升高(P<0.05)。
2.4 PNMC對SOD、GSH-Px、T-AOC和MDA活性的影響 血清中抗氧化指標(biāo)檢測結(jié)果(見表2)顯示,染毒組大鼠血清中SOD濃度與對照組比較均顯著下降(P<0.05);血清中T-AOC的含量在10mg/kg體重PNMC染毒組也顯著低于對照組(P<0.05);染毒組大鼠血清GSH-Px濃度略有降低,MDA濃度略有升高,但與對照組比較差異不顯著(P>0.05)。
表2 PNMC對大鼠血清SOD、GSH-Px、T-AOC和MDA活性的影響
圖2 PNMC對大鼠血清肌酐和尿素氮水平的影響注:大鼠經(jīng)PNMC染毒后,與對照組相比,100mg/kg體重劑量組血清中肌酐水平顯著升高,各劑量組尿毒氮水平與對照組相比未見有明顯差異P>0.05;*:與對照組相比有顯著差異性,P<0.05,n=10
腎臟組織中抗氧化指標(biāo)檢測結(jié)果見表3,與血清檢測結(jié)果不同,PNMC染毒后大鼠腎臟組織中的SOD、GSH-Px和T-AOC的濃度與對照組比較稍有下降,但差異不顯著;同樣,PNMC染毒后大鼠腎臟組織中MDA的含量與對照組比較稍有升高,但差異也不顯著(P>0.05)。
表3 PNMC對大鼠腎臟組織中SOD、GSH-Px、T-AOC和MDA活性的影響
PNMC可通過呼吸道、消化道及皮膚進(jìn)入動物機(jī)體,因此本研究選用皮下注射的方式對大鼠進(jìn)行染毒。已有研究表明,經(jīng)PNMC染毒的大鼠增重及器官重量均下降[9]。在本研究中,PNMC染毒后大鼠的體重和平均日增重也顯著下降。然而,Li等[10]采用同樣的染毒方式未發(fā)現(xiàn)PNMC對大鼠體重有明顯的影響,這可能歸因于選用了不同品系的大鼠,而本研究結(jié)果提示SD大鼠對PNMC更為敏感。
剖檢結(jié)果顯示,PNMC染毒組小鼠沒有出現(xiàn)明顯的大體病變,但是,在100 mg/kg體重PNMC組發(fā)現(xiàn)血清中Cre濃度顯著升高。血清中Cre濃度是評價腎臟功能的一個常用指標(biāo),其濃度升高意味著腎臟功能出現(xiàn)損傷。因此,本研究結(jié)果表明,PNMC可以損傷腎臟功能。病理組織學(xué)觀察結(jié)果進(jìn)一步證明了PNMC對腎臟形態(tài)結(jié)構(gòu)的破壞作用。染毒組大鼠腎小管上皮細(xì)胞發(fā)生壞死,主要位于腎臟的皮髓交界處和髓質(zhì)部,而且隨著染毒劑量的增加,壞死細(xì)胞數(shù)量也增加,呈現(xiàn)明顯的劑量相關(guān)性。研究表明,PNMC具有擴(kuò)張血管的作用[11-12],可造成大鼠腎臟缺血應(yīng)激,而且腎臟髓質(zhì)血流量少于皮質(zhì),所以髓質(zhì)區(qū)腎小管上皮細(xì)胞的病變程度高于皮質(zhì)區(qū)。以上結(jié)果表明,PNMC對大鼠腎臟具有毒性作用。
在正常情況下,機(jī)體產(chǎn)生的活性氧簇(ROS)的清除有賴于抗氧化酶系統(tǒng)(SOD、GSH-Px和/或過氧化氫酶)和非酶類抗氧化劑(如:谷胱甘肽、維生素E)[13-15]。當(dāng)這個系統(tǒng)的平衡被破壞,即自由基產(chǎn)生過多和(或)抗氧化防御能力下降,就會造成氧化損傷,自由基可以直接和脂質(zhì)、蛋白以及DNA反應(yīng)造成不可逆的損傷,最終導(dǎo)致細(xì)胞死亡[16-17]。另外,自由基還可以與存在于細(xì)胞膜上的很對不飽和脂肪酸以及膽固醇反應(yīng),隨后引起細(xì)胞凋亡[18]。Donaldson等[19]的研究表明,DEP可以引起小鼠肺臟產(chǎn)生ROS,造成蛋白質(zhì)氧化、脂質(zhì)氧化和DNA損傷。在本研究中,大鼠連續(xù)5 d皮下注射不同濃度的PNMC后,血清中SOD的含量顯著下降,這一結(jié)果與PNMC在雞胚精原細(xì)胞的試驗結(jié)果一致[6];而且血清中T-AOC的含量在10mg/kg體重PNMC染毒組也顯著低于對照組,這些結(jié)果表明血清中抗氧化酶的活性降低。然而,腎臟組織中的SOD、GSH-Px和T-AOC的含量稍有下降,但與對照組比較差異不顯著,同樣,MDA的含量也沒有明顯變化,表明腎臟組織中的抗氧化酶的活性并未受到影響。綜上,PNMC染毒后血清中SOD活性降低同時伴有T-AOC的下降,提示大鼠體內(nèi)氧化系統(tǒng)遭到破壞,生成的活性氧自由基不能被及時清除,導(dǎo)致過多的過氧化物在體內(nèi)蓄積,對大鼠腎臟造成氧化損傷。
綜上所述,本研究揭示了PNMC對大鼠腎臟的損傷作用主要是通過氧化應(yīng)激引起的,即PNMC通過抑制抗氧化酶的活性引起大鼠腎臟氧化損傷,但這些過程之間的相互作用及調(diào)控機(jī)制還有待進(jìn)一步研究。
[1]Tsukue N,Toda N,Tsubone H,et al.Diesel exhaust(DE)affects the regulation of testicular function inmale Fischer 344 rats[J].J Toxicol Environ Health A,2001,63(2):115-26.
