海洋微藻在南日鮑生態(tài)養(yǎng)殖中的應(yīng)用研究

朱　豐，林向陽，劉施琳，張翠平，陳曉燕，黃金城，沈　英，阮榕生，3

（1.福州大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院，福建福州　350108；2.福州大學(xué)機(jī)械工程及自動(dòng)化學(xué)院，福建福州　350108；3.明尼蘇達(dá)大學(xué)生態(tài)系統(tǒng)與農(nóng)業(yè)工程系，美國明尼蘇達(dá)圣保羅　55108）

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海洋微藻在南日鮑生態(tài)養(yǎng)殖中的應(yīng)用研究

朱豐1，*林向陽1，劉施琳1，張翠平1，陳曉燕1，黃金城1，沈英2，阮榕生1，3

（1.福州大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院，福建福州350108；2.福州大學(xué)機(jī)械工程及自動(dòng)化學(xué)院，福建福州350108；3.明尼蘇達(dá)大學(xué)生態(tài)系統(tǒng)與農(nóng)業(yè)工程系，美國明尼蘇達(dá)圣保羅55108）

摘要：微藻在水產(chǎn)養(yǎng)殖和凈化水質(zhì)方面具有巨大的優(yōu)勢。通過研究在南日幼鮑養(yǎng)殖水中添加新鮮綠色巴夫藻（Pavlova viridis）和球等鞭金藻（Isochrysis galbana）對養(yǎng)殖水及幼鮑的影響，設(shè)置不同的光照強(qiáng)度，以養(yǎng)殖水的光吸收值、養(yǎng)殖水水質(zhì)、幼鮑的成活率及生長情況等為指標(biāo)，探討在南日鮑養(yǎng)殖水中添加新鮮微藻的可行性。研究表明，在幼鮑養(yǎng)殖過程中，養(yǎng)殖水的光吸收值不宜超過0.500。經(jīng)過45 d的養(yǎng)殖，海水中添加綠色巴夫藻，光照強(qiáng)度為2 000 lx（GY- H16- 2 000 lx）處理組的微藻在養(yǎng)殖水中的生長最好，養(yǎng)殖水中的總氮、總磷和氨氮含量的增加最少，幼鮑成活率最高達(dá)到95％，殼長和濕質(zhì)量增加比較多，殼長增長率（LGR）和增質(zhì)量率（WGR）分別比對照組（沒有添加微藻的海水）增加了4.81％和16.26％。因此，在鮑魚養(yǎng)殖水中添加新鮮微藻既能凈化養(yǎng)殖水的水質(zhì)，又能促進(jìn)鮑魚的生長。

關(guān)鍵詞：鮑魚養(yǎng)殖；綠色巴夫藻；球等鞭金藻；培養(yǎng)條件

在鮑魚工廠化養(yǎng)殖過程中，由于鮑魚對水質(zhì)要求高、換水量大，造成養(yǎng)殖成本增加。鮑魚養(yǎng)殖過程中的水處理問題，是制約產(chǎn)業(yè)發(fā)展的關(guān)鍵要素。將海洋微藻應(yīng)用于水產(chǎn)養(yǎng)殖可以改善水體生態(tài)環(huán)境，用作水產(chǎn)動(dòng)物的餌料和禽畜的飼料，補(bǔ)充營養(yǎng)成分，改善養(yǎng)殖對象胃腸道菌群，達(dá)到生態(tài)防治的目的，使得養(yǎng)殖生產(chǎn)良性發(fā)展，取得更好的經(jīng)濟(jì)效益和生態(tài)效益[1]。利用微藻的光合作用吸收水中富營養(yǎng)化成分并釋放出的大量氧氣，可以凈化污水并保持良好的水環(huán)境條件[2-3]。因此，在鮑魚的養(yǎng)殖生產(chǎn)過程中，如何通過微藻凈化水質(zhì)、降低養(yǎng)殖成本，是一個(gè)具有重要意義的研究方向[4-5]。

