宋仁生(綜述),李 濤,吳柱國(guó)(審校)
(廣東醫(yī)學(xué)院a.第二臨床醫(yī)學(xué)院,b.廣東省醫(yī)學(xué)分子診斷重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東東莞523808)
活性氧類(lèi)是氧化系統(tǒng)產(chǎn)生的含有活性氧功能基團(tuán)的化合物,包括含氧自由基、氧的非自由基衍生物、氫過(guò)氧化物等。機(jī)體內(nèi)產(chǎn)生的過(guò)多的活性氧類(lèi)在多種疾病的發(fā)生、發(fā)展中起重要作用,如慢性阻塞性肺疾病、糖尿病以及動(dòng)脈粥樣硬化、心肌梗死、心力衰竭等。心臟作為哺乳動(dòng)物體內(nèi)從不休息的器官,其主要功能性成分心肌細(xì)胞更是能量的主要消耗者,細(xì)胞內(nèi)線粒體的含量較高。作為心臟的主要能量發(fā)生器——線粒體占心肌細(xì)胞體積的30%[1]。線粒體在為心臟合成能量的同時(shí),不可避免地產(chǎn)生了過(guò)多的活性氧類(lèi)?,F(xiàn)就線粒體氧化應(yīng)激損傷及活性氧類(lèi)與某些心血管疾病的關(guān)系做一綜述。
1.1 活性氧類(lèi)在線粒體中的生成及堆積 線粒體是細(xì)胞內(nèi)產(chǎn)生活性氧類(lèi)的主要場(chǎng)所。細(xì)胞內(nèi)氧化系統(tǒng)與抗氧化系統(tǒng)失衡,大量自由基不斷聚積就會(huì)導(dǎo)致線粒體的氧化應(yīng)激。氧化應(yīng)激不僅抑制線粒體呼吸酶的活性、減慢呼吸鏈的電子傳遞、增加活性氧類(lèi)產(chǎn)生,還可以上調(diào)解偶聯(lián)蛋白(uncoupling proteins,UCPs)的表達(dá)[2]。UCPs 是位于線粒體內(nèi)膜的一類(lèi)具有離子通道作用的蛋白質(zhì),其能消除線粒體內(nèi)膜兩側(cè)的跨膜質(zhì)子濃度差,從而降低線粒體的膜電位,導(dǎo)致氧化磷酸化解偶聯(lián),減少了ATP的生成。UCP2和UCP3已確定為UCPs的同源系列,并在心臟表達(dá)。在由H2O2或阿霉素刺激培養(yǎng)的心肌細(xì)胞內(nèi)觀察到UCP2的過(guò)表達(dá)可增加氧耗,并減少活性氧類(lèi)的產(chǎn)生[3]。實(shí)驗(yàn)證明,在UCP2或UCP3基因敲除小鼠分離出的線粒體比野生型小鼠可產(chǎn)生更多的活性氧類(lèi)[4-6]。這些結(jié)果表明,UCP2和UCP3的主要作用可能是調(diào)控活性氧類(lèi)的產(chǎn)生。
活性氧類(lèi)本身也可以誘導(dǎo)線粒體產(chǎn)生更多的活性氧類(lèi),這一現(xiàn)象稱(chēng)之為活性氧類(lèi)誘導(dǎo)的活性氧類(lèi)釋放[7],如鈣調(diào)蛋白依賴(lài)性蛋白激酶可促進(jìn)還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(reduced nicotinamide adenine dinucleotide phosphate oxidase,NADPH)氧化酶調(diào)節(jié)產(chǎn)生更多的活性氧類(lèi),并能誘導(dǎo)線粒體通透性轉(zhuǎn)換孔(mitochondrial permeability transition pore,mPTP)開(kāi)放,增加細(xì)胞內(nèi)Ca2+水平,從而導(dǎo)致線粒體功能障礙,進(jìn)而產(chǎn)生更多的活性氧類(lèi)。堆積在心肌細(xì)胞的活性氧類(lèi)也可通過(guò)線粒體通透性轉(zhuǎn)換觸發(fā)線粒體膜電位去極化,從而誘發(fā)一瞬間的線粒體活性氧類(lèi)的大量生成[8]。
