塞來(lái)昔布對(duì)結(jié)腸癌細(xì)胞增殖、凋亡的影響及機(jī)制
石國(guó)一,秦占川,劉玉玲,王敏
(贊皇縣醫(yī)院,河北贊皇 051230)
摘要:目的探討塞來(lái)昔布對(duì)結(jié)腸癌細(xì)胞HT-29增殖、凋亡的影響及機(jī)制。方法取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期結(jié)腸癌細(xì)胞株HT-29,分別加入終濃度為10、20、40、80、160、320 μmol/L的塞來(lái)昔布進(jìn)行干預(yù),MTT法檢測(cè)細(xì)胞增殖情況;流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞周期分布及凋亡;Western blotting、RT-PCR法檢測(cè)Cox-2表達(dá)。結(jié)果塞來(lái)昔布干預(yù)后HT-29細(xì)胞生長(zhǎng)受到明顯抑制,且呈時(shí)間、劑量依賴(lài)性(P均<0.05)。塞來(lái)昔布作用24 h后,HT-29細(xì)胞G0/G1期比例明顯升高,S期細(xì)胞比例降低(P均<0.05);塞來(lái)昔布處理后細(xì)胞凋亡率明顯升高(P均<0.05);細(xì)胞Cox-2蛋白及mRNA表達(dá)均明顯降低(P均<0.05)。結(jié)論 塞來(lái)昔布可體外抑制結(jié)腸癌細(xì)胞株增殖并誘導(dǎo)凋亡,其機(jī)制可能與抑制Cox-2蛋白表達(dá)有關(guān)。
關(guān)鍵詞:結(jié)腸癌;塞來(lái)昔布;HT-29細(xì)胞;細(xì)胞凋亡;Cox-2蛋白
doi:10.3969/j.issn.1002-266X.2015.45.013
中圖分類(lèi)號(hào):R735.35文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
收稿日期:(2015-06-10)
目前認(rèn)為,結(jié)腸癌發(fā)生可能與慢性炎癥刺激有關(guān)[1],非甾體類(lèi)抗炎藥(NAIDs)可降低結(jié)腸癌發(fā)病風(fēng)險(xiǎn)[2]。Cox是NAIDs的主要作用靶點(diǎn),包括Cox-1和Cox-2兩種亞型。Cox-2可催化花生四烯酸轉(zhuǎn)化為多種前列腺素產(chǎn)物,在炎癥過(guò)程中發(fā)揮重要作用。研究[3]表明,結(jié)腸癌中可見(jiàn)到Cox-2過(guò)表達(dá)。塞來(lái)昔布是一種選擇性Cox-2抑制劑,對(duì)包括結(jié)腸癌在內(nèi)的多種腫瘤具有抑制作用,并可增強(qiáng)化療藥物效果[4],但具體作用機(jī)制尚待進(jìn)一步研究。2014年5月,我們探討了塞來(lái)昔布對(duì)結(jié)腸癌細(xì)胞株HT-29細(xì)胞周期、細(xì)胞凋亡的影響及機(jī)制。
1材料與方法
1.1材料結(jié)腸癌HT-29細(xì)胞株購(gòu)自上海細(xì)胞庫(kù);塞來(lái)昔布購(gòu)自南京德寶生化器材有限公司;四甲基偶氮唑鹽(MTT)購(gòu)自美國(guó)Sigma公司; AnnexinV-FITC凋亡試劑盒購(gòu)自杭州聯(lián)科生物公司;小鼠抗人Cox-2單克隆抗體購(gòu)自Santa Cruz公司。
1.2細(xì)胞培養(yǎng)、分組及干預(yù)大腸癌細(xì)胞株HT-29采用10%胎牛血清的McCoy′s 5A培養(yǎng)液培養(yǎng)。選擇對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞,調(diào)整為單細(xì)胞懸液,接種于96孔板。10、20、40、80、160、320 μmol/L塞來(lái)昔布處理組分別加入終濃度為10、20、40、80、160、320 μmol/L的塞來(lái)昔布,溶劑對(duì)照組給予DMSO。
1.3細(xì)胞生長(zhǎng)存活率測(cè)算細(xì)胞培養(yǎng)24、48 h后,采用MTT法檢測(cè)細(xì)胞增殖情況。根據(jù)公式計(jì)算細(xì)胞生長(zhǎng)存活率:細(xì)胞生長(zhǎng)存活率=實(shí)驗(yàn)組A值/對(duì)照組A值×100%。
