黃清媚，康小龍，黃 清，肖文娟，李晶博，林蔣海，劉澤寰

(暨南大學(xué)生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院，廣東 廣州 510632)

餐飲垃圾制備乙醇的同步糖化發(fā)酵研究

黃清媚，康小龍，黃 清，肖文娟，李晶博，林蔣海，劉澤寰

(暨南大學(xué)生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院，廣東 廣州 510632)

為建立一種針對(duì)餐飲垃圾的同步糖化發(fā)酵技術(shù)，進(jìn)一步提高乙醇的產(chǎn)率，以期早日實(shí)現(xiàn)工業(yè)化，通過將單酶以兩兩組合或三個(gè)混合的方式篩選最優(yōu)酶組合，結(jié)果顯示終酶活力120 U/g的糖化酶與300 U/g的異淀粉酶之間的協(xié)同作用最好，葡萄糖產(chǎn)量達(dá)130.29 g/L。利用釀酒酵母CICC 1346、終酶活力為120 U/g的糖化酶和300 U/g的異淀粉酶對(duì)餐飲垃圾進(jìn)行了同步糖化發(fā)酵(SSF)和分步糖化發(fā)酵(SHF)，結(jié)果顯示SSF和SHF的乙醇產(chǎn)量分別為49.48 g/L和45.89 g/L，糖醇轉(zhuǎn)化率分別為91.7%和77.1%。SSF與SHF相比存在操作簡(jiǎn)單、發(fā)酵時(shí)間短和乙醇產(chǎn)率高的優(yōu)勢(shì)，已具備了工業(yè)化應(yīng)用的價(jià)值。

餐飲垃圾；異淀粉酶；SSF；SHF；乙醇

餐飲垃圾是指來(lái)自酒店、餐廳、食堂等含有高水分含量、高有機(jī)物含量和高鹽的特殊有機(jī)垃圾[1]。我國(guó)目前每年產(chǎn)生的餐飲垃圾數(shù)量驚人，據(jù)不完全統(tǒng)計(jì)，已超過6 000萬(wàn)t/a[2]。而餐飲垃圾本身對(duì)環(huán)境和食物鏈存在顯性危害，因此餐飲垃圾的處理至關(guān)重要。利用餐飲垃圾生產(chǎn)乙醇是餐飲垃圾處理的新的研究方向，近年來(lái)雖然取得了一定的進(jìn)展，但在發(fā)酵工藝模式、發(fā)酵周期、乙醇產(chǎn)率等方面還有待改進(jìn)。此外，由于2006年起我國(guó)政府已限制用糧食來(lái)生產(chǎn)酒精[3]，所以建立成熟、高效的利用非糧食原料——餐飲垃圾生產(chǎn)乙醇的技術(shù)就顯得十分必要了。

由于菌種釀酒酵母本身是不具備淀粉降解能力的，而是需要將淀粉降解為葡萄糖后(此步驟稱為糖化)，才能被酵母發(fā)酵成為乙醇，因此糖化步驟和方式是影響乙醇生產(chǎn)的決定性因素。餐飲垃圾分為纖維素類和淀粉類，兩類均可以通過酶解發(fā)酵制備燃料乙醇[4]。纖維素類餐飲垃圾的酶解研究相對(duì)成熟，如于紅艷等[5]采用纖維素酶和糖化酶酶解餐飲垃圾；曹媛媛等[6]采用淀粉酶、糖化酶、蛋白酶和纖維素酶酶解餐飲垃圾；劉偉偉等[7]采用液化酶、糖化酶、纖維素酶和脂肪酶酶解餐飲垃圾；黃智等[8]采用纖維素酶、漆酶和α-淀粉酶酶解餐飲垃圾。目前淀粉類餐飲垃圾主要是采用α-淀粉酶[9]或液化酶[4]與糖化酶共同酶解餐飲垃圾，未有報(bào)道異淀粉酶與糖化酶共同酶解餐飲垃圾。

