邵美麗,郝星宇,劉 巍,2,崔承遠(yuǎn),袁兆豐,董 鑫
固相萃取-高效液相色譜法檢測(cè)油炸豬肉中丙烯酰胺
邵美麗1,郝星宇1,劉 巍1,2,崔承遠(yuǎn)1,袁兆豐1,董 鑫1
(1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,哈爾濱 黑龍江 150030;2.佳木斯出入境檢驗(yàn)檢疫局,黑龍江 佳木斯 154002)
建立油炸豬肉中丙烯酰胺的固相萃取-高效液相色譜檢測(cè)方法。油炸豬肉樣品經(jīng)正己烷脫脂,2 mol/L氯化鈉溶液提取,乙酸乙酯萃取,固相萃取小柱凈化后,以甲醇-水(5∶95,V/V)為流動(dòng)相,Hypersi10DS2-C18色譜柱分離,內(nèi)標(biāo)法定性、定量分析丙烯酰胺。結(jié)果表明:丙烯酰胺的定性檢出限為6 μg/kg,定量檢出限為20 μg/kg,線性定量范圍0.05~1.00 μg/mL,線性相關(guān)系數(shù)(R2)為0.999 8,本方法的加標(biāo)回收率穩(wěn)定在90%~92%范圍,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差小于3.5%。
油炸豬肉;丙烯酰胺;固相萃??;高效液相色譜
丙烯酰胺是一種不飽和酰胺,具有神經(jīng)毒性、生殖毒性、遺傳毒性及潛在致癌性[1-4]。研究表明,不僅在富含碳水化合物的高溫油炸食品中含有大量的丙烯酰胺[5-6],燒烤、油炸的肉類(lèi)如烤羊肉串(23 μg/kg)、油炸雞翅(214 μg/kg)及煎牛排(251 μg/kg)等食品中也含有一定量的丙烯酰胺[7-9]。在我國(guó),豬肉是最常食用的一種肉類(lèi),油炸更是人們常用的一種烹飪方式,建立油炸豬肉中丙烯酰胺的檢測(cè)方法及安全限量,對(duì)于避免因過(guò)多攝入油炸豬肉而引發(fā)丙烯酰胺蓄積毒性是非常有必要的。
食品中丙烯酰胺的檢測(cè)方法主要有氣相色譜法、氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法、高效液相色譜法、液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[10-13]等。其中氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法和液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法既有色譜對(duì)化合物的分離能力,又有質(zhì)譜特異性,具有檢出限低(食品中丙烯酰胺的最低檢出限可達(dá)1 μg/kg),靈敏度高,且能夠提供測(cè)量組分的分子質(zhì)量和結(jié)構(gòu)信息等特點(diǎn)。但這兩種方法的缺點(diǎn)是所用到的儀器價(jià)格非常昂貴,檢測(cè)費(fèi)用高,且氣相色譜-質(zhì)譜法的樣品需先經(jīng)過(guò)衍生化,操作比較復(fù)雜,不適用于大規(guī)模的推廣[14-17]。與其相比,高效液相色譜法對(duì)儀器要求不高,檢測(cè)成本低,且具有較好的分離效果和較低的檢出限,適于大規(guī)模推廣[18]。固相萃取技術(shù)是目前常用的樣品前處理方法,其操作簡(jiǎn)單,富集效率較高[19-21]。故本研究結(jié)合固相萃取技術(shù),建立油炸豬肉中丙烯酰胺的高效液相色譜檢測(cè)方法。
1.1 材料、試劑與儀器
新鮮豬肉 哈爾濱市購(gòu)。
丙烯酰胺標(biāo)準(zhǔn)品(純度≥99%)、甲基-丙烯酰胺標(biāo)準(zhǔn)品(純度≥98%) 美國(guó)Sigma公司;甲醇(色譜純) 百靈威科技有限公司;乙酸乙酯、正己烷、環(huán)己烷、氯化鈉、石油醚(均為分析純) 天津市天力化學(xué)試劑有限公司。
2487高效液相色譜系統(tǒng)、Oasis HLB固相萃取柱美國(guó)Waters公司;Hypersi10DS2-C18色譜柱 大連伊力特分析儀器有限公司;高速冷凍離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器廠;QF-3800氮?dú)獯蹈蓛x 北京博峰天成科技有限公司;YZ-1531-B多功能油炸鍋 廣東容聲電器股份有限公司。
1.2 方法
1.2.1 樣品處理
1.2.1.1 提取
