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      Taqman熒光PCR法檢測(cè)肉制品中牛源性成分及定量研究

      2016-12-16 02:42:29沙才華汪文輝黃海超廖秀云珠海出入境檢驗(yàn)檢疫局廣東珠海519000
      中國(guó)動(dòng)物檢疫 2016年12期
      關(guān)鍵詞:牛源牛肉靈敏度

      沙才華,汪文輝,黃海超,廖秀云,楊 素(珠海出入境檢驗(yàn)檢疫局,廣東珠?!?19000)

      Taqman熒光PCR法檢測(cè)肉制品中牛源性成分及定量研究

      沙才華,汪文輝,黃海超,廖秀云,楊素
      (珠海出入境檢驗(yàn)檢疫局,廣東珠海519000)

      本研究通過(guò)以牛線粒體保守基因序列設(shè)計(jì)的特異性引物和探針,建立了肉制品中牛源性成分Taqman熒光PCR檢測(cè)方法,并對(duì)方法的特異性、靈敏度和穩(wěn)定性進(jìn)行了評(píng)價(jià);通過(guò)模擬濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線,完成了對(duì)牛源性成分的相對(duì)定量檢測(cè)。結(jié)果顯示,本方法具有特異性強(qiáng)、靈敏度高(檢出限為0.001%)的特點(diǎn),適用于肉制品中牛源性成分及含量的快速檢測(cè)。

      牛源性成分;線粒體;Taqman熒光 PCR

      近年來(lái),“假牛肉事件”屢屢曝光,牛肉制品中造假摻雜幾乎成為公開(kāi)的秘密。這些不法行為不僅擾亂了正常的市場(chǎng)秩序,而且造成了食品安全隱患,其影響不容忽視。因此,建立一種對(duì)肉制品中牛源性成分進(jìn)行快速鑒定和定量分析的準(zhǔn)確檢測(cè)方法具有非常重要的意義。

      Taqman熒光 PCR技術(shù)應(yīng)用于食品中肉類(lèi)種源鑒別,這在保證鑒別準(zhǔn)確性前提下,使定量檢測(cè)成為可能。由于Taqman熒光PCR擴(kuò)增的目的片段較短,所以尤其適用于加工食品的檢測(cè)。根據(jù)被釋放的熒光基團(tuán)數(shù)目與PCR產(chǎn)物數(shù)量的一對(duì)一關(guān)系,直接探測(cè)PCR過(guò)程中熒光信號(hào)的變化,以獲得定量結(jié)果,進(jìn)而利用該技術(shù)對(duì)模板進(jìn)行準(zhǔn)確定量[1]。本研究選定高保守的牛線粒體基因作為靶基因,設(shè)計(jì)特異引物及探針,旨在建立快速、簡(jiǎn)便、靈敏、特異的牛源性成分熒光PCR檢測(cè)方法,從而實(shí)現(xiàn)對(duì)肉制品中牛源性成分的鑒定和定量,為打擊牛肉制品造假摻雜行為提供技術(shù)支撐。

      1 材料和方法

      1.1樣品

      黃牛肉、水牛肉、牦牛肉、羚羊肉、山羊肉、綿羊肉、馬肉、驢肉、雙峰駝肉、馴鹿肉、豬肉、貓肉、狗肉、雞肉、鴨肉為本實(shí)驗(yàn)室留存樣品。以上樣品均已使用本實(shí)驗(yàn)室脊椎動(dòng)物通用引物(經(jīng)過(guò)CNAS認(rèn)可)對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行了測(cè)序,確定了其種屬。

      1.2主要試劑

      DNA提取試劑盒E.Z.N.A.TM Tissue DNA Kit,美國(guó)OMEGA公司產(chǎn)品;Premix Ex Taq qPCR Mastermix,寶生物工程(大連)有限公司產(chǎn)品。

      1.3主要儀器

      7500 FAST熒光定量PCR儀,美國(guó)Applied Biosystems公司產(chǎn)品;Sigma 3-18 K高速冰凍臺(tái)式離心機(jī),德國(guó)Sartorius公司產(chǎn)品;NanoDrop ND-1000紫 外 分 光 光 度 計(jì), 美 國(guó) NanoDrop Technologies 公司產(chǎn)品。

      1.4方法

      1.4.1PCR引物、探針的設(shè)計(jì)與合成。檢索GenBank中公布的大量不同種屬的牛(包括黃牛、水牛、牦牛)DNA序列,最終選用牛線粒體DNA(mitochondrial DNA,mtDNA)上的特異性序列作為設(shè)計(jì)引物與探針的序列。利用生物學(xué)軟件DNAMAN將其比對(duì)后,在高度保守區(qū)域用Oligo7.0設(shè)計(jì)一組牛特異性PCR引物和探針,由大連寶生物科技有限公司合成。引物、探針序列見(jiàn)表1。

