林云嬌王露露吳 潔黃 佳宋長(zhǎng)明
林冰冰1,2,3柳維林1,2,3陶 靜1,2,3陳立典1,2,3,4△
·研究報(bào)告·
電針“曲池”“足三里”穴對(duì)缺血再灌注損傷大鼠紋狀體DARPP-32磷酸化的影響*
林云嬌1,2,3王露露1,2,3吳潔1,2,3黃佳1,2,3宋長(zhǎng)明1,2,3
林冰冰1,2,3柳維林1,2,3陶靜1,2,3陳立典1,2,3,4△
(1.福建中醫(yī)藥大學(xué)康復(fù)醫(yī)學(xué)院,福建福州350122;2.福建省康復(fù)技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福建福州350122;3福建康復(fù)產(chǎn)業(yè)研究院,福建福州350122;4.國(guó)家中醫(yī)藥管理局中醫(yī)康復(fù)研究中心,福建福州350122)
目的觀察電針“曲池”“足三里”穴對(duì)腦缺血再灌注損傷局灶性大腦中動(dòng)脈閉塞模型(MCAO)大鼠神經(jīng)行為學(xué)的變化及多巴胺和環(huán)磷酸腺苷調(diào)節(jié)的蛋白(DARPP-32)磷酸化的影響。方法將25只雄性SD大鼠隨機(jī)分為假手術(shù)組(6只)、手術(shù)組(19只)。手術(shù)組采用Longa線拴法制備左側(cè)左側(cè)大腦中動(dòng)脈栓塞(MCAO)大鼠模型,將造模后符合納入標(biāo)準(zhǔn)的12只大鼠隨機(jī)分為模型組、電針組,各6只。電針組取“曲池”和“足三里”穴,電針干預(yù)14 d,假手術(shù)組和模型組在同等條件下抓取及固定,不予任何干預(yù)。通過(guò)神經(jīng)功能評(píng)分判斷大鼠的神經(jīng)功能缺損情況;小動(dòng)物磁共振儀(MRI)掃描觀察腦梗死體積,Western blot檢測(cè)紋狀體DARPP-32、p-Thr75-DARPP-32的表達(dá)情況。結(jié)果與模型組相比,電針組大鼠神經(jīng)功能評(píng)分降低(P<0.05),腦梗死體積減少(P<0.05),紋狀體p-DARPP-32-Thr75/DARPP-32比值增高(P<0.05)。結(jié)論電針“曲池”和“足三里”穴可改善MCAO大鼠神經(jīng)功能缺損癥狀,其機(jī)制可能與促進(jìn)缺血紋狀體的DARPP-32在Thr75位點(diǎn)的磷酸化有關(guān)。
腦缺血電針DARPP-32 p-DARPP-32-Thr75
【Abstract】Objective:To observe the effect of electro-acupuncture at Quchi(LI11)and Zusanli(ST36)on the change of neurological deficit,and the phosphorylation of dopamine and cyclic adenosin 3′,5′-monophosphate regulated phosphoprotein(DARPP-32)in rat after cerebral ischemia reperfusion injury.M ethods:25 male SD ratswere randomly divided into the sham operation group(n=6)and the operation group(n=19).The operation group were under the operation of the leftmiddle cerebral artery occlusion(MCAO)by themodified Longa′methods,and 12 qualified ratswere randomly divided into themodel group(n=6)and the electro-acupuncture group(n=6).The electro-acupuncture group received electro-acupuncture at Quchi(LI11)and Zusanli(ST36)for 14 days.The neurological deficit was assessed;the cerebral infarct volume was scanned with animalmagnetic resonance imaging(MRI)machine.The protein expression of DARPP-32 and p-Thr75-DARPP-32 were detected by Western blotting technique.Results:Compared with themodel group,the neurological deficit score in the electro-acupuncture group was improved(P<0.05).The size of infarct volume was significantly reduced(P<0.05). The radio of p-DARPP-32-Thr75/DARPP-32 in corpus striatum in electro-acupuncture group was higher than that in themodel group(P<0.05).Conclusion:The electro-acupuncture at Quchi(LI11)and Zusanli(ST36)can promote the recovery of neurologic deficit symptom,which may be associated with promoting the phosphorylation of DARPP-32 on Thr75.