1.4細(xì)胞周期及凋亡情況檢測(cè)收集細(xì)胞,將細(xì)胞濃度調(diào)整為1×106/L。取0.5 mL細(xì)胞懸液,加入2 mL 75%冰乙醇,固定后檢測(cè)細(xì)胞周期。同時(shí)取0.5 mL細(xì)胞懸液,離心棄上清,加入0.5 mL Binding Buffer重懸細(xì)胞,按說(shuō)明書(shū)操作檢測(cè)細(xì)胞凋亡情況。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.5HT-29細(xì)胞Cox-2蛋白檢測(cè)采用Western blotting法。收集細(xì)胞,PBS洗滌后加入適量RIPA細(xì)胞裂解液,置冰上孵育1 h,4 ℃、12 000 r/min離心30 min。采用BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒定量蛋白。每一處理組取等量蛋白,95 ℃變性5 min后冷卻上樣。變性不連續(xù)聚丙烯酰胺凝膠電泳后轉(zhuǎn)移至PVDF膜,封閉。加入1∶500稀釋的小鼠抗人Cox-2單克隆抗體,4 ℃過(guò)夜。用1×TBS-T洗膜3次,每次10 min。加入辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的1∶5 000濃度的二抗,反應(yīng)1.5 h,洗膜后ECL發(fā)光法顯色。
1.6HT-29細(xì)胞Cox-2 mRNA檢測(cè)采用RT-PCR法。通過(guò)TRIzol一步法(Gibco公司)提取細(xì)胞總RNA。按反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Promega公司)說(shuō)明書(shū)操作合成cDNA。PCR反應(yīng)體系:GoTaq Green Master 12.5 μL,上下游引物1 μL,2 μL反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物,加水至終體積25 μL。至PCR擴(kuò)增儀上,95 ℃變性5 min,94 ℃ 50 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,35個(gè)循環(huán)后72 ℃延伸10 min。Cox-2引物上游5′-CAGAGTTG-GAAGCACTCTATGG-3′;下游5′-GGACAGCCCTTCA-CGTTATT-3′。PCR產(chǎn)物置于1.5%瓊脂糖凝膠中電泳,紫外分析儀觀察并照相,凝膠分析軟件分析各條帶平均灰度值。
2結(jié)果
2.1塞來(lái)昔布對(duì)HT-29細(xì)胞生長(zhǎng)的影響在20~320 μmol/L濃度范圍內(nèi),塞來(lái)昔布對(duì)HT-29細(xì)胞的生長(zhǎng)抑制呈濃度及時(shí)間依賴(lài)性(P均<0.05)。10 μmol/L濃度塞來(lái)昔布對(duì)細(xì)胞存活無(wú)明顯影響(P>0.05)。10、20、40、80、160、320 μmol/L的塞來(lái)昔布作用24、48 h后細(xì)胞生長(zhǎng)存活率見(jiàn)表1。
表1 塞來(lái)昔布作用24、48 h后HT-29細(xì)胞
注:與對(duì)照組相比,*P<0.05。
2.2塞來(lái)昔布對(duì)HT-29細(xì)胞周期分布的影響與對(duì)照組相比,塞來(lái)昔布處理細(xì)胞24 h后, 20、40、80 μmol/L基來(lái)昔布處理組G0/G1期細(xì)胞百分比明顯升高(P均<0.05)。20、40、80 μmol/L塞來(lái)昔布處理組S期細(xì)胞比例較對(duì)照組明顯減低(P均<0.05),見(jiàn)表2。
表2 塞來(lái)昔布處理后HT-29細(xì)胞周期分布比例
注:與對(duì)照組相比,*P<0.05。
2.3塞來(lái)昔布對(duì)HT-29細(xì)胞凋亡的影響20、40和80 μmol/L塞來(lái)昔布處理24 h后,HT-29細(xì)胞凋亡率分別為(9.56±0.71)%、(13.36±1.55)%和(17.45±2.21)%,對(duì)照組為(6.60±0.58)%,與對(duì)照組比較,P均<0.05。