1.2 活性氧類(lèi)可改變細(xì)胞線粒體膜的通透性 線粒體膜通透性轉(zhuǎn)變是指線粒體內(nèi)膜由于mPTP的開(kāi)放,其通透性突然增加。mPTP是線粒體膜上由多個(gè)蛋白所形成的非選擇性復(fù)合孔道,容許相對(duì)分子質(zhì)量<1500的溶質(zhì)分子(如H+、Ca2+、谷胱甘肽及細(xì)胞色素C)通過(guò)。細(xì)胞色素C主要存在于線粒體中,是催化細(xì)胞內(nèi)活性氧類(lèi)產(chǎn)生的主要酶類(lèi)。心臟在某些病理狀態(tài)下如心肌缺血/再灌注時(shí),產(chǎn)生大量的活性氧類(lèi),誘導(dǎo)mPTP不可逆性開(kāi)放[9]。mPTP的不可逆性開(kāi)放可使線粒體內(nèi)膜外的H+大量返流回基質(zhì),線粒體內(nèi)膜全面去極化,導(dǎo)致線粒體膜電位崩潰,氧化磷酸化完全解偶聯(lián),心肌細(xì)胞ATP合成停止。此外,mPTP的不可逆開(kāi)放還可以導(dǎo)致線粒體內(nèi)膜通透性增加,還原型谷胱甘肽外流耗竭,超氧陰離子大量生成,基質(zhì)滲透壓升高,線粒體腫脹明顯,最終導(dǎo)致線粒體外膜破裂,釋放內(nèi)外膜間隙中的細(xì)胞色素C和凋亡誘導(dǎo)因子等,介導(dǎo)一系列與細(xì)胞骨架、細(xì)胞膜及細(xì)胞核有關(guān)的蛋白質(zhì)切割水解。mPTP的不可逆開(kāi)放又能誘導(dǎo)心肌細(xì)胞釋放更多的活性氧類(lèi),進(jìn)而形成惡性循環(huán),導(dǎo)致線粒體功能進(jìn)一步障礙。
1.3 活性氧類(lèi)可影響線粒體對(duì)Ca2+的攝取和排出 線粒體對(duì)心肌細(xì)胞內(nèi)Ca2+穩(wěn)態(tài)的調(diào)節(jié)發(fā)揮關(guān)鍵作用。線粒體氧化磷酸化與Ca2+調(diào)節(jié)密切相關(guān),呼吸鏈電子傳遞形成的線粒體膜電位有利于線粒體對(duì)Ca2+的攝取;線粒體內(nèi)的 Ca2+能上調(diào)氧化磷酸化中脫氫酶的活性而促進(jìn)ATP合成。因此活性氧類(lèi)可通過(guò)影響呼吸鏈復(fù)合物的活性、線粒體膜電位以及誘導(dǎo)mPTP開(kāi)放等導(dǎo)致線粒體內(nèi)Ca2+紊亂,進(jìn)而引起心肌細(xì)胞線粒體功能障礙。
2.1 線粒體活性氧類(lèi)與心律失常 據(jù)估計(jì),1/3線粒體產(chǎn)生的ATP被心肌膜、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)離子通道及轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白所利用,這是心肌細(xì)胞電活動(dòng)所必需的能量保證[10]。線粒體功能障礙會(huì)減少心肌細(xì)胞離子通道和轉(zhuǎn)運(yùn)體的能量供應(yīng),從而導(dǎo)致心律紊亂[11-12]。最新研究表明,過(guò)多的線粒體活性氧類(lèi)可通過(guò)半胱氨酸轉(zhuǎn)錄后的氧化還原修飾(如蛋白質(zhì)谷胱甘肽化)或酪氨酸殘基的硝化,直接影響各種離子通道和轉(zhuǎn)運(yùn)體,減弱心肌興奮性[13]。過(guò)多的線粒體活性氧類(lèi)也可通過(guò)相關(guān)聯(lián)的信號(hào)分子如活性氧類(lèi)敏感激酶(鈣調(diào)蛋白依賴(lài)性蛋白激酶和蛋白激酶C)或氧化還原敏感轉(zhuǎn)錄因子如核因子κB,間接調(diào)節(jié)離子通道或轉(zhuǎn)運(yùn)體的功能[14-16]。