取10 g粉碎后的油炸豬肉樣品,加入0.01 mg/mL甲基丙烯酰胺內(nèi)標(biāo)液500 μL,然后加入40 mL正己烷,超聲振蕩脫脂15 min,棄去正己烷層,重復(fù)此操作2 次。然后加入50 mL 2 mol/L氯化鈉溶液,磁力攪拌20 min,以8 000 r/min的轉(zhuǎn)速離心15 min,取上清液,重復(fù)此操作2 次。向上清液加入10 mL乙酸乙酯,靜置10 min后,收集上層溶液,重復(fù)此操作2 次。將收集到的萃取液,氮?dú)獯蹈?,加? mL超純水溶解,備用。
1.2.1.2 凈化
依次用3 mL甲醇和3 mL超純水活化平衡Oasis HLB固相萃取柱,然后將上述樣品提取液過(guò)Oasis HLB固相萃取小柱,棄去流出液,再用3mL超純水洗脫,收集全部洗脫液,用0.45 μm濾膜過(guò)濾后進(jìn)行色譜分析。
1.2.2 色譜條件
色譜柱:Hypersi10DS2-C18色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);進(jìn)樣量:20 μL;進(jìn)樣溫度:30 ℃;流速:0.8 mL/min;流動(dòng)相:甲醇-水(5∶95,V/V);檢測(cè)波長(zhǎng):205 nm,利用保留時(shí)間定性,峰面積定量。
1.2.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
配制1 mg/mL的丙烯酰胺儲(chǔ)備液,進(jìn)一步稀釋得0.05、0.1、0.15、0.2、0.25、0.4、0.6、0.8、1 μg/mL的丙烯酰胺標(biāo)準(zhǔn)溶液。同時(shí)以0.1 μg/mL甲基丙烯酰胺作內(nèi)標(biāo)溶液。依次測(cè)定不同質(zhì)量濃度丙烯酰胺及其內(nèi)標(biāo)的峰面積,以丙烯酰胺和甲基丙烯酰胺內(nèi)標(biāo)的質(zhì)量濃度比為橫坐標(biāo),以丙烯酰胺和甲基丙烯酰胺內(nèi)標(biāo)的峰面積比為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算丙烯酰胺含量。
1.3 數(shù)據(jù)分析
數(shù)據(jù)采用Statistix 8.1軟件包中Linear Models程序進(jìn)行處理,數(shù)據(jù)以±s表示。
2.1 色譜條件的優(yōu)化
2.1.1 流動(dòng)相的選擇
丙烯酰胺是極性很強(qiáng)的化合物,因此在進(jìn)行色譜分離時(shí)流動(dòng)相的選擇非常重要[22]。本研究比較了6種不同體積分?jǐn)?shù)的甲醇溶液(0%、5%、25%、50%、75%、100%)作為流動(dòng)相的分離效果。結(jié)果表明,以純水和純甲醇為流動(dòng)相時(shí),沒(méi)有出現(xiàn)色譜峰;以25%、50%、75%的甲醇溶液作流動(dòng)相時(shí),甲基丙烯酰胺的峰形較差,同時(shí)以50%的甲醇溶液做流動(dòng)相時(shí),基線較不穩(wěn)定。而以5%的甲醇溶液作為流動(dòng)相時(shí),丙烯酰胺的保留時(shí)間和峰形都較理想,基線平穩(wěn)且無(wú)明顯漂移的現(xiàn)象,色譜峰的分離效果也比較好(色譜圖略)。故最終選擇5%的甲醇溶液作流動(dòng)相。
2.1.2 進(jìn)樣溫度的選擇
本實(shí)驗(yàn)比較了20、30、40 ℃ 3 個(gè)不同進(jìn)樣溫度對(duì)丙烯酰胺分離效果的影響。結(jié)果表明,3 個(gè)溫度條件下色譜峰的保留時(shí)間差別不大。但進(jìn)樣溫度為20 ℃時(shí),色譜圖的基線不夠平穩(wěn);進(jìn)樣溫度為40 ℃時(shí),丙烯酰胺色譜峰分離效果不好,故選擇30 ℃作為最佳的進(jìn)樣溫度(色譜圖略)。
2.1.3 檢測(cè)波長(zhǎng)的選擇
丙烯酰胺的檢測(cè)波長(zhǎng)文獻(xiàn)報(bào)道不一致,其中最大波長(zhǎng)可達(dá)260 nm[23],而所述最小僅197 nm[24]。為提高方法的靈敏度和準(zhǔn)確性,在進(jìn)樣前先采用紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì)對(duì)1 μg/mL的丙烯酰胺標(biāo)準(zhǔn)液以及0.1 μg/mL的甲基丙烯酰胺內(nèi)標(biāo)液在190~350 nm波長(zhǎng)范圍內(nèi)進(jìn)行吸光度全掃描,結(jié)果顯示在波長(zhǎng)為205 nm左右時(shí)有最大吸收波長(zhǎng)。故本研究分別比較200、205、210 nm 3 個(gè)波長(zhǎng)條件下丙烯酰胺的分離檢測(cè)效果。結(jié)果表明,在所選的3 個(gè)檢測(cè)波長(zhǎng)條件下,丙烯酰胺和甲基丙烯酰胺均有最大吸收峰,且出峰時(shí)間和峰面積均相近,但在波長(zhǎng)為200 nm和210 nm時(shí),丙烯酰胺的峰有一定的拖尾現(xiàn)象。故選擇205 nm作為丙烯酰胺的最佳檢測(cè)波長(zhǎng)(色譜圖略)。
