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      高體積分?jǐn)?shù)CO2處理對柿果實褐變的影響

      2016-05-03 16:09閔婷鄭夢林李陽殷學(xué)仁陳昆松易陽
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年3期
      關(guān)鍵詞:褐變

      閔婷+鄭夢林+李陽+殷學(xué)仁+陳昆松+易陽+王宏勛

      摘要: 澀柿果實采收后須經(jīng)人工脫澀才能用于鮮食,其中高體積分?jǐn)?shù)CO2脫澀處理應(yīng)用最廣泛。經(jīng)高體積分?jǐn)?shù)CO2處理后,柿果實在貯藏過程中也會發(fā)生褐變。多酚氧化酶PPO作為酶促褐變最關(guān)鍵的基因,在各種果蔬中的研究較多,而關(guān)于PPO基因是否參與澀柿果實脫澀后褐變的研究尚未見報道。以“恭城水柿”為材料,經(jīng)95% CO2處理2 d后切片,通過可溶性單寧含量測定、褐變程度觀察、PPO基因克隆與表達分析研究CO2處理對“恭城水柿”褐變的影響。結(jié)果表明,經(jīng)95% CO2處理后,柿果實的可溶性單寧含量明顯下降,柿果實完成脫澀。脫澀后的柿鮮切片于20 ℃下放置12 h后發(fā)生明顯褐變。本研究克隆獲得PPO基因部分片段序列,聚類分析表明,該PPO基因與蘋果PPO基因較同源;基因表達分析顯示,該PPO基因在CO2處理后的鮮切柿片中的表達量比對照低,表明該PPO基因可能與柿子脫澀后的褐變無相關(guān)性。

      關(guān)鍵詞: 恭城水柿;脫澀;褐變;PPO

      中圖分類號: TS255.3 文獻標(biāo)志碼: A 文章編號:1002-1302(2016)03-0288-03

      柿(Diospyros kaki)屬于柿科(Ebenaceae)柿屬(Diospyros),起源于東亞,主要分布于中國、日本、韓國等東亞國家[1]。不同于其他水果,柿果實的獨特之處在于其能累積大量單寧,其中可溶性單寧可導(dǎo)致澀味。柿果實根據(jù)其自然脫澀的能力分為甜柿和澀柿。甜柿能在樹上自然完成脫澀,采收后可直接食用;澀柿果實成熟時可溶性單寧含量仍較高,采收后須經(jīng)人工脫澀方能鮮食[2]。我國栽培的品種多為澀柿,澀柿的脫澀技術(shù)較為成熟,包括乙烯處理、CO2處理[3]、溫水浸泡、交替凍融[4]等,其中高體積分?jǐn)?shù)CO2處理應(yīng)用最為廣泛。然而,高體積分?jǐn)?shù)CO2處理柿果實后,果實在貯藏過程中也會發(fā)生褐變,且處理時間越長則褐變程度越深[5],使柿果實在貯藏和貨架期的果實品質(zhì)下降。

      褐變是果實品質(zhì)劣變最明顯的特征之一,不僅影響果品的營養(yǎng)、外觀、風(fēng)味,并已成為果蔬貯藏加工的主要障礙[6]。果蔬褐變多以酶促褐變?yōu)橹?,與酶促褐變密切相關(guān)的酶類主要為多酚氧化酶(polyphenol oxidase,PPO),多酚類物質(zhì)在PPO的作用下氧化成醌,醌再聚合生成黑色或褐色的色素沉淀,組織表現(xiàn)為褐變。隨著分子生物學(xué)的發(fā)展,馬鈴薯[7]、梨[8]、甘薯[9]、蘑菇[10]、蓮藕[11]等植物的PPO基因相繼被克隆,而關(guān)于柿果實中PPO酶活性及其特性的報道較少。

      以“恭城水柿”為材料,經(jīng)95% CO2處理2 d后切片,通過可溶性單寧含量分析、褐變程度觀察、PPO基因克隆與表達分析研究CO2處理對“恭城水柿”褐變的影響,并進行PPO基因的克隆、進化樹分析、基因表達分析,以期闡明柿果實脫澀后褐變的生物學(xué)機制。