Yang等[17]發(fā)現(xiàn),線粒體功能障礙可以降低心肌細(xì)胞鈉離子流的峰值,并下調(diào)縫隙連接蛋白43的表達(dá),從而導(dǎo)致心電異常傳導(dǎo),增加折返性心律失常的可能。另外,細(xì)胞內(nèi)過(guò)量的活性氧類(lèi)可增加晚鈉電流,并降低鉀離子的電流復(fù)極,延長(zhǎng)動(dòng)作電位的持續(xù)時(shí)間、后去極化早期時(shí)間,增加了心肌細(xì)胞的電異質(zhì)性和心律失常的易患性。最后,線粒體功能障礙也可引起線粒體膜電位去極化,導(dǎo)致sarcKATP通道開(kāi)放,進(jìn)而形成了一個(gè)傳播去極化波的灌電流,增加了傳導(dǎo)阻滯和心律失常的可能[18]。
2.2 線粒體活性氧類(lèi)與動(dòng)脈粥樣硬化 內(nèi)皮細(xì)胞中活性氧類(lèi)的增高促進(jìn)了動(dòng)脈粥樣硬化的發(fā)生、發(fā)展[19]。氧化型低密度脂蛋白(oxidatived low-density lipoprotein,ox-LDL)在動(dòng)脈粥樣硬化的發(fā)生、發(fā)展中起重要作用。線粒體產(chǎn)生的活性氧類(lèi)及其修飾的ox-LDL涉及動(dòng)脈粥樣硬化的各個(gè)病理過(guò)程。ox-LDL通過(guò)抑制線粒體呼吸酶的活性,導(dǎo)致線粒體呼吸鏈電子傳遞減慢,活性氧類(lèi)生成增多,進(jìn)而形成惡性循環(huán),促進(jìn)內(nèi)皮損傷及動(dòng)脈粥樣硬化形成[20]。載脂蛋白E(apolipoprotein E,apoE)具有抗氧化活性,其抑制LDL氧化的同時(shí),也抑制LDL附于血管壁上。apoE-/--鼠是一種缺乏apoE的動(dòng)物模型,其血漿中低密度脂蛋白膽固醇和三酰甘油水平顯著增加,易出現(xiàn)動(dòng)脈粥樣硬化。研究發(fā)現(xiàn),apoE-/--鼠錳超氧化物歧化酶(Mn-superoxide dismutase,Mn-SOD)的活性降低,線粒體DNA損傷增加,線粒體氧化應(yīng)激反應(yīng)增強(qiáng),動(dòng)脈粥樣硬化病變加重[21]。此外,來(lái)自apoE-/--SOD2+/-小鼠的研究提示,線粒體活性氧類(lèi)的增加不僅促進(jìn)了動(dòng)脈粥樣硬化斑塊的形成,而且還提高了機(jī)體對(duì)動(dòng)脈粥樣硬化危險(xiǎn)因子的易患性[22]。
2.3 線粒體活性氧類(lèi)與高血壓 雖然原發(fā)性高血壓的發(fā)病機(jī)制目前還不完全清楚,但Touyz和Briones[23]在對(duì)高血壓動(dòng)物模型的研究中發(fā)現(xiàn),提高血管內(nèi)皮及血漿中活性氧類(lèi)水平可增加血管收縮的敏感性,并促進(jìn)血管炎癥及重塑的發(fā)生。線粒體是產(chǎn)生活性氧類(lèi)的主要細(xì)胞器,靶向線粒體的抗氧化劑在動(dòng)物模型中可以降低活性氧類(lèi)的產(chǎn)生,并改善主動(dòng)脈的直徑和厚度以及血管內(nèi)皮細(xì)胞的功能[24]。研究選擇性針對(duì)線粒體的靶向抗氧化劑將成為一種降低和(或)預(yù)防高血壓的策略。此外,NADPH氧化酶的活性及表達(dá)在高血壓中均有顯著的升高,NADPH氧化酶抑制劑亦可降低動(dòng)物模型中動(dòng)物的血壓[23]。其他一些因子(如血管緊張素Ⅱ、醛固酮、內(nèi)皮素1等)可通過(guò)刺激活性氧類(lèi)的產(chǎn)生、激活相關(guān)細(xì)胞內(nèi)信號(hào)通路,參與高血壓的發(fā)生、發(fā)展[25]。