【Key words】Cerebral ischemia;Electro-acupuncture;DARPP-32;p-DARPP-32-Thr75在我國(guó),腦卒中后幸存患者中70%~80%遺留不同程度的功能障礙[1],嚴(yán)重響患者的生存質(zhì)量,同時(shí)也帶來(lái)沉重的經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)[2]。腦缺血時(shí)紋狀體神經(jīng)細(xì)胞外興奮性氨基酸(EAA)和多巴胺(DA)含量明顯升高并參與紋狀體神經(jīng)元局部缺血損傷的進(jìn)展[3-4],而多巴胺和環(huán)磷酸腺苷調(diào)節(jié)的蛋白(DARPP-32)與這兩類的神經(jīng)元遞質(zhì)功能調(diào)節(jié)有關(guān)。有研究證明大鼠腦缺血后紋狀體區(qū)DARPP-32在Thr34(蘇氨酸殘基)位點(diǎn)上的磷酸化水平與缺血后神經(jīng)功能缺損程度相一致[5-6]。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),通過(guò)周期性依賴蛋白激酶(Cdk5)磷酸化的DARPP-32(Thr75)是環(huán)磷酸腺苷依賴性蛋白激酶(PKA)的抑制劑[7],可產(chǎn)生神經(jīng)保護(hù)作用。前期臨床和基礎(chǔ)研究表明電針“曲池”和“足三里”穴可以有效改善缺血性腦卒中后運(yùn)動(dòng)功能障礙[8-9]。因此本課題組通過(guò)觀察電針曲池、足三里穴是否通過(guò)影響DARPP-32在Thr75(蘇氨酸殘基)位點(diǎn)的磷酸化水平來(lái)治療腦缺血再灌注損傷,改善大鼠腦缺血后的神經(jīng)功能缺損癥狀及運(yùn)動(dòng)功能障礙。
1.1實(shí)驗(yàn)動(dòng)物雄性SD大鼠25只,體質(zhì)量200~250 g,由上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限責(zé)任公司提供[生產(chǎn)許可證號(hào):SCXK(滬)2012-002],由福建中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心飼養(yǎng)(動(dòng)物使用許可證號(hào):2014-001)。動(dòng)物飼養(yǎng)于SPF級(jí)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)室,隨機(jī)分籠飼養(yǎng),維持室溫20~22℃,模擬標(biāo)準(zhǔn)日夜系統(tǒng),所有試驗(yàn)均遵照國(guó)際動(dòng)物保護(hù)和使用指南的規(guī)定實(shí)施。
1.2試劑與儀器DARPP-32(Abacam,England)、Phospho-DARPP-32(Thr75)(Cell Signaling Technology,USA)、β-actin一抗及辣根過(guò)氧化物酶二抗(Cell Signaling,Beverly,MA,USA)、BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒(賽默飛世爾,美國(guó))、異氟烷(瑞沃德,中國(guó)),動(dòng)物步態(tài)分析系統(tǒng)(CatWalk XT 10.0,Noldus,Holland)、疲勞轉(zhuǎn)棒測(cè)試儀(Rat Rota-Rod,UGO BASILE,ITALY)、7.0T小動(dòng)物磁共振儀(Pharmascan,microMRI,Bruker,Germany)、10%水合氯醛。