      1 材料與方法

      1.1 原料與試劑

      供試“恭城水柿”購自廣西壯族自治區(qū)恭城縣商業(yè)果園。甲醇、沒食子酸、福林酚、NaCO3、NaCl、HCl、十六烷基三甲基溴化銨、三羥甲基氨基甲烷、乙二胺四乙酸、聚乙烯吡咯烷酮、LiCl、十二烷基硫酸鈉、氯仿、異戊醇、無水乙醇均購自國藥集團化學(xué)試劑有限公司。DEPC水、亞精胺、巰基乙醇均購自上海生工試劑公司。液氮購自湖北省武漢市明輝氣體有限公司。雙蒸水。

      1.2 主要儀器

      V-110D型紫外可見分光光度計(上海美譜達儀器有限公司),HH-S4型數(shù)顯恒溫水浴鍋(金壇市醫(yī)療儀器廠),GL-20G-2型飛鴿牌離心機(上海安亭科學(xué)儀器廠),00101D型立式壓力蒸汽滅菌鍋(上海博訊實業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠),S2-93型自動雙重純水蒸餾器(上海亞榮生化儀器廠),DHG-9140A型電熱鼓風(fēng)干燥器(上海一恒科學(xué)儀器有限公司),HYC-326A型醫(yī)用冷藏箱(青島海爾特種電器有限公司),DYCP-31DN型電泳儀(北京市六一儀器廠),CP214(C)型電子天平(上海奧豪斯儀器有限公司),PTT-A500型電子天平(福州華志科學(xué)儀器有限公司),IMS-20型雪科制冰機(常熟市雪科電器有限公司),凝膠成像儀(美國伯樂公司)。

      1.3 試驗方法

      1.3.1 脫澀處理 成熟“恭城水柿”果實自商業(yè)果園采收后,于2 d內(nèi)運至實驗室。選擇成熟度相對一致、果形勻稱、大小中等、無機械損傷的果實進行相關(guān)采后試驗。將果實平均分為2組,每組約50個,一組經(jīng)95% CO2處理2 d后轉(zhuǎn)貨架[12];另一組作為對照,置于20 ℃下直至試驗結(jié)束。

      1.3.2 切片處理 將脫澀試驗完成后的處理組和對照組果實去皮,并切片為3.0 cm×3.0 cm×0.3 cm大小,2組各切30片,置于20 ℃下12 h后拍照,液氮取樣用于后期試驗。

      1.3.3 可溶性單寧含量測定 采用福林酚方法[12]進行可溶性單寧含量測定。沒食子酸用于標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作,每次測量重復(fù)3次,每個點進行3次生物學(xué)重復(fù)??扇苄詥螌幍馁|(zhì)量分?jǐn)?shù)用果實質(zhì)量的百分含量表示。

      1.3.4 PPO基因的克隆與表達 進行PPO基因的克隆[11],根據(jù)前期RNA-seq獲得PPO基因序列,利用Primer 3在線軟件(http://bioinfo.ut.ee/primer3-0.4.0/primer3/)設(shè)計引物(表1)。按照試劑盒PCR擴增所得的目標(biāo)片段連接,轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH5α(TaKaRa公司),挑選陽性克隆并進行測序驗證。

      進行PPO基因表達試驗[12],包括模板合成、引物特異性檢測、實時定量PCR(QPCR)分析。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 95% CO2處理對柿果實可溶性單寧含量的影響

      可溶性單寧是柿果實澀味的主要呈現(xiàn)者,可溶性單寧含量越高則澀味越嚴(yán)重。試驗測定了對照組及95% CO2處理2 d后的柿果實可溶性單寧含量。結(jié)果表明,經(jīng)95% CO2處理后,可溶性單寧含量僅為0.19%,明顯低于對照組的1.40%(圖1),這與已有研究的結(jié)論[12]相一致。可見,95% CO2處理能明顯降低“恭城水柿”的可溶性單寧含量,實現(xiàn)柿果實的脫澀。