      表1 牛引物、探針序列

      1.4.2樣品的DNA提取。按照DNA提取試劑盒說(shuō)明書(shū)提取樣品DNA,利用Nanodrop 1 000微量紫外分光光度計(jì)測(cè)定樣品DNA濃度和純度。按照所測(cè)濃度,將樣品DNA 含量稀釋至100 ng/μL左右,存于-20 ℃?zhèn)溆谩?/p>

      1.4.3反應(yīng)體系和反應(yīng)條件。PCR反應(yīng)體系為25 μL:2×Taq PCR Master mix 12.5 μL、10 μmol/L上下游引物各2 μL、10 μmol/L探針1 μL、DNA模版2.0 μL,補(bǔ)水至25 μL。反應(yīng)程序:95℃4 min;95℃15 s,50℃1 mins,40個(gè)循環(huán)。FAM熒光通道搜集信號(hào),在每個(gè)循環(huán)的退火階段收集熒光信號(hào)。結(jié)果判定:Ct值小于35,且曲線有明顯的對(duì)數(shù)增長(zhǎng),判為陽(yáng)性;Ct值大于35,判為陰性。

      1.4.4熒光PCR方法特異性試驗(yàn)。以黃牛肉、水牛肉、牦牛肉等3份牛源性樣品和羚羊肉、山羊肉、綿羊肉、馬肉、驢肉、雙峰駝肉、馴鹿肉、豬肉、貓肉、狗肉、雞肉、鴨肉等12份非牛源動(dòng)物樣品提取的DNA為模板,進(jìn)行熒光PCR擴(kuò)增,驗(yàn)證所建立的熒光PCR方法的特異性。

      1.4.5熒光PCR方法靈敏度和穩(wěn)定性試驗(yàn)。以新鮮牛肉去脂肪后切片,經(jīng)烘箱60 ℃ 72小時(shí)烘干,然后研磨成牛肉粉,稱(chēng)取30 mg牛肉粉按照1.4.2所述方法提取牛DNA模板,用滅菌雙蒸水10倍比稀釋至10-9,每個(gè)梯度的樣品取5個(gè)平行進(jìn)行熒光PCR擴(kuò)增,計(jì)算各稀釋度樣品Ct平均值()和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)評(píng)價(jià)該方法靈敏度及穩(wěn)定性。

      1.4.6模擬混合樣熒光PCR方法靈敏度和穩(wěn)定性試驗(yàn)。使用1.4.5制備的純牛肉粉和純魚(yú)粉按10倍比稀釋混合至10-9,稱(chēng)取30 mg混合粉提取DNA模板,每個(gè)梯度的樣品取5個(gè)平行進(jìn)行熒光PCR擴(kuò)增,計(jì)算各稀釋度樣品Ct平均值和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)評(píng)價(jià)該方法靈敏度及穩(wěn)定性。

      1.4.7標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立及模擬混合樣品中牛源性成分定量檢測(cè)。使用1.4.5制備的純牛肉粉和純魚(yú)粉按不同比例混合,制成牛源性成分含量分別為100%、50%、25%、10%、5%及1%(m/m)的系列濃度標(biāo)準(zhǔn)樣本,標(biāo)準(zhǔn)樣品取5個(gè)平行。同時(shí)模擬加工混合肉樣的檢測(cè),對(duì)牛肉粉含量分別為2%、4%、8%、20%、40%和80%的混合樣品進(jìn)行定量體系檢測(cè),每個(gè)樣品取2個(gè)平行。每份樣品稱(chēng)取30 mg混合粉提取DNA模板,進(jìn)行熒光PCR擴(kuò)增,通過(guò)ABI熒光PCR儀軟件設(shè)定標(biāo)準(zhǔn)對(duì)照,反應(yīng)結(jié)束后,直接點(diǎn)擊“analysis”進(jìn)行分析,軟件自動(dòng)給出標(biāo)準(zhǔn)曲線(包括線性關(guān)系、斜率、擴(kuò)增效率等)及各樣品計(jì)算濃度。也可以每個(gè)濃度的值為橫坐標(biāo),log2(濃度)的絕對(duì)值為縱坐標(biāo)繪制散點(diǎn)圖,生成標(biāo)準(zhǔn)曲線,推導(dǎo)公式并計(jì)算各模擬加工混合肉樣含量。