微藻作為餌料，可提高水產(chǎn)動(dòng)物特別是珍貴海產(chǎn)品的育苗存活率。陳全震等人[4]研究發(fā)現(xiàn)，將螺旋藻粉作為人工配合飼料的添加劑可以明顯促進(jìn)南日鮑的生長，改善鮑魚養(yǎng)殖的營養(yǎng)配方。Gordon N等人[6]研究表明皺紋盤鮑（Haliotis discus hannai）在攝食底棲硅藻后，能顯著提高其存活率。目前，微藻餌料在市場上已占有很大比例。富含DHA和EPA等的微藻類是很多水生動(dòng)物喜愛的天然餌料，在以食物鏈為途徑、以滿足水生動(dòng)物營養(yǎng)需求的過程中，其作為營養(yǎng)強(qiáng)化劑具有簡單高效和低成本等許多優(yōu)點(diǎn)[7-9]。所以，在現(xiàn)今優(yōu)質(zhì)餌料、飼料缺乏的大環(huán)境下，微藻作為潛在的優(yōu)質(zhì)餌料、飼料引起了越來越多的重視[10-11]。微藻的光合作用可以將污水中的磷、氨、氮等有機(jī)鹽轉(zhuǎn)化為體內(nèi)有機(jī)物，釋放出大量氧氣，提高水中的溶氧水平，平衡水體pH值，促進(jìn)細(xì)菌的礦化作用，使H2S變成無毒的硫酸鹽，從而達(dá)到污水凈化和保持良好的水環(huán)境條件的效果。因此，一定量微藻的存在對改善和穩(wěn)定水體生態(tài)系統(tǒng)有非常重要的作用[12-14]。Chong等人[9]用柵藻（Scenedesmus）和普通小球藻（Chlorella vulgaris）等多種微藻分別對廢水進(jìn)行處理，發(fā)現(xiàn)小球藻對廢水中鎳和鋅等金屬離子的吸收能力最強(qiáng)。這對于凈化水質(zhì)，保證水生生態(tài)系統(tǒng)的平衡與穩(wěn)定有重要的意義。

1試驗(yàn)材料與儀器

1.1試驗(yàn)原料

南日鮑，由福建莆田市匯豐食品工業(yè)有限公司提供；干海帶，由閩中有機(jī)食品有限公司提供；試驗(yàn)藻種，綠色巴夫藻（GY- H16，Pavlova viridis）、球等鞭金藻OA3011（GY- H15，Isochrysis galbana OA3011），由上海光語生物科技有限公司提供；海水，選自福州馬尾近海。

1.2試驗(yàn)儀器與試劑

（1）主要試劑。過硫酸鉀、抗壞血酸、鉬酸銨、酒石酸銻鉀、磷酸二氫鉀、硝酸鉀、碘化鉀、碘化汞、酒石酸鉀鈉、氫氧化鈉、氯化銨等。

除氯化銨為優(yōu)級純，其余試劑與藥品均為分析純。

（2）主要儀器。HY- 8型調(diào)速振蕩器，常州國華電器有限公司產(chǎn)品；UV- 1100型紫外可見分光光度計(jì)，上海美譜達(dá)儀器有限公司產(chǎn)品；ELEY4型真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀，上海申生科技有限公司產(chǎn)品；BS110S型電子天平，賽多利斯科學(xué)儀器（北京）有限公司產(chǎn)品；LDZX- 50KBS型立式壓力蒸汽滅菌鍋，上海申安醫(yī)療器械廠產(chǎn)品；5430型小型高速離心機(jī)，Eppendorf中國有限公司產(chǎn)品；DHG- 9123A型電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱，上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司產(chǎn)品；LX- 502型氧氣泵，家有樂寵（廣州）電子商務(wù)有限公司產(chǎn)品；0～200 mm不銹鋼數(shù)顯卡尺，上海臺(tái)海工量具有限公司產(chǎn)品。

1.3試驗(yàn)方法

1.3.1微藻的培養(yǎng)