目前工業(yè)上生產(chǎn)乙醇主要采用分步糖化發(fā)酵(Separate Hydrolysis and Fermentation,SHF)和同步糖化發(fā)酵法(Simultaneous Saccharification and Fermentation, SSF)，SHF的特點(diǎn)是先糖化后發(fā)酵，而SSF的特點(diǎn)是邊糖化邊發(fā)酵[10]。相對(duì)來(lái)說(shuō)SSF具有操作簡(jiǎn)單、效率高、自動(dòng)化程度高等優(yōu)勢(shì)，因此本文著重探討建立一種較為先進(jìn)的利用餐飲垃圾制備乙醇的同步糖化發(fā)酵技術(shù)。同時(shí)，由于餐飲垃圾中的營(yíng)養(yǎng)成分復(fù)雜、淀粉來(lái)源復(fù)雜，不像傳統(tǒng)糧食發(fā)酵那樣背景清晰，所以本文進(jìn)行了一系列的探索工作，以期進(jìn)一步提高糖化效率和乙醇產(chǎn)率，為早日打通利用餐飲垃圾生產(chǎn)乙醇的工業(yè)化之路打好基礎(chǔ)。

1 材料和方法

1.1 餐飲垃圾的預(yù)處理

餐飲垃圾取樣于廣州市某高校食堂。餐飲垃圾經(jīng)過除雜之后，直接由粉碎機(jī)粉碎成小塊。經(jīng)121 ℃滅菌20 min后于-20 ℃保存?zhèn)溆谩Ｆ渲饕煞趾突咎匦匀绫?所示。

1.2 菌株以及其培養(yǎng)條件

所用菌株為釀酒酵母CICC 1346，購(gòu)買于中國(guó)工業(yè)微生物菌種保藏管理中心(CICC)。該菌種是一株乙醇工業(yè)發(fā)酵用酵母，乙醇產(chǎn)量高，有良好的乙醇和高糖耐受能力，可在YPD(w=1%酵母提取物，w=2%蛋白胨，w=2%葡萄糖)中培養(yǎng)。菌株和YPD以1∶50的比例于30 ℃，200 r/min活化24 h，再轉(zhuǎn)接培養(yǎng)12 h，用YP將菌株的A600均調(diào)至0.5～0.6之間,可作為發(fā)酵的酒母使用。

表1 餐飲垃圾的特征Table 1 Characteristics of food waste

1.3 酶

用于催化餐飲垃圾發(fā)生水解反應(yīng)的酶包括α-淀粉酶、糖化酶和異淀粉酶。α-淀粉酶(芽孢桿菌)和糖化酶(黑曲霉變異菌株)購(gòu)買于上海阿拉丁試劑有限公司，異淀粉酶(產(chǎn)氣氣桿菌)購(gòu)買于武漢諾輝醫(yī)藥化工有限公司。3種酶的最佳反應(yīng)溫度分別為：50～70，55～60，50 ～55 ℃。3種酶的最優(yōu)pH分別為：5.5～7.5，3.5～4.5，5.6～7.0。3種酶的酶活活性分別為：3 700、100 000、20 000 U/g。

1.4 餐飲垃圾的酶水解

1.4.1 不同酶活力的3種單酶對(duì)餐飲垃圾水解的影響 所有酶解實(shí)驗(yàn)均于50 mL圓底發(fā)酵瓶中操作。每瓶稱取8 g餐飲垃圾，121 ℃滅菌20 min。利用不同終酶活力的α-淀粉酶(8，10，12 U/g)、糖化酶(100，120，140 U/g)和異淀粉酶(200，300，400 U/g)分別水解餐飲垃圾。為了預(yù)防染菌，加入60 μg/μL的制霉菌素和80 μg/μL的四環(huán)素。選用pH 4.8檸檬酸緩沖液調(diào)平每瓶體積。酶解實(shí)驗(yàn)于pH 4.8，50 ℃，200 r/min中反應(yīng)72 h。酶活指數(shù)的計(jì)算公式：酶活指數(shù)=還原糖的產(chǎn)量/底物淀粉的總量[9]。

1.4.2 混合酶對(duì)餐飲垃圾水解的影響 根據(jù)最優(yōu)糖化率和經(jīng)濟(jì)效益來(lái)考慮，選出最佳酶活力的α-淀粉酶、糖化酶和異淀粉酶。3種單酶以兩兩組合或3個(gè)組合的方式混合利用，分別用于餐飲垃圾的酶解。為了預(yù)防染菌，也加入60 μg/μL的制霉菌素和80 μg/μL的四環(huán)素。酶解實(shí)驗(yàn)于pH 4.8，50 ℃，200 r/min中反應(yīng)72 h。