1.3分組與造模將25只SD大鼠按隨機(jī)數(shù)字表法隨機(jī)分為假手術(shù)組(n=6)和手術(shù)組(n=19),所有大鼠術(shù)前禁食12 h,稱體質(zhì)量后,用10%水合氯醛3 mL/kg經(jīng)腹腔注射麻醉。麻醉后,手術(shù)組采用Longa[10]法制備左側(cè)大腦中動(dòng)脈栓塞(MCAO)模型,仰臥固定大鼠,頸部皮膚消毒備皮后,沿前正中線切開(kāi)頸部皮膚,以此分離左側(cè)頸總動(dòng)脈、頸外動(dòng)脈、頸內(nèi)動(dòng)脈;用結(jié)扎線依次結(jié)扎頸動(dòng)脈近心端,用顯微血管夾夾住頸內(nèi)動(dòng)脈,在距頸總動(dòng)脈分叉處約1.0 cm處用顯微剪刀剪一切口,將直徑為0.2mm的魚(yú)線從切口處緩慢進(jìn)入頸內(nèi)動(dòng)脈,松開(kāi)血管夾,當(dāng)魚(yú)線頭端到達(dá)大腦中動(dòng)脈起始端處(從頸
外動(dòng)脈與頸內(nèi)動(dòng)脈分叉處起計(jì)算插入約18~22 mm)即可。固定線栓,縫合切口。手術(shù)結(jié)束后,動(dòng)物置于室溫環(huán)境下蘇醒。2 h后緩慢退出魚(yú)線至分叉處,從而形成缺血再灌注模型。假手術(shù)只分離左側(cè)頸總、頸內(nèi)、頸外動(dòng)脈,不予插線栓。實(shí)驗(yàn)全過(guò)程和動(dòng)物蘇醒期間注意保暖,保持室溫在25℃左右,直至大鼠重新恢復(fù)活動(dòng)。手術(shù)后,大鼠予正常進(jìn)食及飲水。大鼠蘇醒后,根據(jù)Longa[10]評(píng)分法對(duì)其進(jìn)行神經(jīng)功能缺損評(píng)分,用以判斷模型是否成功:無(wú)神經(jīng)功能缺損,0分;提尾時(shí)右前肢內(nèi)收,不能完全伸展,1分;自發(fā)行走時(shí)向右側(cè)轉(zhuǎn)圈,2分;行走時(shí)身體向右側(cè)傾倒,3分;不能自發(fā)行走,有意識(shí)喪失,4分。0分及4分者給予剔除。最終18只大鼠納入研究,假手術(shù)組、模型組、電針組各6只。
1.4干預(yù)措施電針組大鼠在造模后第1天即進(jìn)行電針干預(yù)。根據(jù)《實(shí)驗(yàn)針灸學(xué)》[11]的大鼠取穴方法,取大鼠右側(cè)曲池、足三里穴。用0.5寸毫針(華佗牌30號(hào)),直刺2~3mm,接電針儀(G6805型),電壓峰值為6 V,疏密波,頻率1~20 Hz,以大鼠肢體輕微抖動(dòng)為度,治療時(shí)間為每次30min,每日1次,療程為14 d。假手術(shù)組及模型組于同一時(shí)間用同樣方法固定30 min,每日1次,固定時(shí)程為14 d,但不予電針干預(yù)。
1.5觀察項(xiàng)目1)Longa評(píng)分:缺血再灌注后2 h及造模14 d后,對(duì)模型組和電針組大鼠分別進(jìn)行兩次Longa神經(jīng)功能缺損評(píng)分。該個(gè)評(píng)估由一名對(duì)本研究不知情的觀察者完成。2)小動(dòng)物磁共振儀掃描:造模后14 d后,將大鼠用3%的異氟烷在1∶4的氧氣和空氣混合氣體中誘導(dǎo)麻醉5 min后。掃描時(shí)將大鼠仰臥于小動(dòng)物磁共振掃描床上。掃描過(guò)程中用混在氧氣和空氣的0.2%異氟烷經(jīng)鼻導(dǎo)管來(lái)維持麻醉,并維持掃描環(huán)境穩(wěn)定,同時(shí)使用動(dòng)物生理檢測(cè)儀檢測(cè)大鼠體溫、血氧飽和度及呼吸、心率,并通過(guò)溫控及通風(fēng)系統(tǒng)維持整個(gè)實(shí)驗(yàn)過(guò)程中生理狀態(tài)的穩(wěn)定。解剖結(jié)構(gòu)像掃描應(yīng)用RARE技術(shù)顯示T2WI圖像,掃描參數(shù)如下:TE/TR=60 ms/ 1200 ms,F(xiàn)OV 32 mm×32 mm,層間距0,層厚=1 mm,層數(shù)=21,矩陣256×256,翻轉(zhuǎn)角90°。T2WI所獲得的原始數(shù)據(jù)通過(guò)Image J軟件進(jìn)行腦梗死體積的計(jì)算。方法為:計(jì)算每層腦梗死的體積(每層腦梗死的面積× 1mm),每個(gè)腦組織的腦梗死總體積即所有層面腦梗死體積之和,腦梗死百分比為腦梗死體積與全腦體積之比。