2.2 樣品提取方法的優(yōu)化
2.2.1 提取溶劑的選擇
丙烯酰胺可不同程度的溶解于水、甲醇、乙醇和乙酸乙酯等多種溶劑,且在水中溶解度最大。而與水相比,高濃度的氯化鈉溶液在提取丙烯酰胺的同時(shí)可使樣品中的蛋白質(zhì)發(fā)生鹽析作用,從而有效抑制其乳化的過(guò)程,可進(jìn)一步提高丙烯酰胺的回收率,故高濃度氯化鈉溶液也是一種良好的丙烯酰胺提取溶劑。本研究分別選取2 mol/L氯化鈉溶液和純水作為提取溶劑,再分別配合磁力攪拌和超聲振蕩兩種方式進(jìn)行丙烯酰胺的提取。結(jié)果表明,采用超聲振蕩時(shí),氯化鈉溶液和純水的丙烯酰胺回收率分別為90.0%和72.6%;采用磁力攪拌時(shí),氯化鈉溶液和純水的丙烯酰胺回收率分別為95.9%和85.5%(表1)。可以看出,2 mol/L的氯化鈉溶液作為提取溶劑,并結(jié)合磁力攪拌的方式進(jìn)行樣品中丙烯酰胺提取的效果最好。
表 1 不同提取溶劑方法加標(biāo)回收率測(cè)定結(jié)果(n=3)Table 1 Recovery rates of acrylamide with different eluents and methods (n= 3)
2.2.2 脫脂溶劑的選擇
油炸豬肉中大量油脂的存在會(huì)嚴(yán)重影響丙烯酰胺的提取純化以及檢測(cè)的過(guò)程,故需對(duì)樣品進(jìn)行脫脂處理。由于丙烯酰胺不溶于烷烴化合物,故本研究分別選取正己烷、環(huán)己烷、石油醚3 種溶劑對(duì)樣品進(jìn)行脫脂,并比較脫脂過(guò)程中三者對(duì)丙烯酰胺回收率的影響。結(jié)果表明,正己烷、石油醚和環(huán)己烷進(jìn)行樣品脫脂后,丙烯酰胺的損失率分別為1.7%、2.3%和4.5%,這說(shuō)明脫脂步驟并不會(huì)對(duì)丙烯酰胺的提取造成很大影響(表2)。相比而言,正己烷作為脫脂溶劑時(shí)丙烯酰胺標(biāo)準(zhǔn)品溶液的損失率最小,故選擇正己烷作為脫脂溶劑。
n=3)=3 Table 2 Loss rates of acrylamide with different degreasant (表 2 不同脫脂劑損失率測(cè)定結(jié)果(Table 2 Loss rates of acrylamide with different degreasant (n = 3) = 3)
2.2.3 乙酸乙酯萃取次數(shù)的選擇
由圖1可知,萃取1 次時(shí),丙烯酰胺回收率只有35%,萃取2 次時(shí)回收率提高到55.3%,萃取3 次時(shí)的回收率顯著增加到84.6%。當(dāng)繼續(xù)增加萃取次數(shù)到4 次和5 次時(shí),丙烯酰胺的回收率沒(méi)有明顯增長(zhǎng),說(shuō)明萃取次數(shù)達(dá)到3 次時(shí),已可將丙烯酰胺充分萃取出來(lái),故確定乙酸乙酯萃取次數(shù)為3 次。
圖 1 乙酸乙酯液液萃取次數(shù)對(duì)丙烯酰胺回收率的影響(n=33)Fig.1 Effect of number of extraction cycles with ethyl acetate on the recovery of acrylamide (n = 3)
2.3 固相萃取條件的優(yōu)化
2.3.1 洗脫劑的選擇
固相萃取可有效提高丙烯酰胺的回收率并有效減少雜質(zhì)[25]。本研究選用HLB固相色譜柱對(duì)樣品進(jìn)行純化處理,分別選用超純水以及25%、50%、75%、100%的甲醇溶液作為洗脫液,并分別對(duì)質(zhì)量濃度為0.05、0.25、1.00 μg/mL的丙烯酰胺標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行洗脫,比較丙烯酰胺的回收率。由圖2可知,當(dāng)選用純水進(jìn)行洗脫時(shí),3 種質(zhì)量濃度的丙烯酰胺回收率分別為93.6%、87.3%、92.3%。隨著甲醇比例的增加,丙烯酰胺的回收率均有所下降。當(dāng)甲醇體積分?jǐn)?shù)增長(zhǎng)到75%時(shí),已檢測(cè)不到0.05 μg/mL的丙烯酰胺。故本實(shí)驗(yàn)選擇超純水作為洗脫溶劑。
