牟豪杰, 王 燕, 呂永平, 汪一婷, 李海營(yíng)
(浙江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院病毒學(xué)與生物技術(shù)研究所,浙江杭州 310021)
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冰砂糖壽組培快繁研究
牟豪杰, 王 燕, 呂永平, 汪一婷, 李海營(yíng)*
(浙江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院病毒學(xué)與生物技術(shù)研究所,浙江杭州 310021)
[目的] 探討冰砂糖壽組培快繁的最佳條件。[方法]以冰砂糖壽幼嫩花序?yàn)橥庵搀w,研究冰砂糖壽組培快繁技術(shù)。[結(jié)果] 于MS + 5 mg/L 6-BA + 0.5 mg/L IBA+30 g/L蔗糖+7g/L瓊脂 的誘導(dǎo)培養(yǎng)基上成功誘導(dǎo)出愈傷組織,在分化培養(yǎng)基MS+0.3 mg/L 6-BA+30 g/L蔗糖+7 g/L瓊脂上繼代培養(yǎng)可分化成不定芽,將不定芽轉(zhuǎn)接到增殖培養(yǎng)基MS + 0.3 mg/L 6-BA + 0.1 mg/LNAA+30 g/L蔗糖+7 g/L瓊脂上增殖速度較快,增殖系數(shù)達(dá)3.79。將其移栽至營(yíng)養(yǎng)基質(zhì)(混合泥炭∶粗砂=1∶1)中,移栽成活率可達(dá)95%。[結(jié)論]建立了冰砂糖壽花序再生及快繁體系,為其規(guī)?;a(chǎn)提供理論依據(jù)。
冰砂糖壽;愈傷組織;不定芽
冰砂糖壽(Haworthiakegazato)為百合科(Liliaceae)瓦葦屬(Haworthia)植物,該屬植物根據(jù)植株葉的形態(tài),分為硬葉和軟葉2類(lèi)。硬葉類(lèi)植物葉面常被白色斑點(diǎn),或結(jié)節(jié)成條狀,具有極高的觀賞價(jià)值。冰砂糖壽屬于硬葉類(lèi)植株,其葉片小巧,表面布滿白色小刺如冰晶狀,是極其珍貴的多肉植物品種之一。但由于其繁殖率很低,傳統(tǒng)的繁殖大多采用分株、葉插和種子繁殖,不易成活且生長(zhǎng)緩慢,同時(shí),冰沙糖壽是雜合體,其有性雜交與母本差異較大,而植物組織培養(yǎng)繁殖速度快、繁殖系數(shù)大,繁殖后代整齊一致,能保持原有品種的優(yōu)良性狀。 21 世紀(jì)初,與冰砂糖壽同屬的康平壽[1]、截形十二卷[2]、克里克特壽[3]、西山壽[4]、Haworthiamirabilis[5]和美吉壽[6]等多肉植物均有組織培養(yǎng)成功的報(bào)道,但未見(jiàn)其應(yīng)用于產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)。筆者以冰砂糖壽幼嫩花序?yàn)橥庵搀w,研究其組織培養(yǎng)及快繁技術(shù),以期為其規(guī)?;a(chǎn)提供理論依據(jù)。
1.1 試驗(yàn)材料 供試材料為冰砂糖壽(Haworthiakegazato)幼嫩花序。
1.2 試驗(yàn)方法
1.2.1 外植體消毒。選取冰砂糖壽幼嫩花序?yàn)橥庵搀w,去除閉合花蕾的外苞片,再將花蕾連同花柄逐個(gè)切下。外植體先用濃洗衣粉溶液浸泡1 h后再用自來(lái)水沖洗干凈,然后在70%乙醇溶液和有效氯濃度1% 的次氯酸鈉溶液中分別浸泡40 s和6 min,最后用無(wú)菌水沖洗3~5遍,每遍2 min。
1.2.2 愈傷組織的誘導(dǎo)與增殖。將消毒后的花蕾在無(wú)菌條件下先用解剖刀將其基部切傷后接種于愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基(MS + 5 mg/L 6-BA + 0.5 mg/L IBA+30 g/L蔗糖+7 g/L瓊脂)中,并使傷口接觸到培養(yǎng)基。于(23±2)℃暗培養(yǎng)42 d后轉(zhuǎn)于光照條件(光照時(shí)間16 h/d, 光照強(qiáng)度約為60 μmol/(m2·s)下培養(yǎng)。
1.2.3 愈傷組織的分化。將誘導(dǎo)出致密、球狀、淡黃色的愈傷組織暗培養(yǎng)14 d后,挑取生長(zhǎng)量較大、色澤鮮亮、質(zhì)地較硬的愈傷組織,接種在附加不同濃度分裂素及配比的培養(yǎng)基中,6-BA濃度分別為 0.1、 0. 3、 0.5 mg/L,進(jìn)行單因素試驗(yàn),在光照時(shí)間16 h/d、光照強(qiáng)度60 μmol/(m2·s)、溫度(23±2)℃ 條件下培養(yǎng)。28 d后統(tǒng)計(jì)不定芽分化情況,每次試驗(yàn)接種至少20 塊愈傷組織,重復(fù)3 次。