      2.2 95% CO2處理對柿果實褐變的影響

      將95% CO2處理后的柿果實切片為3.0 cm×3.0 cm×0.3 cm,于室溫放置12 h后觀察拍照(圖2)。結(jié)果表明,對照果實無明顯變化;經(jīng)95% CO2處理后的果實切片褐變現(xiàn)象明顯,這與已有研究的結(jié)論[5]相一致??梢?,95% CO2處理能使“恭城水柿”在貯藏后期發(fā)生褐變。

      2.3 柿果實PPO基因的克隆與表達

      根據(jù)前期RNA-seq結(jié)果設(shè)計PPO基因克隆引物、熒光定量PCR引物(表1),并克隆獲得PPO基因部分片段序列,命名為DkPPO。與馬鈴薯、蘋果、番茄的PPO基因進行聚類分析顯示,DkPPO與蘋果PPO基因同源關(guān)系較近(圖3)。進一步基因表達分析表明,該PPO基因在CO2處理后的鮮切柿片中的表達量比對照低(圖4),表明該PPO基因可能未參與柿果實脫澀處理后的褐變。

      3 結(jié)論

      本研究探討了CO2處理對“恭城水柿”褐變的影響。結(jié)果表明,柿果實經(jīng)95% CO2處理后,其可溶性單寧含量明顯下降,柿果實完成脫澀。脫澀后的柿鮮切片于20 ℃下放置12 h后發(fā)生明顯褐變??寺~@得PPO基因部分片段序列,基因表達結(jié)果顯示,DkPPO基因在CO2處理后的鮮切柿片中的表達量比對照低,表明該PPO基因可能未參與柿果實脫澀處理后的褐變。CO2處理導(dǎo)致“恭城水柿”褐變的原因有待進一步研究。

      參考文獻:

      [1]Wang R Z,Yang Y,Li G C. Chinese persimmon germplasm resources[J]. Acta Horticulturae,1997,436:43-50.

      [2]Min T,Yin X R,Shi Y N,et al. Ethylene-responsive transcription factors interact with promoters of ADH and PDC involved in persimmon(Diospyros kaki)fruit de-astringency[J]. Journal of Experimental Botany,2012,63(18):6393-6405.

      [3]Taira S,Ono M,Otsuki M. Effects of freezing rate on astringency reduction in persimmon during and after thawing[J]. Postharvest Biology and Technology,1998,14(3):317-324.

      [4]Akagi T,Ikegami A,Tsujimoto T,et al. DkMyb4 is a Myb transcription factor involved in proanthocyanidin biosynthesis in persimmon fruit[J]. Plant Physiology,2009,151(4):2028-2045.

      [5]Novillo P,Salvador A,Llorca E,et al. Effect of CO2 deastringency treatment on flesh disorders induced by mechanical damage in persimmon:Biochemical and microstructural studies[J]. Food Chemistry,2014,145:454-463.

      [6]宋曉雪,胡文忠,畢 陽,等. 鮮切果蔬酶促褐變關(guān)鍵酶的研究進展[J]. 食品工業(yè)科技,2013,34(15):390-393.

      [7]Hunt M D,Eannetta N T,Yu H F,et al. cDNA cloning and expression of potato polyphenol oxidase[J]. Plant Molecular Biology,1993,21(1):59-68.

      [8]Nishimum M F C,Some Properties of Japanese pear(Pyrus pyrifolia) po1yphenol oxldase and changes in browning potential during fruit maturation[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture,2003,83:1156-1162.

      [9]Liao Z,Chen R M. Molecular cloning and characterization polyphenol oxidase gene from sweet potato[J]. Molecular Biology,2006,40(6):907-913.

      [10]Li N Y,Wm C,Jin Q L,et al. Molecular cloning and expression of polyphenol oxidase gene from the mushroom,Agaricus bisporus[J]. Agricultural Science in China,2011,10(2):185-194.

      [11]張躍進,郝曉燕,梁宗鎖,等. 蓮藕多酚氧化酶基因(PPO)的克隆與表達分析[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報,2011,19(4):634-641.

      [12]Min T,F(xiàn)ang F,Ge H,et al. Two novel anoxia-induced ethylene response factors that interact with promoters of deastringency-related genes from persimmon[J]. PLoS One,2014(9):e97043.

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