2.4 線粒體活性氧類(lèi)與心肌缺血/再灌注損傷 心肌缺血/再灌注損傷是心肌組織在較長(zhǎng)時(shí)間缺血后血液復(fù)灌,出現(xiàn)比再灌注前更明顯、更嚴(yán)重的損傷和功能障礙,包括收縮功能降低、冠狀動(dòng)脈血流下降及血管反應(yīng)性改變等。線粒體ATP生成減少的同時(shí)也產(chǎn)生了過(guò)量的活性氧類(lèi),其引起的氧化應(yīng)激是其致病機(jī)制之一[26]。在心肌缺血/再灌注損傷中,呼吸鏈復(fù)合體Ⅰ和Ⅲ外泄的電子流可以產(chǎn)生大量的活性氧類(lèi),這是活性氧類(lèi)的主要來(lái)源[27]。產(chǎn)生的活性氧類(lèi)可通過(guò)損害內(nèi)皮依賴(lài)性血管舒張機(jī)制、干擾興奮收縮偶聯(lián)、誘發(fā)心律失常及損害線粒體膜通透性等形式促進(jìn)缺血/再灌注損傷的發(fā)生、發(fā)展[28]。靶向線粒體的抗氧化劑(如泛醌能特異性地減少心肌缺血后的損傷,Mn-SOD類(lèi)似物亦能抑制活性氧類(lèi)依賴(lài)性損傷和凋亡。以上研究表明,抗氧化應(yīng)激是防治心肌缺血/再灌損傷的重要手段。
2.5 線粒體活性氧類(lèi)與心力衰竭 心力衰竭是指因心臟結(jié)構(gòu)或功能異常而導(dǎo)致的心室充盈或射血能力受損的一組復(fù)雜臨床綜合征,是心肌梗死、高血壓、心肌病等多種心血管疾病發(fā)展的終末階段,主要發(fā)病機(jī)制為心肌病理性重構(gòu)。在心力衰竭動(dòng)物模型中發(fā)現(xiàn),隨著心臟壓力負(fù)荷的增加,線粒體ATP合成減少,心肌細(xì)胞內(nèi)活性氧類(lèi)生成增加[29]。心肌線粒體的能量代謝障礙促進(jìn)了心力衰竭的發(fā)展,而線粒體的活性氧類(lèi)不僅可以激活凋亡信號(hào)激酶,刺激心肌細(xì)胞增殖、基質(zhì)重塑,還可以通過(guò)影響纖維細(xì)胞的增殖以及膠原合成,激活基質(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMPs)[30]。MMPs 幾乎能降解細(xì)胞外基質(zhì)中所有的蛋白成分,持續(xù)的MMPs活化可為細(xì)胞間反應(yīng)提供一種異常的細(xì)胞外環(huán)境,影響心肌的結(jié)構(gòu)特性,從而導(dǎo)致左心室重塑以及細(xì)胞功能障礙的發(fā)生、發(fā)展。在MMP-2基因敲除的小鼠上,Hayashidani等[31]證實(shí)了小鼠心肌梗死后的生存率較野生小鼠顯著升高,這主要是因?yàn)橐种屏薓MPs的活化,從而延緩了心臟破裂以及隨后的左心室重構(gòu)。最后Lemieux等[32]證實(shí),活性氧類(lèi)還可以通過(guò)氧化修飾心肌肌原纖維蛋白,導(dǎo)致心臟收縮功能進(jìn)行性降低以及心臟不可逆損傷。
線粒體氧化應(yīng)激在動(dòng)脈粥樣硬化、心肌缺血/再灌注損傷、心力衰竭等多種心血管系統(tǒng)疾病的發(fā)生、發(fā)展中發(fā)揮重要作用,但其具體機(jī)制尚不完全明確。對(duì)活性氧類(lèi)的產(chǎn)生及生物學(xué)功能進(jìn)行深入研究,以期研究出線粒體靶向抗氧化劑,從源頭上減少氧自由基的產(chǎn)生,保護(hù)線粒體功能,從而減輕氧化應(yīng)激對(duì)心血管的損傷,使更多的心血管疾病患者獲益,但目前大部分的抗氧化劑僅限于幫助捕獲并中和已產(chǎn)生的自由基,從而祛除或減輕氧自由基對(duì)人體的損害。
[1]Schaper J,Meiser E,St?mmler G.Ultrastructural morphometric analysis of myocardium from dogs,rats,hamsters,mice,and from human hearts[J].Circ Res,1985,56(3):377-391.