選用微藻自養(yǎng)培養(yǎng)方式。采用f/2培養(yǎng)基，配方中的各營養(yǎng)液先配成母液，其中VB12溶液、生物素溶液和硫胺素溶液需經(jīng)過0.22 μm濾膜過濾，分別在0～4℃保存?zhèn)溆?。? 000 mL錐形瓶，將適量經(jīng)過0.45 μm濾膜過濾后的海水加入到其中，分別加入NaNO3，NaH2PO4和微量金屬溶液，于121℃下滅菌20 min，取出冷卻，再分別加入VB12溶液、生物素溶液和硫胺素溶液，配成培養(yǎng)液，最后分別將預(yù)培養(yǎng)至對數(shù)生長期的綠色巴夫藻和球等鞭金藻接種到錐形瓶中，接種量為15％左右。用2層紗布和橡皮筋扎緊瓶口，放在調(diào)速振蕩器上振蕩培養(yǎng)，轉(zhuǎn)速為100 r/min。培養(yǎng)條件：以日光燈作為光源，光照強(qiáng)度為4 000～4 500 lx；光暗周期為12 h∶12 h。

f/2培養(yǎng)基配方見表1，f/2微量金屬溶液配方見表2，f/2 VB12溶液配方見表3，f/2生物素溶液配方見表4，f/2硫胺素溶液配方見表5。

表1　f/2培養(yǎng)基配方

表2　f/2微量金屬溶液配方

表3　f/2 VB12溶液配方

表4　f/2生物素溶液配方

表5　f/2硫胺素溶液配方

綠色巴夫藻GY- H16和球等鞭金藻OA3011培養(yǎng)9 d后，離心濃縮藻細(xì)胞，備用。

1.3.2鮑魚的養(yǎng)殖

試驗(yàn)過程在實(shí)驗(yàn)室完成，水溫18～25℃，鹽質(zhì)量分?jǐn)?shù)31‰～33‰，幼鮑飼養(yǎng)在普通的35 L水箱中（裝水20 L）采用靜水養(yǎng)殖，增氧泵增氧以保持水箱中的溶解氧不低于5 mg/L，以日光燈作為光源，半避光養(yǎng)殖，海水經(jīng)0.45 μm濾膜過濾。試驗(yàn)開始前，挑選健康、規(guī)格一致且同批次的幼鮑分別在水箱內(nèi)進(jìn)行為期8 d的馴化，馴化期間投喂鹽漬干海帶（干海帶用水浸泡，清洗掉表面的鹽和泥沙等雜質(zhì)），使其消除以前的餌料效應(yīng)對其攝食、生長的影響。經(jīng)過8 d馴化后的幼鮑的規(guī)格仍保持一致，將馴化后的鮑魚隨機(jī)分成5組，每組2個(gè)平行組，每個(gè)平行組飼養(yǎng)50只幼鮑，對每只幼鮑進(jìn)行生物學(xué)測量，用脫脂棉擦干幼鮑體表的水分及雜質(zhì)，用數(shù)顯游標(biāo)卡尺測量其殼長，用電子天平（精確度0.001 g）稱量其濕質(zhì)量。試驗(yàn)周期為45 d，根據(jù)預(yù)試驗(yàn)的結(jié)果，每15 d換水1/2。餌料均在每天17:00- 18:00投喂，次日8:00- 9:00收集殘餌（用3層紗布過濾養(yǎng)殖水，以收集殘留餌料）。根據(jù)預(yù)試驗(yàn)的結(jié)果確定餌料投喂量，各組合均投喂20 g的餌料，從而保證餌料充足。試驗(yàn)期間發(fā)現(xiàn)死亡鮑魚及時(shí)撿出并做記錄；試驗(yàn)結(jié)束時(shí)，測量各組合鮑魚的殼長及濕質(zhì)量。測定每個(gè)組合養(yǎng)殖水于680 nm波長下的光吸收值。

（1）對照組。將50只幼鮑放入水箱中進(jìn)行飼養(yǎng)，自然光照。

（2）GY- H16- 1 000 lx。將離心備用的GY- H16接種到水箱中，使其光吸收值在0.150左右，將50只鮑魚放入水箱中進(jìn)行飼養(yǎng)，設(shè)置光照強(qiáng)度為1 000 lx。

（3）GY- H16- 2 000 lx。將離心備用的GY- H16接種到水箱中，使其光吸收值在0.150左右，將50只鮑魚放入水箱中進(jìn)行飼養(yǎng)，設(shè)置光照強(qiáng)度為2 000 lx。

（4）OA3011- 1 000 lx。將離心備用的OA3011接種到水箱中，使其光吸收值在0.150左右，將50只鮑魚放入水箱中進(jìn)行飼養(yǎng)，設(shè)置光照強(qiáng)度為1 000 lx。