1.5 餐飲垃圾的SHF和SSF

將最佳酶組合用于餐飲垃圾的進(jìn)一步分步糖化發(fā)酵和同步糖化發(fā)酵實(shí)驗(yàn)。8 g餐飲垃圾121 ℃滅菌20 min備用。分步糖化發(fā)酵中，先加入最優(yōu)酶組合，于pH 4.8，50 ℃，200 r/min中糖化24 h，再加入w=10%的A600=0.5～0.6的酒母，于30 ℃，200 r/min中發(fā)酵餐飲48 h。同步糖化發(fā)酵中，同時(shí)加入最優(yōu)酶組合和酒母，于30 ℃，200 r/min中糖化發(fā)酵餐飲垃圾36 h。

乙醇轉(zhuǎn)化率的計(jì)算公式：

1.6 分析方法

實(shí)驗(yàn)均做兩個(gè)平行，顯示數(shù)據(jù)為平均值± 標(biāo)準(zhǔn)方差(SD)。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)方法測(cè)定分析餐飲的pH，干物質(zhì)和粗蛋白。依據(jù)標(biāo)準(zhǔn)干燥法在105 ℃干燥至恒質(zhì)量測(cè)定餐飲含水量[11]。用Somogyi-Nelson法測(cè)定測(cè)定總糖含量[12]，用Soxhlet法測(cè)定脂肪含量[13]。在酶水解和發(fā)酵產(chǎn)酒精的過程中，收集餐飲垃圾混合物上清檢測(cè)葡萄糖和乙醇的含量。葡萄糖和乙醇含量由液相色譜儀來(lái)檢測(cè)分析。統(tǒng)計(jì)分析使用PASW 18軟件使用的統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)單向方差分析和鄧肯多個(gè)范圍測(cè)試。結(jié)果95%置信interval被認(rèn)為具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P< 0.05)[14]。

2 結(jié)果和討論

2.1 不同酶活力的3種單酶對(duì)餐飲垃圾水解的影響

餐飲垃圾中碳水化合物由各種多糖和單糖組成，比如淀粉、纖維素、葡萄糖等等，來(lái)自大米的淀粉占很大的比例，所以對(duì)淀粉酶的選擇極為重要。本文將不同酶活力的3種單酶分別酶解餐飲垃圾，圖1顯示10 U/g的淀粉酶酶解餐飲垃圾的酶活指數(shù)最高。 圖2顯示300 U/g異淀粉酶酶解餐飲垃圾的酶活指數(shù)最高。圖3顯示120 U/g糖化酶酶解餐飲垃圾的酶活指數(shù)最高。綜合3種酶分別酶解餐飲垃圾的結(jié)果，從經(jīng)濟(jì)效益和酶活效率角度考慮，選擇10 U/g α-淀粉酶、300 U/g異淀粉酶和120 U/g糖化酶做后續(xù)的組合酶酶解實(shí)驗(yàn)。

圖1 3種不同酶活力α-淀粉酶于72 h內(nèi)酶解餐飲垃圾的葡萄糖和還原糖產(chǎn)量(空心代表還原糖質(zhì)量濃度，實(shí)心代表葡萄糖質(zhì)量濃度)Fig.1 Glucose (filled diagram) and reducing sugar (open diagram) production of three concentrations of α-amylase on the enzymatic hydrolysis of food waste after 72 h

圖2 3種不同酶活力異淀粉酶于72 h內(nèi)酶解餐飲垃圾的葡萄糖和還原糖產(chǎn)量 (空心代表還原糖質(zhì)量濃度，實(shí)心代表葡萄糖質(zhì)量濃度)Fig.2 Glucose (filled diagram) and reducing sugar (open diagram) production of three concentrations of isoamylase on the enzymatic hydrolysis of food waste after 72 h

圖3 3種不同酶活力糖化酶于72 h內(nèi)酶解餐飲垃圾的葡萄糖產(chǎn)量Fig.3 Glucose production of three concentrations of glucoamylase on the enzymatic hydrolysis of food waste after 72 h