圖 2 不同體積分?jǐn)?shù)甲醇溶液作為洗脫液時(shí)丙烯酰胺的固相萃取回收率(n=3)=3Fig.2 Effect of eluent (methanol) concentration on the recovery of acrylamide (n = 3)
2.3.2 洗脫液體積的選擇
圖 3 丙烯酰胺淋洗曲線Fig.3 Acrylamide elution curve with different eluent volumes
由圖3可知,隨著超純水體積不斷增加,丙烯酰胺的回收率逐漸升高。當(dāng)超純水體積達(dá)到3 mL時(shí),丙烯酰胺回收率達(dá)到83.5%。隨后再增加洗脫劑體積,丙烯酰胺回收率并沒(méi)有明顯增加,由此說(shuō)明用3 mL的水就可將丙烯酰胺基本洗脫出來(lái),再加大洗脫量并不能更大程度地提高回收率,故從經(jīng)濟(jì)的角度講,選擇3 mL為洗脫體積較合適。
2.4 方法評(píng)價(jià)
2.4.1 線性關(guān)系與最低檢出限
丙烯酰胺在0.05~1.00 μg/mL之間,峰面積和質(zhì)量濃度呈良好的線性關(guān)系,回歸方程為y=0.981 4x+0.262 3,線性相關(guān)系數(shù)R2為0.999 8。以信噪比為3的條件下計(jì)算得出丙烯酰胺的最低檢出限(定性檢出限)為6 μg/kg,以信噪比為10的條件下計(jì)算得出丙烯酰胺的定量檢出限為20 μg/kg。丙烯酰胺標(biāo)準(zhǔn)品色譜圖見(jiàn)圖4。
圖 4 丙烯酰胺標(biāo)品高效液相色譜圖Fig.4 HPLC Chromatogram of acrylamide standard
2.4.2 精密度與回收率
表 3 高效液相色譜方法檢測(cè)油炸豬肉中丙烯酰胺的加標(biāo)回收率(n=5)Table 3 Recoveries of acrylamide spiked in deep-fried pork by the HPLC method (n= 5)
圖 5 實(shí)際樣品高效液相色譜檢測(cè)圖Fig.5 HPLC chromatogram of real sample
回收率可以反映出待測(cè)物質(zhì)在樣品分析處理過(guò)程中的損失程度,回收率越高說(shuō)明損失越少,其方法的準(zhǔn)確度也就越高。分別按照50、100、200 μg/kg的加標(biāo)水平向樣品中加入丙烯酰胺標(biāo)準(zhǔn)品,計(jì)算平均回收率(表3)。結(jié)果表明,丙烯酰胺的加標(biāo)回收率在90%~92%之間,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差小于3.5%,說(shuō)明本研究的樣品準(zhǔn)備方法和高效液相色譜檢測(cè)方法可靠、精密度高。油炸豬肉中丙烯酰胺的加標(biāo)前含量為108 μg/kg,其檢測(cè)色譜圖見(jiàn)圖5。
本實(shí)驗(yàn)建立了油炸豬肉中丙烯酰胺的固相萃取-高效液相色譜檢測(cè)方法。該方法通過(guò)正己烷脫去樣品之中的脂類(lèi),經(jīng)過(guò)氯化鈉溶液提取和乙酸乙酯萃取后,采用固相萃取柱的固相萃取,可較好地除去干擾雜質(zhì),大大提高樣品的凈化程度,該法定性檢出限達(dá)6 μg/kg,定量檢出限為20 μg/kg,回收率在90%~92%之間,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差小于3.5%。本方法操作簡(jiǎn)便、快速,對(duì)所需液相色譜儀器要求較低,可在大多數(shù)實(shí)驗(yàn)室中進(jìn)行,具有較好的推廣價(jià)值。
[1] ORACZ J, NEBESNY E, ZYZELEWICZ D. New trends in quantifi cation of acrylamide in food products[J]. Talanta, 2011, 86(30): 23-34.
[2] BENFORDA D, BOLGER P M, CARTHEW P, et al. Application of the margin of exposure approach to substances in food that are genotoxic and carcinogenic[J]. Food and Chemical Toxicology, 2010, 48(Suppl 1): 2-24.
[3] BUSK L. Acrylamide: a case study on risk analysis[J]. Food Control, 2010, 21(12): 1677-1682.