（5）OA3011- 2 000 lx。將離心備用的OA3011接種到水箱中，使其光吸收值在0.150左右，將50只鮑魚放入水箱中進(jìn)行飼養(yǎng)，設(shè)置光照強(qiáng)度為2 000 lx。

鮑魚養(yǎng)殖裝置見圖1。

圖1　鮑魚養(yǎng)殖裝置

1.3.3水質(zhì)分析方法

水質(zhì)檢測前，養(yǎng)殖水以轉(zhuǎn)速4 800 r/min離心，取上清液進(jìn)行檢測。

（1）總氮（Total nitrogen，TN）含量的測定。水質(zhì)總氮含量的測定采用堿性過硫酸鉀消解紫外分光光度法，具體參見GB 11894—89。線性回歸方程：Y=0.009 8X+0.015 8，相關(guān)系數(shù)R2=0.999。

總氮含量標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖2。

圖2　總氮含量標(biāo)準(zhǔn)曲線

（2）總磷（Total phosphorus，TP）含量的測定。水質(zhì)總磷含量的測定采用鉬酸銨分光光度法，具體參見GB 11893—89。線性回歸方程：Y=0.011 5X-0.000 9，相關(guān)系數(shù)R2=0.999 8。

總磷含量標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖3。

圖3　總磷含量標(biāo)準(zhǔn)曲線

（3）氨氮（Ammonia nitrogen，NH4+- N）含量的測定。水質(zhì)總磷含量的測定采用鉬酸銨分光光度法，具體參見GB 11893—89。線性回歸方程：Y=0.003 7X+ 0.001 7，相關(guān)系數(shù)R2=0.999 5。

氨氮含量標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖4。

1.3.4鮑魚生長指標(biāo)的測定

以存活率（SR，％），殼長日增長（DLG，μm/d）、日增質(zhì)量（DWG，mg/d）、增長率（LGR，％）和增質(zhì)量率（WGR，％）來反映幼鮑的生長情況。計(jì)算公式如下：

圖4　氨氮含量標(biāo)準(zhǔn)曲線

式中：Si，St——試驗(yàn)開始時(shí)和試驗(yàn)結(jié)束時(shí)幼鮑的只數(shù)，只；

Wt，Wi——試驗(yàn)開始時(shí)和試驗(yàn)結(jié)束時(shí)幼鮑的濕質(zhì)量，g；

Lt，Li——試驗(yàn)開始時(shí)和試驗(yàn)結(jié)束時(shí)幼鮑的殼長，mm；

t——試驗(yàn)天數(shù)，d。

1.4結(jié)果

1.4.1不同養(yǎng)殖水光吸收值的變化情況

按1.3.2的方法進(jìn)行鮑魚養(yǎng)殖，培養(yǎng)時(shí)間為45 d，每15 d換水1/2，每3 d取3 mL養(yǎng)殖水測定其OD值，繪制曲線。

不同養(yǎng)殖水OD值的變化情況見圖5。

圖5　不同養(yǎng)殖水OD值的變化情況

由圖5可知，處理組在第15天和第30天后吸光值有所下降，這是因?yàn)樵诘?5天和第30天時(shí)換水1/2，養(yǎng)殖水的光吸收值不宜太大，以低于0.500為適，否則會(huì)抑制鮑魚的生長，甚至造成鮑魚的大量死亡，可能由于過多的藻細(xì)胞會(huì)黏附于鮑魚的體表，影響鮑魚的呼吸，同時(shí)夜晚時(shí)微藻的呼吸作用對水中的溶解氧產(chǎn)生了一定影響。對照組在試驗(yàn)期間的光吸收值有微小的上升，這可能是由于微藻含有多種色素，從而使得光吸收值發(fā)生了變化。前15 d，微藻在養(yǎng)殖水中都能生長，但是由于光照強(qiáng)度的不同，不同處理組的吸光度變化不同，其中光照強(qiáng)度為2 000 lx處理組的微藻生長比較好，GYH16- 2 000 lx組的微藻生長最好，45 d后光吸收度達(dá)到0.422；其次是OA3011- 2 000 lx，45 d后光吸收度為0.358；GY- H16- 1 000 lx的光吸收度為0.251；而OA3011- 1 000 lx組的光吸收度在后期發(fā)生了變化。光吸收度逐漸變小，可能原因是球等鞭金藻由于光照的強(qiáng)度不足而導(dǎo)致微藻的生長緩慢，甚至死亡。光照強(qiáng)度會(huì)影響到微藻的生長，綠色巴夫藻在低光照強(qiáng)度下也能生長，而球等鞭金藻在低光照強(qiáng)度下長得比較緩慢。