2.2 混合酶對(duì)餐飲垃圾酶解的影響

根據(jù)3種酶的作用機(jī)制，將3種單酶以兩兩組合或3個(gè)組合的方式混合作用，能提高酶切的效率和葡萄糖產(chǎn)量。實(shí)驗(yàn)中共構(gòu)建了4種酶組合方式酶解餐飲垃圾(見表2)。對(duì)比分析圖4得知：10 U/g α-淀粉酶在酶組合中不起作用。α-淀粉酶在酶組合中不起作用的原因有兩點(diǎn)：① 餐飲垃圾的預(yù)處理問題為主要問題[15-16]。所用餐飲垃圾經(jīng)過機(jī)械粉碎和兩次高溫滅菌，淀粉可能經(jīng)過機(jī)械以及高溫的作用，直鏈淀粉大部分?jǐn)嗔?，?淀粉酶的作用不明顯。② 多方面的抑制作用。餐飲垃圾成分復(fù)雜，也包括多種化學(xué)抑制因子，如糠醛、有機(jī)酸等[17-18]，由于α-淀粉酶的酶活力相對(duì)比較低，受抑制作用相對(duì)較明顯。此外，實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示，120 U/g糖化酶酶解產(chǎn)生的葡萄糖最高產(chǎn)量為115.69 g/L，B的葡萄糖最高產(chǎn)量為130.29 g/L，D的葡萄糖最高產(chǎn)量為126.82 g/L，證明異淀粉酶和糖化酶存在正協(xié)同作用。對(duì)比組合A和D，異淀粉酶的加入將葡萄糖產(chǎn)量提升了10%。支鏈淀粉在淀粉結(jié)構(gòu)中起到很強(qiáng)的固定作用，支鏈淀粉的斷裂更有利于淀粉的水解。綜合顯示B為最優(yōu)酶組合。

表2 3種酶的組合方式Table 2 Combined modes of three enzymes

圖4 各種酶組合在72 h內(nèi)酶解餐飲垃圾的葡萄糖產(chǎn)量Fig.4 Glucose production of various mixtures of enzymes on the enzymatic hydrolysis of food waste after 72 h

2.3 餐飲垃圾的SHF和SSF對(duì)比研究

利用釀酒酵母CICC 1346作為菌種，采用上述最優(yōu)酶組合進(jìn)行進(jìn)一步發(fā)酵研究，結(jié)果如圖5所示。SHF最高的乙醇產(chǎn)量為 45.89 g/L，糖醇轉(zhuǎn)化率達(dá)到77.1%；SSF最高乙醇產(chǎn)量為49.48 g/L，糖醇轉(zhuǎn)化率達(dá)到91.7%。對(duì)比可知，SSF在發(fā)酵效率和乙醇產(chǎn)量上比SHF有明顯優(yōu)勢(shì)。

與同類研究對(duì)比可以發(fā)現(xiàn)，顏守保等[9]用終酶活力10 U/g α-淀粉酶、120 U/g 糖化酶和釀酒酵母H058菌株對(duì)餐飲垃圾進(jìn)行分步糖化發(fā)酵，糖醇轉(zhuǎn)化率達(dá)到91.5%，與本文基本相當(dāng)，但在其它方面存在許多不足之處。其一，其實(shí)驗(yàn)采用在餐飲垃圾中以1∶1比例添加水的辦法來(lái)提高糖化效率，雖然添加水能提高酶和底物的接觸機(jī)會(huì)，但無(wú)形中大大降低了產(chǎn)物含量，對(duì)后續(xù)的乙醇蒸餾脫水極為不利。其二，其實(shí)驗(yàn)采用分步糖化發(fā)酵，糖化后還要離心取上清做后續(xù)的乙醇發(fā)酵，操作復(fù)雜、物料損失大，也不利于工業(yè)應(yīng)用。另外，其發(fā)酵時(shí)間過長(zhǎng)，需要60 h。本研究采用了同步糖化發(fā)酵，因此在操作、發(fā)酵周期、能耗等方面均具有明顯的優(yōu)勢(shì)。Jae Hyung Kim等[19]用碳水化合物降解酶(含有阿拉伯糖苷酶、纖維素酶、β-葡萄糖苷酶、半纖維素酶和木聚糖酶)和釀酒酵母直接對(duì)餐飲垃圾進(jìn)行SHF和SSF發(fā)酵，結(jié)果顯示SHF和SSF的乙醇產(chǎn)率分別為68.85和37.4 g/L，糖醇轉(zhuǎn)化率分別為100%和74%，與本文的結(jié)果正好相反。原因可能是因?yàn)轫n國(guó)的餐飲垃圾中蔬菜類含量占了有機(jī)物的50%，含有大量的纖維素、半纖維素等較淀粉更難以降解的多糖分子，因此在SHF中可不受時(shí)間限制，最終被碳水化合物降解酶充分降解而獲得很高的糖化率；而在SSF中，由于糖化和發(fā)酵同步進(jìn)行，纖維素、半纖維素等降解得比淀粉慢，導(dǎo)致糖化速度跟不上發(fā)酵速度，從而限制了整體的發(fā)酵效率[20]?？梢姴惋嬂某煞謪^(qū)別對(duì)發(fā)酵效率有很大的影響，要獲得高效的SSF，就一定要充分考慮餐飲垃圾的地域性差異。