1.6標(biāo)本采集與檢測(cè)造模14 d后,在行Longa評(píng)分及采集T2WI圖像后,立即將各組大鼠用10%的水合氯醛經(jīng)腹腔注射麻醉后,快速斷頭取腦,于冰上剝離出左側(cè)(正常組大鼠)或缺血側(cè)(模型組及電針組大鼠)紋狀體,置于EP管中,-80℃冰箱保存準(zhǔn)備進(jìn)行Western blot檢測(cè)。嚴(yán)格按照組織總蛋白的提取和濃度測(cè)定說(shuō)明書(shū)操作,取紋狀體樣本各約100mg放入勻漿器,加入RIPA裂解液1mL,于冰上充分研磨后,4℃,14000 r/min離心10min,緩慢吸取上清液。采用BCA法測(cè)定各樣本蛋白濃度。100℃加熱5min,使蛋白充分變性后,取50μg樣品蛋白經(jīng)12%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳后,轉(zhuǎn)移到聚偏二乙烯膜后,用5%脫脂奶封閉2 h,分別加入抗β-actin(1∶8000)、抗DARPP-32(1∶5000)、P-DARPP-32(1∶1000)一抗,4℃孵育過(guò)夜,經(jīng)TBST洗膜后,用辣根過(guò)氧化物標(biāo)記的二抗(1∶5000)孵育60min。將PVDF膜放在圖像掃描儀上,避光配置顯色液并覆蓋PVDF膜,反應(yīng)1min,成像;應(yīng)用Image lab軟件設(shè)計(jì)計(jì)算蛋白條帶光密度進(jìn)行分析處理。
1.7統(tǒng)計(jì)學(xué)處理實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采集采用統(tǒng)計(jì)軟件SPSS 20.0處理,計(jì)量資料均以(表示,多組間比較采用單因素方差分析,方差齊時(shí)用LSD方法,不齊時(shí)用Games-Howell方法。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1電針對(duì)MCAO大鼠神經(jīng)行為學(xué)的影響見(jiàn)表1。腦缺血再灌注后2 h,與假手術(shù)組大鼠相比,模型組及電針組大鼠Longa評(píng)分升高(P<0.05),但模型組與電針組之間無(wú)顯著差異(P>0.05)。電針治療14 d后,電針組Longa評(píng)分低于模型組(P<0.05),說(shuō)明電針“曲池”和“足三里”穴可改善缺血性腦卒中大鼠的神經(jīng)缺損癥狀。
表1 各組大鼠Longa評(píng)分、梗死體積百分比、DARPP-32(/β-acting)、p-DARPP-32-Thr75蛋白表達(dá)比較(
表1 各組大鼠Longa評(píng)分、梗死體積百分比、DARPP-32(/β-acting)、p-DARPP-32-Thr75蛋白表達(dá)比較(
與假手術(shù)組比較,*P<0.05,**P<0.01;與模型組比較,△P<0.05,△△P<0.01。
組別n DARPP-32 /β-acting Longa評(píng)分 造模14 d梗死體積百分比(%)p-DARPP-32-Thr75/DARPP-32假手術(shù)組6模型組6造模2 h造模14 d 0 0 0 2.50±0.22*2.16±0.17 15.51±0.018 0.934±0.019 0.934±0.022 0.932±0.012 0.361±0.038**電針組6 2.33±0.21*1.50±0.22△9.56±0.008△0.948±0.016 0.702±0.016**△△