1.4.2不同養(yǎng)殖水水質(zhì)的變化情況

根據(jù)1.3.3中水質(zhì)分析方法，測定了不同試驗(yàn)組在養(yǎng)殖過程中水質(zhì)的變化情況。取適量養(yǎng)殖水，離心得上清液，測定TN、TP和NH4+- N的含量。

不同養(yǎng)殖水中總氮的變化情況見圖6，不同養(yǎng)殖水中總磷的變化情況見圖7，不同養(yǎng)殖水中氨氮的變化情況見圖8。

圖6　不同養(yǎng)殖水中總氮的變化情況

圖7　不同養(yǎng)殖水中總磷的變化情況

由圖6～圖8可知，微藻在養(yǎng)殖水中能有效地利用水中的總氮、總磷和氨氮合成自身生長所需的營養(yǎng)物質(zhì)。微藻細(xì)胞可以吸收NH4+- N，NO3-- N以及養(yǎng)殖水中的有機(jī)氮等；而養(yǎng)殖水中的磷作為微藻的一種營養(yǎng)成分，被藻細(xì)胞吸收后用于合成磷脂、核酸等物質(zhì)[15]。

圖8　不同養(yǎng)殖水中氨氮的變化情況

由圖6可知，處理組在20 d和35 d時(shí)的總氮含量分別比15 d和30 d有所下降，這是因?yàn)?5 d和30 d時(shí)養(yǎng)殖水換水1/2。對照組在養(yǎng)殖過程中的總氮含量顯著增加，這是因?yàn)樵邗U魚養(yǎng)殖過程中，鮑魚的排泄物溶解于水中，造成水體的總氮含量增加。經(jīng)過15 d的幼鮑養(yǎng)殖，養(yǎng)殖水的總氮含量由0.676 mg/L上升到1.002 mg/L；經(jīng)過45 d的養(yǎng)殖，養(yǎng)殖水的總氮含量上升到1.164 mg/L，增加了0.488 mg/L。而GY- H16- 2 000 lx和OA3011- 2 000 lx的總氮含量相對于對照組上升比較緩慢，前6 d養(yǎng)殖水中的總氮含量上升較快，這是因?yàn)轲B(yǎng)殖水的微藻含量比較少，能利用的總氮含量有限；而后，隨著養(yǎng)殖水中微藻細(xì)胞數(shù)量的上升，總氮含量的上升比較緩慢；養(yǎng)殖40 d后，養(yǎng)殖水中的總氮含量增加趨于平衡，推測是因?yàn)槲⒃骞夂献饔盟璧目偟亢王U魚代謝所產(chǎn)生的總氮含量差距不大。其中，總氮含量的增加最慢的是GY- H16- 2 000 lx，增加了0.122 mg/L，其次是OA3011- 2 000 lx。GY- H16- 1 000 lx由于光照強(qiáng)度不夠、養(yǎng)殖水中微藻細(xì)胞數(shù)量不夠、微藻的光合作用強(qiáng)度不大，所以養(yǎng)殖水中的總氮含量有所上升，養(yǎng)殖45 d后養(yǎng)殖水中的總氮含量增加了0.178 mg/L；而OA3011- 1 000 lx的總氮含量到后期增加很快，養(yǎng)殖45 d后增加了0.322 mg/L，可能是后期球等鞭金藻由于光照不足導(dǎo)致球等鞭金藻死亡。