[2]El-Khoury TG,Bahr GM,Echtay KS.Muramyl-dipeptide-induced mitochondrial proton leak in macrophages is associated with upregulation of uncoupling protein 2 and the production of reactive oxygen and reactive nitrogen species[J].FEBS J,2011,278(17):3054-3064.
[3]Teshima Y,Takahashi N,Nishio S,et al.Production of reactive oxygen species in the diabetic heart.Roles of mitochondria and NADPH oxidase[J].Circ J,2014,78(2):300-306.
[4]Lee SC,Robson-Doucette CA,Wheeler MB.Uncoupling protein 2 regulates reactive oxygen species formation in islets and influences susceptibili to diabetogenic action of streptozotocin[J].J Endocrinol,2009,203(1):33-43.
[5]Arsenijevic D,Onuma H,Pecqueur C,et al.Disruption of the uncoupling protein-2 gene in mice reveals a role in immunity and reactive oxygen species production[J].Nat Genet,2000,26(4):435-439.
[6]Vidal-Puig AJ,Grujic D,Zhang CY,et al.Energy metabolism in uncoupling protein 3 gene knockout mice[J].J Biol Chem,2000,275(21):16258-16266.
[7]Biary N,Xie C,Kauffman J,et al.Biophysical properties and functional consequences of reactive oxygen species(ROS)-induced ROS release in intact myocardium[J].J Physiol,2011,589(Pt 21):5167-5179.
[8]Zorov DB,F(xiàn)ilburn CR,Klotz LO,et al.Reactive oxygen species(ROS)-induced ROS release:a new phenomenon accompanying induction of the mitochondrial permeability transition in cardiac myocytes[J].J Exp Med,2000,192(7):1001-1014.
[9]Gordon LI,Burke MA,Singh AT,et al.Blockade of the erbB2 receptor induces cardiomyocyte death through mitochondrial and reactive oxygen species-dependent pathways[J].J Biol Chem,2009,284(4):2080-2087.
[10]Schramm M,Klieber HG,Daut J.The energy expenditure of actomyosin-ATPase,Ca(2+)-ATPase and Na+ ,K(+)-ATPase in guinea-pig cardiac ventricular muscle[J].J Physiol,1994,481(Pt 3):647-662.
[11]Overend CL,Eisner DA,O Neill SC.Altered cardiac sarcoplasmic reticulum function of intact myocytes of rat ventricle during metabolic inhibition[J].Circ Res,2001,88(2):181-187.
[12]Silverman HS,Stern MD.Ionic basis of ischaemic cardiac injury:insights from cellular studies[J].Cardiovasc Res,1994,28(5):581-597.
[13]Aggarwal NT,Makielski JC.Redox control of cardiac excitability[J].Antioxid Redox Signal,2013,18(4):432-468.
[14]Clerk A,Michael A,Sugden PH,Stimulation of multiple mitogenactivated protein kinase sub-families by oxidative stress and phosphorylation of the small heat shock protein,HSP25/27,in neonatal ventricular myocytes[J].Biochem J,1998,333(Pt 3):581-589.