2.4塞來(lái)昔布對(duì)Cox-2蛋白及mRNA表達(dá)的影響40 μmol/L塞來(lái)昔布處理組與對(duì)照組Cox-2蛋白表達(dá)量分別為0.196±0.035、0.542±0.047,Cox-2 mRNA表達(dá)量分別為0.413±0.051、0.926±0.063,兩組Cox-2蛋白及mRNA表達(dá)比較,P<0.05。
3 討論
結(jié)腸癌是我國(guó)較常見(jiàn)的胃腸道惡性腫瘤,近年來(lái)發(fā)病率呈上升趨勢(shì)。許多患者確診時(shí)已達(dá)晚期,不但喪失了手術(shù)機(jī)會(huì),而且對(duì)放化療敏感性下降,5年生存率不到20%[5]。因此,尋找新的治療手段或藥物十分必要。NSAIDs具有降低結(jié)腸癌發(fā)病率的作用,對(duì)結(jié)腸癌的治療有重要意義。傳統(tǒng)NSAIDs同時(shí)影響Cox-1與Cox-2表達(dá),可造成包括胃腸道出血等在內(nèi)的嚴(yán)重不良反應(yīng),臨床應(yīng)用受到限制。塞來(lái)昔布是選擇性Cox-2抑制劑,可抑制多種腫瘤細(xì)胞增殖[6],并增強(qiáng)放化療對(duì)腫瘤的殺傷作用[7]。與傳統(tǒng)NSAIDs相比,具有較好的耐受性[8],因此具有較好的臨床應(yīng)用前景。本研究發(fā)現(xiàn),塞來(lái)昔布在體外可抑制結(jié)腸癌細(xì)胞HT-29增殖,提示其具有一定的抗腫瘤作用。
為了進(jìn)一步觀察塞來(lái)昔布對(duì)HT-29細(xì)胞的抑制作用,我們通過(guò)流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)HT-29細(xì)胞周期及凋亡情況。結(jié)果顯示,塞來(lái)昔布作用后,G0/G1期細(xì)胞比例增加,而S期細(xì)胞比例降低,提示HT-29細(xì)胞發(fā)生了細(xì)胞周期G0/G1期阻滯。與對(duì)照組相比,塞來(lái)昔布處理組細(xì)胞凋亡率明顯增高。提示塞來(lái)昔布可以通過(guò)誘導(dǎo)細(xì)胞周期阻滯、促進(jìn)凋亡而發(fā)揮抑制HT-29細(xì)胞增殖的作用。這一過(guò)程可能涉及多個(gè)信號(hào)途徑,如NF-κB型號(hào)通路[9]、p53[10]等。
Cox-2對(duì)腫瘤細(xì)胞的作用機(jī)制是目前研究熱點(diǎn)。Cox-2是一種誘導(dǎo)表達(dá)型酶,生理狀態(tài)下無(wú)表達(dá)或低水平表達(dá),但在細(xì)胞因子、生長(zhǎng)因子、致癌劑及某些癌基因產(chǎn)物的刺激下,其表達(dá)可明顯增加[11],促進(jìn)花生四烯酸轉(zhuǎn)化為多種前列腺素產(chǎn)物,在炎癥及腫瘤的發(fā)生中起到重要作用。前列腺素E2(PGE2)是一種重要的Cox-2催化產(chǎn)物,與腫瘤血管新生及腫瘤細(xì)胞侵襲、轉(zhuǎn)移、逃避免疫監(jiān)視等密切相關(guān)[12]。研究發(fā)現(xiàn),Cox-2抑制劑可下調(diào)腫瘤細(xì)胞中PGE2水平,并抑制細(xì)胞增殖。選擇性Cox-2抑制劑如Celecoxib與其他藥物具有協(xié)同作用,可通過(guò)下調(diào)mTOR信號(hào)途徑活性抑制腫瘤細(xì)胞增殖[13]。本研究采用RT-PCR法檢測(cè)發(fā)現(xiàn),HT-29細(xì)胞中存在Cox-2表達(dá)。塞來(lái)昔布作用后,HT-29細(xì)胞中的Cox-2蛋白表達(dá)明顯下降,提示塞來(lái)昔布可能通過(guò)下調(diào)細(xì)胞內(nèi)Cox-2表達(dá)水平抑制其催化產(chǎn)物如PGE2的生成,以及影響其他信號(hào)通路活性,從而抑制結(jié)腸癌腫瘤細(xì)胞增殖。
綜上所述,塞來(lái)昔布在體外可抑制結(jié)腸癌細(xì)胞增殖,誘導(dǎo)發(fā)生細(xì)胞周期阻滯及凋亡,其機(jī)制可能與抑制細(xì)胞中Cox-2蛋白表達(dá)有關(guān)。
參考文獻(xiàn):
[1] Danese S, Mantovani A. Inflammatory bowel disease and intestinal cancer: a paradigm of the Yin-Yang interplay between inflammation and cancer [J]. Oncogene, 2010,29(23):3313-3323.