2.2電針對(duì)MCAO大鼠腦梗死體積的影響見(jiàn)圖1,表1。腦缺血再灌注后2 h,模型組與電針組之間Longa評(píng)分無(wú)顯著差異(P>0.05),因此可推測(cè)模型組與電針組大鼠之間的梗死體積也無(wú)顯著差異。電針治療14 d后,如圖1所示,磁共振T2加權(quán)成像,模型組、電針組均可看到高信號(hào),即為梗死區(qū)域。電針組大鼠比模型組大鼠腦梗死體積明顯降低(P<0.05),說(shuō)明電針“曲池”和“足三里”穴可減少缺血性腦卒中大鼠的腦梗死體積。
2.3電針對(duì)MCAO大鼠紋狀體DARPP-32、p-DARPP-32-Thr75表達(dá)的影響見(jiàn)圖2,表1。假手術(shù)組、模型組、電針組DARPP-32蛋白的表達(dá)均無(wú)明顯差異(P>0.05);模型組大鼠紋狀體區(qū)的p-DARPP-32-Thr75蛋白的表達(dá)低于假手術(shù)組(P<0.05),而電針組大鼠紋狀體區(qū)的p-DARPP-32-Thr75蛋白的表達(dá)高于模型組(P<0.05),說(shuō)明電針“曲池”和“足三里”穴可促進(jìn)大鼠腦缺血后紋狀體區(qū)p-DARPP-32-Thr75的表達(dá)。
圖1 各組大鼠造模14 d后磁共振T2加權(quán)成像
圖2 各組大鼠缺血紋狀體DARPP-32、p-DARPP-32-Thr75蛋白表達(dá)情況
腦卒中在中醫(yī)學(xué)中屬于“中風(fēng)”范疇,腦卒中發(fā)生后會(huì)導(dǎo)致氣血陰陽(yáng)失調(diào),經(jīng)脈閉阻,偏身經(jīng)氣,尤其是陽(yáng)經(jīng)經(jīng)氣受阻,經(jīng)脈失養(yǎng),而發(fā)偏雍。因此治療腦卒中當(dāng)以調(diào)整氣血、平衡陰陽(yáng)、疏通經(jīng)脈為主要治療原則。歷代文獻(xiàn)已有對(duì)中風(fēng)療法治療的記載,《素問(wèn)·痿論篇》提出了“治痿獨(dú)取陽(yáng)明”的基本治則。曲池穴是手陽(yáng)明大腸經(jīng)的合土穴,足三里穴是足陽(yáng)明胃經(jīng)的合穴和胃經(jīng)的下穴,因此針刺曲池和足三里穴可通調(diào)腹氣,使氣機(jī)條暢,氣血調(diào)和,進(jìn)而能達(dá)到活血化瘀的功效。兩個(gè)穴位的臨床及基礎(chǔ)研究均顯示療效顯著[7-9,12-14]。本研究發(fā)現(xiàn),電針“曲池”和“足三里”穴能有效改善腦缺血再灌注損傷后的神經(jīng)功能缺損癥狀。
目前研究表明,紋狀體是中樞神經(jīng)系統(tǒng)中對(duì)缺血比較敏感的部位[15]。且紋狀體的中型多棘神經(jīng)元是反饋和運(yùn)動(dòng)系統(tǒng)以及多巴胺神經(jīng)支配的重要部分,這些神經(jīng)元表達(dá)高水平的特異性信號(hào)蛋白,其中包括DARPP-32以及蛋白磷酸酶-1調(diào)節(jié)的亞基-1B(PPP1R1B),是多種細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)的多種信號(hào)通路的樞紐[16-17]。其中DARPP-32是在紋狀體中型多極神經(jīng)元高度密集的胞質(zhì)蛋白,并且是紋狀體處多巴胺激活腺苷環(huán)化酶(cAMP)的主要鉬靶[18-19]。多巴胺轉(zhuǎn)化,增強(qiáng)或抑制PKA通路的功能,取決于它磷酸化的狀態(tài)。研究表明,紋狀體在靜息狀態(tài)下,Cdk5磷酸化DARPP-32上的Thr75位點(diǎn)來(lái)抑制多巴胺信號(hào)通路的效應(yīng),而多巴胺通過(guò)其D1受體誘導(dǎo)cAMP依賴蛋白(PKA)的激活,以此來(lái)減小紋狀體DARPP-32在Thr75位點(diǎn)上的磷酸化程度來(lái)消除這個(gè)抑制作用[20]。而腦缺血時(shí),紋狀體神經(jīng)細(xì)胞外過(guò)量釋放的EAA和DA是造成其缺血性損傷的重要因素[21];EAA主要是指谷氨酸(Glu),它的興奮毒作用可引起細(xì)胞損傷,而DARPP-32是Glu和DA發(fā)生直接作用的唯一結(jié)點(diǎn)。