圖5 CICC 1346組合300 U/g異淀粉酶+120 U/g糖化酶以SHF和SSF的方式糖化發(fā)酵餐飲垃圾的葡萄糖消耗量和乙醇產(chǎn)量(實(shí)心代表葡萄糖消耗量，空心代表乙醇產(chǎn)量)Fig.5 Glucose consumption of glucose (filled diagram) and ethanol production (open diagram) in SHF and SSF by the combination of CICC1346 and 300 U/g isoamylase + 120 U/g glucoamylase

3 結(jié) 論

由上述實(shí)驗(yàn)結(jié)果可知，利用餐飲垃圾進(jìn)行乙醇發(fā)酵完全不同于傳統(tǒng)的淀粉乙醇發(fā)酵，在傳統(tǒng)發(fā)酵中，α-淀粉酶是必不可少的，而異淀粉酶是不必須的。造成這種差異的最主要因素可能是因?yàn)椴惋嬂械牡矸叟c傳統(tǒng)工業(yè)發(fā)酵用的淀粉不同，首先餐飲垃圾中的淀粉由于經(jīng)過了烹飪、滅菌等多道步驟，淀粉已大都降解為糊精，α-淀粉酶的重要性隨之減弱；其次，廣州等南方地區(qū)的主食多為稻米，支鏈淀粉含量高，因此加入支鏈淀粉酶后，降解作用明顯，由此也提示我們利用餐飲垃圾發(fā)酵乙醇，還要針對(duì)地方的飲食特色進(jìn)行調(diào)整，才能獲得最佳的發(fā)酵效果。本文最終獲得了針對(duì)廣州地區(qū)餐飲垃圾生產(chǎn)乙醇的SSF方案，發(fā)酵周期僅為24 h，酒精產(chǎn)量為49.48 g/L，糖醇轉(zhuǎn)化率達(dá)到91.7%，已具有工業(yè)化應(yīng)用價(jià)值。

[1] YAN S, LI J, CHEN X, et al. Enzymatical hydrolysis of food waste and ethanol production from the hydrolysate [J]. Renewable Energy, 2011, 36(4), 1259-1265.

[2] 方龍，劉澤寰. 一種能降解利用餐廚垃圾的基因重組酵母構(gòu)建及應(yīng)用研究[D]. 2014.

[3] YAN S, WANG P, ZHAI Z, et al. Fuel ethanol production from concentrated food waste hydrolysates in immobilized cell reactors by Saccharomyces cerevisiae H058 [J]. Journal of Chemical Technology & Biotechnology, 2011, 86(5): 731-738.

[4] 曹銘. 餐廚廢棄物糖化發(fā)酵煉制燃料乙醇研究 [D]. 2013.

[5] 于紅艷，曹樹勇，奚立民, 等. 餐廚垃圾制備燃料乙醇酶促反應(yīng)條件的研究 [J]. 可再生能源,2009, 27(6): 46-49.

[6] 曹媛媛，李俊，陳祥松, 等. 餐廚廢棄物資源化利用初探 [C]. 安徽新能源技術(shù)創(chuàng)新與產(chǎn)業(yè)發(fā)展博士科技論壇論文集, 2010.

[7] 劉偉偉，姚建銘，陳祥松, 等. 餐廚廢棄物復(fù)合酶解預(yù)處理?xiàng)l件優(yōu)化 [J]. 安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2016, 43(1): 123-127.