[2] Gr?sch S, Maier TJ, Sciffmann S, et al. Cyclooxygenase-2 (COX-2)-independent anticarcinogenic effects of selective COX-2 inhibitors [J]. J Natl Cancer Inst, 2006,98(11):736-747.
[3] Shiff SJ, Rigas B. The role of cyclooxygenase inhibition in the antineoplastic effects of nonsteroidal antiinflammatory drugs (NSAIDs) [J]. J Exp Med, 1999,190(4):445-450.
[4] Zhang DQ, Guo Q, Zhu JH, et al. Increase of cyclooxygenase-2 inhibition with celecoxib combined with 5-FU enhances tumor cell apoptosis and antitumor efficacy in a subcutaneous implantation tumor model of human colon cancer [J]. World J Surg Oncol, 2013,(11):16.
[5] Jemal A, Bray F, Center MM, et al. Global cancer statistics [J]. CA Cancer J Clin, 2011,61(2):69-90.
[6] 陳超,郭雪興,劉軍權(quán),等.塞來(lái)昔布聯(lián)合NK細(xì)胞對(duì)裸鼠人肝癌皮下移植瘤生長(zhǎng)的影響[J]. 山東醫(yī)藥,2014,54(29):8-11.
[7] Rao PN, Grover RK. Apricoxib, a COX-2 inhibitor for the potential treatment of pain and cancer [J]. IDrugs, 2009,12(11):711-722.
[8] Schwartz JI, Dallob AL, Larson PJ, et al. Comparative inhibitory activity of etoricoxib, celecoxib, and diclofenac on COX-2 versus COX-1 in healthy subjects [J]. J Clin Pharmacol, 2008,48(6):745-754.
[9] Funakoshi-Tago M, Shimizu T, Tago K, et al. Celecoxib potently inhibits TNFalpha-induced nuclear translocation and activation of NF-kappaB [J]. Biochem Pharmacol, 2008,76(5):662-671.
[10] Liu HF, Hsiao PW, Chao JI. Celecoxib induces p53-PUMA pathway for apoptosis in human colorectal cancer cells [J]. Chem Biol Interact, 2008,176(1):48-57.
[11] Compare D, Nardone O, Nardone G. Non-steroidal antiinflammatory drugs in the carcinogenesis of the gastrointestinal tract [J]. Pharmaceuticals, 2010,3(8):2495-2516.
[12] Wang D, Dubois RN. Prostaglandins and cancer [J]. Gut, 2006, 55(1):115-122.
[13] Li J, Xue L, Hao H, et al. Rapamycin combined with celecoxib enhanced antitumor effects of mono treatment on chronic myelogenous leukemia cells through downregulating mTOR pathway [J]. Tumour Biol, 2014,35(7):6467-6474.