將誘導(dǎo)出的不定芽叢分成小叢接種在附加生長(zhǎng)素和細(xì)胞分裂素的不同濃度及配比的培養(yǎng)基中,6-BA濃度分別為 0.1、0.3、0.5 mg/L,NAA濃度分別為 0、0. 1、0.3 mg/L,進(jìn)行雙因素試驗(yàn),統(tǒng)計(jì)不定芽的分化情況。
1.2.4 壯苗與移栽。將增殖培養(yǎng)基上具有典型母本形態(tài)的叢生芽在無(wú)菌條件下切割成單株后轉(zhuǎn)接至壯苗培養(yǎng)基(1/2MS+30 g/L 蔗糖+7 g/L瓊脂)中,待植株達(dá)1.5~2.0 cm且出現(xiàn)明顯成株形態(tài)時(shí)即可切除其根部并清洗,然后置于通風(fēng)避光處3~10 d晾至微皺縮后, 種于裝有基質(zhì)6 cm×6 cm 營(yíng)養(yǎng)缽基質(zhì)(混合泥炭:粗沙=1∶1)中。種植完成后移入溫室內(nèi)的小塑料拱蓬中保濕,同時(shí)用 0.5 g/L多菌靈處理。14 d后適當(dāng)通風(fēng),注意及時(shí)噴水,保持基質(zhì)濕潤(rùn);21 d后逐漸增大通風(fēng)量。 夏季移栽時(shí),移栽后前28 d應(yīng)適當(dāng)遮陰[7]。
2.1 不同濃度6-BA對(duì)愈傷組織分化的影響 幼嫩花蕾培養(yǎng)28~35 d后子房基部顯著膨大且組織逐漸玻璃化;培養(yǎng)42~49 d后先形成淡黃色愈傷組織(圖1 A)。將暗培養(yǎng)14 d后致密、球狀、淡黃色的冰砂糖壽愈傷組織置于添加不同濃度6-BA 的MS培養(yǎng)基中,約 21 d后出現(xiàn)深綠色小突起(圖1 B),而后開(kāi)始不定芽的分化(圖1 C),接種35~42 d后分化出叢生芽(圖1 D)。隨著 6-BA 濃度的升高成芽率逐漸升高,當(dāng)6—BA濃度達(dá)0.5 mg/L時(shí),雖然不定芽誘導(dǎo)率達(dá)到最高(78.7%±15.9%),但產(chǎn)生的叢生芽過(guò)于稠密,葉片小,植株生長(zhǎng)不明顯且愈傷組織褐化嚴(yán)重,不適合進(jìn)一步增殖;而當(dāng)6-BA濃度達(dá)0.3 mg/L時(shí),產(chǎn)生的叢生芽葉片較大,生長(zhǎng)健壯(圖1E)。因此, MS+0.3 mg/L 6-BA+30 g/L蔗糖+7 g/L瓊脂培養(yǎng)基最有利于芽的分化(表 1)。
圖1 冰砂糖壽的組培再生體系Fig.1 tissue culture regeneration system of Haworthia kegazato
Table 1 Effects of different 6 - BA concentration on callus differentiation
處理Treatment6-BA濃度6-BAconcent-ration∥mg/L愈傷組織接種數(shù)Numberofcallusvacci-nation∥個(gè)不定芽數(shù)Numberofadventitiousbud∥個(gè)誘導(dǎo)率Inductionrate∥%①0.1653046.9±9.1②0.3614574.1±14.5③0.5635078.7±15.9
2.2 不同濃度激素對(duì)不定芽增殖的影響 由表 2 可知,隨著 6-BA 濃度的升高增殖系數(shù)呈上升趨勢(shì),而當(dāng) 6-BA濃度達(dá) 0.5 mg/L 時(shí),苗纖細(xì)過(guò)密,葉片小而薄,不利于產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)。從種苗產(chǎn)業(yè)化角度考慮,最適合冰砂糖壽不定芽增殖的培養(yǎng)基是MS + 0.3 mg/L 6-BA + 0.1 mg/L NAA+30 g/L蔗糖+7 g/L瓊脂,其增殖系數(shù)可達(dá)3.79。
2.3 移栽成活率 不定芽在壯苗培養(yǎng)基(1/2MS+30 g/L蔗糖+7 g/L瓊脂)上培養(yǎng)至植株達(dá)1.5~2.0 cm且出現(xiàn)明顯成株形態(tài)時(shí),在營(yíng)養(yǎng)基質(zhì)(混合泥炭∶粗沙=1∶1)中移栽,其移栽成活率可達(dá)95%。