[2]Zayed SM,Mahdy F.Decomposition of 14C-fenitrothion under the in fluence of UV and sunlight under tropical and subtropical conditions[J].Chemosphere,2008,70:1653-1659.
[3]Simon-Giavarotti K A,Giavarotti L,Gomes L F,et al.Enhance?ment of lindane-induced liver oxidative stress and hepatotoxicity by thyroid hormone is reduced by gadolinium chloride[J].JFree Radic Res,2002,36:1033-1039.
[4]Favier A.Le stress oxidant:Intérêt conceptuel et expérimental dans la compréhension desmécanismes desmaladies et potentiel thérapeutique[J].JL’actualitéChim,2003,108-115.
[5]Papas A M.Determinants of antioxidant status in humans[J].J Lipids,1996,31:S77-S82.
[6]Mi Y,Zhang C,Li C M,et al.Quercetin protects embryonic chicken spermatogonial cells from oxidative damage intoxicated with 3-methyl-4-nitrophenol in primary culture[J].Toxicology Letters,2009,190,61-65
[7]Pan C J,Schmitz D A,Cho A K,et al.Inherent redox properties of diesel exhaust particles:catalysis of the generation of reactive oxygen species by biological reductants[J].ToxicolSci,2004,81,225-232.
[8]Yue Z,She R P,Bao H H,etal.Necrosis and Apoptosis of Renal Tubular Epithelial Cells in Rats Exposed to 3-Methyl-4-Nitro?phenol[J].Environmental Toxicology,2012,11(27):653-661.
[9]LiC,Takahashi S,Taneda S,etal.Impairment of testicular func?tion in adultmale Japanese quail(Coturnix japonica)after a sin?gle administration of 3-methyl-4-nitrophenol in diesel exhaust particles[J].JEndocrinol,2006,189(3):555-564.
[10]Li C M,Taneda S,Suzuki A K,et al.Effects of 3-methyl-4-ni?trophenol in diesel exhaust particles on the regulation of testicular function in immaturemale rats[J].Journal of Andrology,2007,28(2):252-258.
[11]Mori Y,Kamta K,Toda N,et al.Isolation of nitrophenols from diesel exhaust particles(DEP)as vasodilatation compounds[J].Bi?ol Pharm Bull,2003,26:394-395.
[12]Taneda S,Kamata K,HayashiH,etal.Investigation of vasodilato?ry substances in diesel exhaust particles(DEP):Isolation and identification of nitrophenol derivatives[J].JHealth Sci,2004,50:133-141.
[13]NeradilováM,HurbáF,NovákováV,et al.Investigations of the relationship between thyroid function and a-tocopherol concentra?tion of serumand in some organs of the rat[J].Int J Vitam Nutr Res,1973,43:283-290.
[14]Benzie IF.Lipid peroxidation:a review of causes,consequences, measurement and dietary influences[J].Int J Food Sci Nutr,1996,47:233-261.
[15]SubudhiU,Dasa K,Paital B,etal.Alleviation of enhanced oxida?tive stress and oxygen consumption of L-thyroxine induced hyper?thyroid rat liver mitochondria by vitamin E and curcumin[J].J Chem Biol Interact,2008,173:105-114.
[16]BealM F.Mitochondrial dysfunction in neurodegenerative diseas?es[J].JBiochim Biophys Acta,1998,1366:211-223.
[17]Beal M F.Mitochondria take centre stage in aging and neurode?generation[J].JAnn Neurol,2005,58:495-505.
[18]Mikhailov V,Mikhailova M,Degenhardt K,et al.Association of Bax and Bak homo-oligomers in mitochondria.Bax requirement for Bak reorganization and cytochrome c release[J].Biol Chem,2003,278:5367-5376.
[19]Donaldson K,Stone V,Borm P J,etal.Oxidative stress and calci?um signaling in the adverse effects of environmental particles[PM(10)][J].Free Radic BiolMed,2003,34:1369-1382.
S865.1+2
B
0529-6005(2015)11-0087-03
2014-06-13
岳卓(1982-),女,博士,研究方向為動物毒理病理學(xué)和生物制品學(xué),E-mail:w16154149@163.com
佘銳萍,E-mail:sheruiping@126.com