由圖7可知，處理組在20 d和35 d時(shí)的總磷含量分別比15 d和30 d有所下降，這是因?yàn)?5 d和30 d時(shí)養(yǎng)殖水換水1/2。對照組在養(yǎng)殖過程中的總磷含量顯著增加，經(jīng)過15 d的幼鮑養(yǎng)殖，養(yǎng)殖水的總磷含量由0.08 mg/L上升到0.195 mg/L；經(jīng)過45 d的養(yǎng)殖，養(yǎng)殖水的總磷含量增加了0.162 mg/L。前15 d，試驗(yàn)組的總氮含量相對于對照組上升比較緩慢，這是因?yàn)槲⒃宓墓夂献饔孟牧艘欢康目偭?；? d，養(yǎng)殖水中的總磷含量上升較快，這是因?yàn)轲B(yǎng)殖水的微藻含量比較少，所能利用的總磷也就比較少。15 d后，GY- H16- 2 000 lx和OA3011- 2 000 lx隨著養(yǎng)殖水中微藻含量的上升，總磷含量的上升就比較緩慢；養(yǎng)殖35 d后，養(yǎng)殖水中的總磷含量增加趨于平衡。經(jīng)過45 d的培養(yǎng)，養(yǎng)殖水中總磷含量的增加最慢的是GY- H16- 2 000 lx，增加了0.041 mg/L；其次為OA3011- 2 000 lx。試驗(yàn)組GY- H16- 1 000 lx由于光照原因而使得總磷含量有一定的增加。而OA3011- 1 000 lx的總磷含量相對于其他試驗(yàn)組增加很快，在35 d后，甚至接近對照組，推測是由于光照強(qiáng)度的不足及換水，導(dǎo)致球等鞭金藻在養(yǎng)殖水中不能很好生長，在后期甚至部分球等鞭金藻出現(xiàn)死亡。

由圖8可知，處理組在20 d和35 d時(shí)的氨氮含量分別比15 d和30 d有所下降，這是因?yàn)?5 d和30 d時(shí)養(yǎng)殖水換水1/2。對照組在養(yǎng)殖過程中的氨氮含量顯著增加，經(jīng)過45 d的養(yǎng)殖，養(yǎng)殖水的氨氮含量由0.245 mg/L上升到0.494 mg/L，增加了0.249 mg/L。前9 d，試驗(yàn)組養(yǎng)殖水中的氨氮含量上升較快，這是因?yàn)轲B(yǎng)殖水的微藻含量比較少，9 d后，GY- H16-2 000 lx和OA3011- 2 000 lx的氨氮含量上升比較緩慢。養(yǎng)殖40 d后，養(yǎng)殖水中的氨氮含量增加趨于平衡。經(jīng)過45 d的培養(yǎng)，養(yǎng)殖水中總磷含量增加較慢的是GY- H16- 2 000 lx和OA3011- 2 000 lx，分別增加了0.058 mg/L和0.083 mg/L。試驗(yàn)組GY- H16- 1 000 lx由于光照原因，而使得氨氮含量有一定的增加。而OA3011- 1 000 lx的氨氮含量相對于其他試驗(yàn)組增加很快，推測是由于光照強(qiáng)度的不足及換水，導(dǎo)致球等鞭金藻在養(yǎng)殖水中不能很好地生長，在后期甚至部分微藻出現(xiàn)死亡，使得球等鞭金藻的光合作用不能進(jìn)行。

1.4.3不同養(yǎng)殖水鮑魚的生長情況

（1）不同養(yǎng)殖水中幼鮑的存活率。

不同養(yǎng)殖水中幼鮑的存活率見圖9。

圖9　不同養(yǎng)殖水中幼鮑的存活率

由圖9可知，前15 d各處理組都保持了較高的存活率，相互之間的差距不大，都達(dá)到95％以上，說明微藻添加在幼鮑養(yǎng)殖水中是可行的。但是在經(jīng)過45 d的養(yǎng)殖，不同處理組的幼鮑存活率有較大差距。GY- H16- 2 000 lx，OA3011- 2 000 lx，GY- H16-1 000 lx和對照組的存活率較高，達(dá)到了93％以上，其中GY- H16- 2 000 lx的存活率最高，達(dá)到了95％。而OA3011- 1 000 lx的存活率在30 d時(shí)為76％，而經(jīng)過45 d的養(yǎng)殖后，幼鮑的存活率只有45％，養(yǎng)殖水的水質(zhì)很不適于養(yǎng)殖鮑魚，可能是由于球等鞭金藻死亡后的尸體黏附于幼鮑的體表，造成了幼鮑的窒息死亡，同時(shí)由于尸體的腐敗分解會(huì)釋放出大量有害物質(zhì)，致使水質(zhì)急劇惡化、細(xì)菌滋生，嚴(yán)重危害了幼鮑的存活和生長。