表2 不同濃度激素對(duì)不定芽增殖的影響
注:+.苗纖細(xì),葉片小而薄; ++.苗纖細(xì),葉片較?。?+++.苗粗壯,葉片較厚; ++++.苗粗壯,葉片肥厚。
Note:+ stands for stender,smal and thin leaf;++ stands for slender plants and small leaf;+++ stands for granular plants and thick leaf;++++ stands for granular plants and thicker leaf.
該試驗(yàn)中,冰砂糖壽花序接種于MS + 5 mg/L 6-BA + 0.5 mg/L IBA+30 g/L蔗糖+7 g/L瓊脂的誘導(dǎo)培養(yǎng)基上42~49 d成功誘導(dǎo)出愈傷組織;暗培養(yǎng)14 d后的致密、球狀、淡黃色的愈傷組織在分化培養(yǎng)基( MS+0.3 mg/L 6-BA+30 g/L蔗糖+7 g/L瓊脂)上35~42 d繼代可分化成不定芽叢,分化芽在MS + 0.3 mg/L 6-BA + 0.1 mg/L NAA+30 g/L蔗糖+7 g/L瓊脂培養(yǎng)基上增殖速度最快,叢生芽生長(zhǎng)健壯,增殖系數(shù)達(dá)3.79。將其移栽在營(yíng)養(yǎng)基質(zhì)(混合泥炭∶粗沙=1∶1)中,其移栽成活率可達(dá)95%。
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Tissue Culture and Rapid Propagation ofHaworthiakegazato
MOU Hao-jie, WANG Yan,LV Yong-ping, LI Hai-ying*
(Zhejiang Academy of Agricultural Sciences,Institute of Virology and Biotechnology, Hangzhou, Zhejiang 310021)
[Objective]The aim was to study tissue culture and rapid propagation ofHaworthiakegazato.[Method]With young inflorescence ofHaworthiakegazatoas explant, tissue culture and rapid propagation ofHaworthiakegazatowas studied. [Result] Embryogenic callus was initiated fromHaworthiacomptoniana×H.correctacv.'Aboukyuuinflorescencecultured on MS medium supplemented with 5 mg/L 6-BA, 0.5 mg/L IBA, 30g/L sucrose, and 7g/L agar. Subculture of these embryogenic calli on the MS + 0.3 mg/L 6-BA+ 30 g/L sucrose+7 g/L agar medium resulted in shoots and micropropagation of shoots on the MS + 0.3 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA +30 g/L sucrose7 g/L agar medium with muitiplication coefficient of 3.79.The transplanting survival rate was 95% in nutritional substrates.[Conclusion] A subsequent plant regeneration from inflorescence callus ofHaworthiakegazatowere established, to provide theoretical basis for large-scale production.
Haworthiakegazato;Callus;Shoots
牟豪杰(1977- )男,浙江杭州人,助理研究員,從事花卉組培產(chǎn)業(yè)化研究。*通訊作者,助理研究員,碩士,從事生物技術(shù)方面的研究。
2016-09-14
S 682.33
A
0517-6611(2016)32-0140-02