DA作用于D1受體使PKA活性增加,從而磷酸化DARPP-32(Thr34),轉(zhuǎn)化為蛋白磷酸酶1(PP-1)的強(qiáng)效抑制劑,使PP-1的活性受到抑制,造成胞內(nèi)一些蛋白質(zhì)磷酸化程度增加[22],從而對(duì)細(xì)胞造成損傷。有研究表明,腦缺血后DARPP-32在紋狀體中的蛋白表達(dá)沒(méi)有差異性[23]。缺血時(shí),釋放大量多巴胺,激活PKA,促進(jìn)紋狀體DARPP-32在Thr34的磷酸化水平升高[24-25],且該磷酸化水平與紋狀體損傷程度相平行,相反地,DARPP-32在Thr75的磷酸化水平下降。
綜上所述,本研究證實(shí)電針“曲池”“足三里”穴可改善缺血再灌注損傷鼠行為缺損癥狀,減小梗死體積,其機(jī)制可能與促進(jìn)DARPP-32在Thr75位點(diǎn)上的磷酸化程度,抑制PKA減弱多巴胺通路效應(yīng),減小對(duì)細(xì)胞的損傷,從而緩解腦缺血再灌注損傷及產(chǎn)生神經(jīng)保護(hù)作用有關(guān)。本實(shí)驗(yàn)的結(jié)果并不能完全闡釋電針改善MCAO大鼠的學(xué)習(xí)記憶功能的具體機(jī)制,其效應(yīng)機(jī)制還有待進(jìn)一步深入研究。
[1]姚滔濤,王寧華,陳卓銘.腦卒中運(yùn)動(dòng)功能訓(xùn)練的循證醫(yī)學(xué)研究[J].中國(guó)康復(fù)醫(yī)學(xué)雜志,2010,25(6):565-570.
[2]費(fèi)利軍.中醫(yī)藥治療中風(fēng)后遺癥近況[J].云南中醫(yī)中藥雜志,2006,27(2):51-53.
[3]Chang CJ,Ishii H,Yamamoto H,et al.Effect of cerebral ischemia on regional dopamine release and D1 and D2 receptors[J].JNeuronchem,1993,601:1483-1490.
[4]Hirotaka I,MayumiO,Shigenodbu S,etal.Effectsof transient forebrain ischemia on long-term enhancement of dopamine release in ratstriatalslices[J].Brain Res,1995,671:95-99.
[5]Jin H,XiG,Keep RF,etal.DARPP-32 to quantify intracerebralhemorrhage-induced neuronaldeath in basalganglia[J]. TranslationalStroke Research,2013,4(1):130-134.
[6]Hua Y,Schallert T,Keep RF,etal.Behavioral tests after intracerebral hemorrhage in the rat[J].Stroke,2002,33(10):2478-2484.
[7]Gao Y,Lin Z,Tao J,etal.Evidence of timing effects on acupuncture:A functionalmagnetic resonance imaging study[J]. Experimental&Therapeutic Medicine,2015,9(1):59-64.
[8]鄭薏,柳維林,上官豪,等.電針對(duì)局灶性腦缺血再灌注大鼠缺血周圍皮質(zhì)與紋狀體區(qū)波形蛋白表達(dá)的影響[J].中國(guó)康復(fù)醫(yī)學(xué)雜志,2016,31(1):14-19.
[9]陶靜,柳維林,黃佳,等.基于Notch1信號(hào)通路觀察電針對(duì)腦缺血再灌注損傷大鼠缺血周邊皮質(zhì)與SVZ區(qū)神經(jīng)干細(xì)胞增殖的影響[J].康復(fù)學(xué)報(bào),2015,25(3):23-34.