（2）不同養(yǎng)殖水中幼鮑的LGR，DLG，WGR和DWG。根據(jù)1.3.2中所述的方法，測定了在養(yǎng)殖過程中不同處理組幼鮑的殼長和總濕質(zhì)量；根據(jù)1.3.4中所述的方法，計(jì)算出不同處理組幼鮑的LGR、DLG、WGR和DWG。

不同養(yǎng)殖水中幼鮑的DLG見圖10，不同養(yǎng)殖水中幼鮑的LGR見圖11，不同養(yǎng)殖水中幼鮑的DWG見圖12，不同養(yǎng)殖水中幼鮑的WGR見圖13。

圖10　不同養(yǎng)殖水中幼鮑的DLG

圖11　不同養(yǎng)殖水中幼鮑的LGR

圖12　不同養(yǎng)殖水中幼鮑的DWG

圖13　不同養(yǎng)殖水中幼鮑的WGR

由圖10和圖11可知，GY- H16- 2 000 lx和GY- H16- 1 000 lx的殼長增長比較多，DLG分別為68.78 μm/d和67.78 μm/d，LGR分別為27.07％和26.37％，可能是因?yàn)樵陴B(yǎng)殖水中添加的綠色巴夫藻含有豐富的不飽和脂肪酸，特別是EPA的含量比較高，研究表明EPA對鮑魚的生長有極其重要的作用[16]，GY- H16- 2 000 lx中藻細(xì)胞濃度比較多，幼鮑攝食了藻細(xì)胞，使得幼鮑的生長更快些；OA3011-2 000 lx的生長情況和對照組相差不大；而OA3011-1 000 lx的生長情況不好，可能是養(yǎng)殖過程中球等鞭金藻由于光照不足而死亡，使水質(zhì)惡化，水體不適合鮑魚生長，試驗(yàn)觀察到，鮑魚總是爬出液面，從而影響鮑魚攝食，使鮑魚生長受到一定影響。

由圖12和圖13可知，GY- H16- 2 000 lx的總濕質(zhì)量增加比較多，DWG達(dá)到了17.33 mg/d，WGR達(dá)到了27.01％；其次分別為GY- H16- 2 000 lx，OA3011-2 000 lx和對照組，WGR都到了10.87％以上，可能是綠色巴夫藻的EPA含量比較高，對幼鮑的生長有一定的促進(jìn)作用；而OA3011- 1 000 lx的體質(zhì)量增加很少，其WGR只為8.75％，這可能是在養(yǎng)殖過程中球等鞭金藻由于光照不足而死亡，水質(zhì)惡化，幼鮑在水中不能很好地生長，總是爬出液面，導(dǎo)致了鮑魚的攝食量減少，使得鮑魚的生長受到一定的影響。

2　結(jié)論

鮑魚在養(yǎng)殖過程中需水量大，造成養(yǎng)殖成本的增加，使得鮑魚成為越來越珍貴的水產(chǎn)品，因此解決鮑魚養(yǎng)殖過程中大量換水的問題至關(guān)重要。本文主要探討在鮑魚養(yǎng)殖水中添加新鮮海洋微藻的可行性，研究了對照組（沒有添加微藻的海水）、GYH16- 1 000 lx（養(yǎng)殖水中添加綠色巴夫藻，光照強(qiáng)度為1 000 lx），GY- H16- 2 000 lx（養(yǎng)殖水中添加綠色巴夫藻，光照強(qiáng)度為2 000 lx），OA3011- 1 000 lx（養(yǎng)殖水中添加球等鞭金藻，光照強(qiáng)度為1 000 lx）及OA3011- 2 000 lx（養(yǎng)殖水中添加球等鞭金藻，光照強(qiáng)度為2 000 lx）5組處理組在幼鮑養(yǎng)殖過程中對養(yǎng)殖水及幼鮑影響的對比，結(jié)果表明：