[8] 黃智，梁秋萍，宿城遠(yuǎn), 等. 復(fù)合酶水解餐廚垃圾研究 [J]. 廣西師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2014, 32(2): 111-116.

[9] YAN S, YAO J, YAO L, et al. Fed batch enzymatic saccharification of food waste improves the sugar concentration in the hydrolysates and eventually the ethanol fermentation by Saccharomyces cerevisiae H058 [J]. Brazilian Archives of Biology and Technology, 2012, 52(2): 183-192.

[10] WRIAWAN F, CHENG C, KAO W, et al. Cellulosic ethanol production performance with SSF and SHF processes using immobilized Zymomonas mobilis [J]. Applied Energy, 2012, 4(100): 19-26.

[11] GILCREAS F W. Standard methods for the examination of water and waste water [J]. American Journal of Public Health and the Nations Health, 1966, 56(3): 387-388.

[12] SOMOGYI M. Notes on Sugar Determination [J]. Journal of Biological Chemistry, 1951, 195(1): 19-23.

[13] BERNAL J L, NOZAL M J, JIMéNEZ J J. Use of a high-pressure Soxhlet extractor for the determination of organochlorine residues by gas chromatography [J]. Chromatographia, 1992, 34(9): 468-474.

[14] LI J, ZHOU P, LIU H, et al. Ethanol production from xylan-removed sugarcane bagasse using low loading of commercial cellulase [J]. Bioresource Technology, 2014, 163: 390-394.

[15] CEKMECELIOGLU D, UNCU O N. Kinetic modeling of enzymatic hydrolysis of pretreated kitchen wastes for enhancing bioethanol production [J]. Waste Management, 2013, 33(3):735-739.

[16] PIETRZAK W, KAWA-RYGIELSKA J. Ethanol fermentation of waste bread using granular starch hydrolyzing enzyme: Effect of raw material pretreatment [J]. Fuel, 2014, 134:250-256.

[17] WANG X Q, WANG Q H, LIU Y Y, et al. Kinetics and thermodynamics of glucoamylase inhibition by lactate during fermentable sugar production from food waste [J]. Journal of Chemical Technology & Biotechnology, 2010, 85(5):687-692.

[18] CHEUNG H N, HUANG G H, YU H. Microbial-growth inhibition during composting of food waste: effects of organic acids [J]. Bioresource Technology, 2010, 101(15), 5925-5934.

[19] KIM J H, LEE J C, PAK D. Feasibility of producing ethanol from food waste [J]. Waste Management, 2011, 31(9): 2121-2125.

[20] PHILIPPIDIS G P, HATZIS C. Biochemical engineering analysis of critical process factors in the biomass-to-ethanol technology [J]. Biotechnology Progress, 1997, 13(3): 222-231.

Simultaneous saccharification and fermentation from food waste to ethanol

HUANG Qingmei, KANG Xiaolong, HUANG Qing, XIAO Wenjuan, LI Jingbo, LIN Jianghai, LIU Zehuan

(College of Life Science and Technology, Jinan University, Guangzhou 510632,China)

The purpose of study is to establish a method to improve the ethanol output by saccharification and fermentation of food waste in an order to realize the industrialization in the future. By the way of combining two or three kinds of enzymes to obtain an optimization, it was shown that positive synergism effect was observed between glucoamylase (120 U/g) and isoamylase (300 U/g), and the glucose concentration in the hydrolysate reached 130.29 g/L. Simultaneous saccharification and fermentation (SSF) and separate hydrolysis and fermentation (SHF) of food waste have been conducted usingSaccharomycescerevisiaeCICC 1346 and 120 U/g of glucoamylase and 300 U/g of isoamylase. The yields of ethanol in SSF and SHF were 49.48 and 45.89 g/L, and the conversion rates from glucose to ethanol were 91.7% and 77.1%, respectively. Compared to the SHF process, the SSF one was easier to operate and showed shorter fermentation period but higher ethanol production rate, which makes it more suitable for industrial application.

food waste; isoamylase; SSF; SHF; ethanol

10.13471/j.cnki.acta.snus.2016.05.018

2015-03-18

黃清媚(1989年生)，女；研究方向：生物化學(xué)與分子生物學(xué)；通訊作者：劉澤寰;E-mail:zhliu@jnu.edu.cn

Q815

A

0529-6579(2016)05-0103-05