[15]De Windt LJ,Lim HW,Haq S,et al.Calcineurin promotes protein kinase C and c-Jun NH2-terminal kinase activation in the heart.Cross-talk between cardiac hypertrophic signaling pathways[J].J Biol Chem,2000,275(18):13571-13579.
[16]Shang LL1,Sanyal S,Pfahnl AE,et al.NF-kappaB-dependent transcriptional regulation of the cardiac scn5a sodium channel by angiotensin II[J].Am J Physiol Cell Physiol,2008,294(1):C372-379.
[17]Yang KC,Bonini MG,Dudley SC Jr.Mitochondria and arrhythmias[J].Free Radic Biol Med,2014,71:351-361.
[18]Brown DA,O'Rourke B.Cardiac mitochondria and arrhythmias[J].Cardiovasc Res,2010,88(2):241-249.
[19]Hathaway CA,Heistad DD,Piegors DJ,et al.Regression of atheroscle ROS is in monkeys reduces vascular superoxide levels[J].Circ Res,2002,90(3):277-283.
[20]Roy Chowdhury SK,Sangle GV,Xie X.et al.Effects of extensively oxidized low-density lipoprotein on mitochondrial function and reactive oxygen species in porcine aortic endothelial cells[J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2010 298(1):E89-98.
[21]Devarajan A,Bourquard N,Hama S,et al.Paraoxonase 2 deficiency alters mitochondrial function and exacerbates the development of atherosclerosis[J].Antioxid Redox Signal,2011,14(3):341-351.
[22]Harrison CM,Pompilius M,Pinkerton KE,et al.Mitochondrial oxidative stress significantly influences atherogenic risk and cytokineinduced oxidant production[J].Environ Health Perspect,2011 119(5):676-681.
[23]Touyz RM,Briones AM.Reactive oxygen species and vascular biology:implications in human hypertension[J].Hypertens Res,2011,34(1):5-14.
[24]Martínez-Revelles S,Avendaňo MS,García-Redondo AB,et al.Reciprocalrelationship between reactiveoxygen species and cyclooxygenase-2 and vascular dysfunction in hypertension[J].Antioxid Redox Signal,2013,18(1):51-65.
[25]Briones AM,Rodríguez-Criado N,Hernanz R,et al.Atorvastatin prevents angiotensin II-induced vascular remodeling and oxidative stress[J].Hypertension,2009,54(1):142-149.
[26]Penna C,Perrelli MG,Pagliaro P.Mitochondrial pathways,permeability transition pore,and redox signaling in cardioprotection:therapeutic implications[J].Antioxid Redox Signal,2013,18(5):556-599.
[27]Bleier L,Dr?se S.Superoxide generation by complex III:from mechanistic rationales to functional consequences[J].Biochim Biophys Acta,2013,1827(11/12):1320-1331.
[28]Kalogeris T,Bao Y,Korthuis RJ.Mitochondrial reactive oxygen species:a double edged sword in ischemia/reperfusion vs preconditioning[J].Redox Biol,2014,2:702-714.
[29]Schwarzer M,Osterholt M,Lunkenbein A,et al.Mitochondrial reactive oxygen species production and respiratory complex activity in rats with pressure overload-induced heart failure[J].J Physiol,2014,592(Pt17):3767-3782.
[30]Spinale FG,Coker ML,Thomas CV,et al.Time-dependent changes in matrix metalloproteinase activity and expression during the progression of congestive heart failure:relation to ventricular and myocyte function[J].Circ Res,1998,82(4):482-495.
[31]Hayashidani S,Tsutsui H,Ikeuchi M,et al.Targeted deletion of MMP-2 attenuates early LV rupture and late remodeling after experimental myocardial infarction[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2003,285(3):H1229-1235.
[32]Lemieux H,Semsroth S,Antretter H,et al.Mitochondrial respiratory control and early defects of oxidative phosphorylation in the failing human heart[J].Int J Biochem Cell Biol,2011,43(12):1729-1738.