（1）在養(yǎng)殖過程中，養(yǎng)殖水的光吸收值不宜太大，低于0.500最適，否則會(huì)抑制鮑魚的生長，甚至?xí)斐甚U魚的大量死亡，因此在養(yǎng)殖的第15天和第30天時(shí)換水1/2。GY- H16- 2 000 lx組的微藻在養(yǎng)殖水中的生長狀況最好；而OA3011- 1 000 lx組的微藻在養(yǎng)殖后期發(fā)生了變化，生長緩慢甚至死亡。光照對于新鮮海洋微藻在鮑魚養(yǎng)殖水中的生長至關(guān)重要。

（2）添加微藻的養(yǎng)殖水中的總氮、總磷和氨氮含量都比對照組少，其中GY- H16- 2 000 lx組養(yǎng)殖水的總氮、總磷和氨氮含量的增加最少，到試驗(yàn)后期趨于穩(wěn)定，分別較試驗(yàn)前增加了0.122，0.041和0.058 mg/L；而OA3011- 1 000 lx的效果最差。

（3）前15 d，各處理組都保持了較高的存活率，都達(dá)到95％以上，說明在幼鮑養(yǎng)殖水中添加新鮮微藻是可行的。經(jīng)過45 d的養(yǎng)殖，不同處理組的幼鮑存活率有較大差距，GY- H16- 2 000 lx存活率最高達(dá)到了95％，而OA3011- 1 000 lx的存活率只有45％。GY- H16- 2 000 lx的殼長和體質(zhì)量增加比較多，DLG 為68.78 μm/d，LGR為27.07％，DWG為17.33 mg/d，WGR為27.01％。

綜上所述，在鮑魚養(yǎng)殖水中添加新鮮微藻是可行的，既能凈化養(yǎng)殖水的水質(zhì)，又能促進(jìn)鮑魚的增長，其中效果比較好的是添加綠色巴夫藻。但是在養(yǎng)殖過程中，要合理地控制光照強(qiáng)度及養(yǎng)殖水中的藻密度。

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Study on the Application of Marine Microalgae in Abalone Culture

ZHU Feng1，*LIN Xiangyang1，LIU Shilin1，ZHANG Cuiping1，CHEN Xiaoyan1，HUANG Jincheng1，SHEN Ying2，RUAN Rongsheng1，3
（1. College of Biological Science and Technology，F(xiàn)uzhou University，F(xiàn)uzhou，F(xiàn)ujian 350108，China；2. College of Mechanical Engineering and Automation，F(xiàn)uzhou University，F(xiàn)uzhou，F(xiàn)ujian 350108，China；3. Department of Bioproducts and Biosystems Engineering，University of Minnesota，St. Paul，Minnesota 55108，USA）

Abstract：Due to the high functional components，especially DHA and EPA in unsaturated fatty acids，marine microalgaes are widely used in various fields of food and aquaculture. Meanwhile，the microalgaes also have huge advantages in water purification. By adding the fresh microalgae to abalone aquaculture water，the results show that：in the juvenile abalone aquaculture process，aquaculture water absorption value could not be too large，preferably not more than 0.500. After 45 d of aquaculture，microalgae of GY- H16- 2 000 lx group（adding Pavlova viridis to seawater，light intensity of 2 000 lx）growed best in aquaculture water. Total nitrogen，total phosphorus and ammonia nitrogen increased least，the survival rate is the highest and reached 95％；LCR（shell length growth rate）and WGR（mass growth rate）is more 4.81％ and 16.26％ than the control group（seawater）respectively. Therefore，the addition of fresh microalgae to the water of abalone aquaculture is feasible，not only purifying water but also promoting the growth of abalone.

Key words：abalone aquaculture；Pavlova viridis；Isochrysis galbana；culture condition

*通訊作者：林向陽（1969—），男，博士，教授，研究方向?yàn)樗a(chǎn)品加工。

作者簡介：朱豐（1991—），女，碩士，研究方向?yàn)槭称房茖W(xué)。

基金項(xiàng)目：“863”項(xiàng)目（2012AA021704）；國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目（51108085）。

收稿日期：2016- 01- 07

文章編號：1671- 9646（2016）03a- 0051- 07

中圖分類號：S216.2

文獻(xiàn)標(biāo)志碼：A

doi：10.16693/j.cnki.1671- 9646（X）.2016.03.014