[4] SKOG K, VIKLUND G. Processing contaminants: acrylamide[J]. Encyclopedia of Food Safety, 2014, 2: 363-370.
[5] FOOT R J, HAASE N U, GROB K, et al. Acrylamide in fried and roasted potato products: a review on progress in mitigation[J]. Food Additives and Contaminants, 2007, 24(Suppl 1): 37-46.
[6] SKOG K, VIKLUND G. Processing contaminants: acrylamide[J]. Encyclopedia of Food Safety, 2014, 5: 363-370.
[7] ROSEN J, HEILENAS K E. Analysis acrylamide in cooked foods by liquid chromatograohy tandem mass spectrometry[J]. Analyst, 2002, 127(7): 880-882.
[8] VINCI R M, MESTDAGH F, MEULENAER B D. Acrylamide formation in fried potato products-present and future, a critical review on mitigation strategies[J]. Food Chemistry, 2012, 133(4): 1138-1154.
[9] ZHANG Yu, XU Weizhong, WU Xiaoqin. Addition of antioxidant from bamboo leaves as an effective way to reduce the formation of acrylamide in fried chicken wings[J]. Food Additves and Contaminants, 2007, 24(3): 242-251.
[10] BIEDERMANN M, GROB K. In GC-MS, acrylamide from heated foods may be coeluted with 3-hydroxy propionitrile[J]. European Food Research and Technology, 2008, 227(3): 945-948.
[11] EEROLA U, HOLLEBEKKERS K, HALLIKAINEN A, et al. Acrylamide levels in Finnish foodstuffs analysed with liquid chromatography tandem mass spectrometry[J]. Molecular Nutrition and Food Research, 2007, 51(2): 239-247.
[12] SUN Shiyu, FANG Yun, XIA Yongmei. A facile of acrylamide in starchy food by using a solid extraction-GC strategy[J]. Food Control, 2012, 26(2): 220-222.
[13] WANG Haiyan, FENG Feng, GUO Yong, et al. HPLC-UV quantitative analysis of acrylamide in baked and deep-fried Chinese foods[J]. Journal of Food Composition and Analysis, 2013, 31(1): 7-11.
[14] MIZUKAMI Y, KOHATA K, YAMAGUCHI Y. Analysis of acrylamide in green tea by gas chromatography-mass spectrometry[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2006, 54(19): 7370-7377.
[15] 程劼, 蘇曉鷗, 張維. 氣相色譜-串聯(lián)四極桿質(zhì)譜測(cè)定餐廚廢棄物中的丙烯酰胺[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué), 2012, 45(16): 3373-3381.