[10]Longa EZ,Weinstein PR,Carlson S,et al.Reversiblemiddle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats[J]. Stroke,1989,20(1):84-91.
[11]李忠仁.實(shí)驗(yàn)針灸學(xué)[M].北京:中國(guó)中醫(yī)藥出版社,2007:242.
[12]Jing T,Xie-Hua X,Li-Dian C,etal.Electroacupuncture improves neurological deficits and enhances proliferation and differentiation of endogenous nerve stem cells in ratswith focal cerebral ischemia[J].Neurological Research,2010,32(2):198-204.
[13]廖少欽,江征,卓麗萍,等.針刺“曲池”“外關(guān)”穴位促進(jìn)腦卒中手功能恢復(fù)臨床研究[J].亞太傳統(tǒng)醫(yī)藥,2014,10(22):60-62.
[14]Chen A,Lin Z,Lan L,etal.Electroacupuncture at the Quchi and Zusanli acupoints exerts neuroprotective role in cerebral ischemia-reperfusion injured rats via activation of the PI3K/ Aktpathway[J].International JournalofMolecularMedicine,2012,30(4):791-796.
[15]Ren Y,Li X,Xu ZC.Asymmetrical protection of neostriatal neurons against transient forebrain ischemia by unilateral dopamine depletion[J].Experimental Neurology,1997,146(1):250-257.
[16]Svenningsson P,NishiA,F(xiàn)isone G,etal.DARPP-32:an integrator of neurotransmission[J].Annual Review of Pharmacology&Toxicology,2004,44(1):269-296.
[17]Yger M,Girault JA.DARPP-32,Jack of all tradesmaster of which[J].Frontiers in Behavioral Neuroscience,2011,5(1):108-115.
[18]Belkhiri A,Zaika A,Pidkovka N,et al.Darpp-32:a novel antiapoptotic gene in upper gastrointestinal carcinomas[J]. CancerResearch,2005,65(15):6583-6592.
[19]Walaas SI,Aswad DW,Greengard P.A dopamine-and cyclic AMP-regulated phosphoprotein enriched in dopamine-innervated brain regions[J].Nature,1983,301(5895):69-71.
[20]NishiA,Bibb JA,SnyderGL,etal.Amplification ofdopaminergic signaling by a positive feedback loop[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2000,97(23):12840-12845.
[21]Hirotaka I,Mayumi O,Shigenobu S,et al.Effect of transient forebrain ischemia on long-term enhancement of dopamine re-lease in rat striatal slices[J].Brain Res,1995,671:95-99.
[22]Wozniak E,OldziejS,Ciarkowski J.Molecularmodelingof the catalytic domain of s erine/threonine phosphatase-1 with the Zn2+and Mn2+nuclear ion centers in the active site[J].ComputChem,2000,24:381-390.
[23]SUNYa-Feng,TANGFang-Ming,DINGYun-Min,etal.Effectof dopamine depletion on DARPP-32 protein in ischemic rat striatum[J].Acta Pharmacologica Sinica,2001,22(3):243-248.
[24]孫亞鋒,唐放鳴,王然,等.缺血引起沙土鼠紋狀體DARPP-32磷酸化狀態(tài)的變化[J].生理學(xué)報(bào),2001,53(2):108-110.
[25]Jin H,XiG,Keep RF,etal.DARPP-32 toquantify intracerebralhemorrhage-induced neuronal death in basalganglia[J]. TranslationalStroke Research,2013,4(1):130-134.
Effects of Electroacupuncture at Quchi(LI11)and Zusanli(ST36)on DARPP-32 Phosphorylation in Rat Striatum after Cerebral Ischmeia-reperfusion
LIN Yunjiao,WANG Lulu,WU Jie,et al.College of Rehabilitation Medicine,F(xiàn)ujian University of Traditional Chinese Medicine,F(xiàn)ujian,F(xiàn)uzhou 350122,China.
R245.9+7
A
1004-745X(2016)09-1645-05
10.3969/j.issn.1004-745X.2016.09.001
2016-05-27)
·綜述·
國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(81273835;81373778);福建省衛(wèi)生廳青年科研課題(2014-1-70)
(電子郵箱:cld@fjtcm.edu.cn)