[16] ZYZAK D V, SANDERS R A, STOJANOVI M, et al. Acrylamide formation mechanism in heated foods[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2003, 51(16): 4782-4787.
[17] RUFIAN-HENARES J A, MORALES F J. Determination of acrylamide in potato chips by a reversed-phase LC-MS method based on a stable isotope dilution assay[J]. Food Chemistry, 2006, 97(3): 555-562.
[18] PALEOLOGOS E K, KONTOMINAS M G. Determination of acrylamide and methacrylamide by normal phase high performance liquid chromatography and UV detection[J]. Journal of Chromatography A, 2005, 1007(2): 128-135.
[19] JIANG Donglei, SUN Xiulan, ZHANG Yinzhi. Preparation and application of acrylamide molecularly imprinted solid-phase extraction materials[J]. Analytical Methods, 2012, 4(11): 3760-3766.
[20] 程雷, 鄭炎夏, 徐虹, 等. 固相萃取-高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測(cè)定食品中的丙烯酰胺[J]. 食品科學(xué), 2012, 33(2): 231-234.
[21] TEKKELI S E, ONAL C, ONAL A. A review of current methods for the determination of acrylamide in food products[J]. Food Analytical Methods, 2012, 5(1): 29-39.
[22] MICHALAK J, GUJSKA E, KUNCEWICZ A. RP-HPLC-DAD studies on acrylamide in cereal-based baby foods[J]. Journal of Food Composition and Analysis, 2013, 32(1): 68-73.
[23] 孫秀蘭, 紀(jì)劍, 安璐, 等. 丙烯酰胺樣品前處理及其檢測(cè)方法研究進(jìn)展[J]. 食品與生物技術(shù)學(xué)報(bào), 2013, 32(5): 456-459.
[24] 廖燕芝, 黃輝, 楊代明, 等. GC-MS測(cè)定食品中丙烯酰胺含量的定量方法比較[J]. 食品與機(jī)械, 2013, 29(5): 91-94.
[25] XIE Shanling, WANG Kai, ZHU Ruizhi, et al. Solid phase extractionultra performance liquid chromatography for the determination of acrylamide in mainstream cigarette smoke[J]. Mendeleev Communication, 2009, 19(6): 344-345.
Determination of Acrylamide in Deep-Fried Pork by Solid Phase Extraction-High Performance Liquid Chromatography
SHAO Meili1, HAO Xingyu1, LIU Wei1,2, CUI Chengyuan1, YUAN Zhaofeng1, DONG Xin1
(1. College of Food Sciences, Northeast Agricultural University, Harbin 150030, China;2. Jiamusi Entry-Exit Inspection and Quarantine Bureau, Jiamusi 154002, China)
A method for the determination of acrylamide in deep-fried pork has been proposed using solid phase extraction (SPE) and high performance liquid chromatography (HPLC). Samples were degreased with n-hexane and extracted sequentially with 2 mol/L sodium chloride solution followed by ethyl acetate. Then the extract was cleaned up on an Oasis HLB solid phase extraction column and separated on a Hypersi10DS2-C18chromatographic column with a mobile phase consisting of methanol and water (5:95, V/V). Acrylamide was analyzed quantitatively by internal standard method. The results showed that the limit of qualitative detection of the proposed method was 6 μg/kg, and the limit of quantitative detection was 20 μg/kg. The standard curve was linear within the range of 0.05–1.00 μg/mL with a correlation coefficient of 0.999 8. The recoveries of the spiked sample ranged between 90% and 92% with a relative standard deviation (RSD) lower than 3.5%. This method proved to be simple, fast and highly sensitive.
deep-fried pork; acrylamide; solid-phase extraction; high performance liquid chromatography
TS201.6
A
1002-6630(2015)08-0231-05
10.7506/spkx1002-6630-201508043
2014-07-04
黑龍江省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(C201303);黑龍江省教育廳科學(xué)技術(shù)研究項(xiàng)目(12541045);
“十二五”國(guó)家科技支撐計(jì)劃項(xiàng)目(2012BAD28B00-01-02)
邵美麗(1974—),女,副教授,博士,研究方向?yàn)槭称钒踩刂?。E-mail:shml0915@163.com