      1.4.8市售商品的檢測(cè)。應(yīng)用本方法和國(guó)標(biāo)

      GB/T 20190—2006(普通PCR)中的方法,同時(shí)對(duì)收集的10份標(biāo)稱(chēng)為牛肉制品的商品開(kāi)展牛源性成分檢測(cè)。

      2 結(jié)果與分析

      2.1牛源性成分熒光PCR方法特異性試驗(yàn)

      上述16種不同物種的檢測(cè)結(jié)果顯示:僅黃牛肉、水牛肉和牦牛肉有典型的“S”型擴(kuò)增曲線且Ct值小于35,而其他樣品及空白對(duì)照均未有擴(kuò)增曲線或Ct值大于35,具體結(jié)果見(jiàn)圖1。

      圖1 牛源性成分熒光PCR方法特異性試驗(yàn)

      2.2牛源性成分熒光PCR靈敏度試驗(yàn)和穩(wěn)定性試驗(yàn)

      對(duì)稀釋度為100~10-9樣品進(jìn)行熒光PCR試驗(yàn),結(jié)果顯示:樣品在稀釋度在100~10-6稀釋度時(shí),Ct值均小于35,且曲線有明顯的對(duì)數(shù)增長(zhǎng),擴(kuò)增結(jié)果具有良好的重復(fù)性,其相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD<3.5%,當(dāng)樣品在稀釋度10-7仍有擴(kuò)增曲線,但樣品Ct值大于35,且相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD>3.5%。因此本方法建立的熒光PCR方法靈敏度高達(dá)10-6(即0.000 1%,對(duì)應(yīng)的為33.94),也與理論推導(dǎo)出來(lái)Ct值吻合。最低檢測(cè)到的牛肉DNA含量為0.2 pg。本方法的靈敏度和穩(wěn)定性試驗(yàn)見(jiàn)圖2,相關(guān)數(shù)據(jù)見(jiàn)表2。以稀釋度對(duì)值作圖,其線性關(guān)系如圖3所示。線性相關(guān)系數(shù)R2 = 0.999 6,線性范圍為10-6~100(即0.000 1%~100%)。

      2.3模擬混合樣熒光PCR方法靈敏度和穩(wěn)定性試驗(yàn)

      對(duì)稀釋度為100~10-9樣品進(jìn)行熒光PCR試驗(yàn),結(jié)果顯示:樣品在稀釋度在100~10-5稀釋度時(shí),Ct值均小于35,且曲線有明顯的對(duì)數(shù)增長(zhǎng),擴(kuò)增結(jié)果具有良好的重現(xiàn)性,其相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD<3.5%。當(dāng)樣品在稀釋度10-6時(shí),樣品Ct值大于35,因此本方法建立的熒光PCR方法靈敏度高達(dá)10-5(即0.001%,對(duì)應(yīng)的為32.39)。本方法的靈敏度和穩(wěn)定性試驗(yàn)見(jiàn)圖4,相關(guān)數(shù)據(jù)見(jiàn)表3。以稀釋度對(duì)值作圖,其線性關(guān)系如圖5所示。線性相關(guān)系數(shù)R2 = 0.991 4,線性范圍為10-5~100(即0.001%~100%)。

      表2 牛源性成分熒光PCR 反應(yīng)的靈敏度和穩(wěn)定性試驗(yàn)數(shù)據(jù)

      圖2 牛源性成分熒光PCR方法靈敏度和穩(wěn)定性試驗(yàn)

      圖3 牛源性成分熒光PCR方法線性關(guān)系

      圖4 模擬混合樣牛源性成分熒光PCR方法靈敏度和穩(wěn)定性試驗(yàn)

      表3 模擬混合樣牛源性成分熒光PCR 反應(yīng)的靈敏度和穩(wěn)定性試驗(yàn)數(shù)據(jù)

      圖5 模擬混合樣牛源性成分熒光PCR方法線性關(guān)系

      2.4標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立及模擬混合樣品中牛源性成分定量檢測(cè)

      應(yīng)用PCR儀自帶軟件分析顯示:線性相關(guān)系數(shù)R2= 0.986,線性范圍為1%~100%。對(duì)牛肉粉含量分別為2%、4%、8%、20%、40%和80%的混合樣品進(jìn)行定量體系檢測(cè)所得牛肉粉含量平均值分別為2.8%、4.2%、9.1%、21.1%、46.0%和79.7%(圖6)。以值為橫坐標(biāo),以log2(濃度)的絕對(duì)值為縱坐標(biāo)繪制散點(diǎn)圖,制備標(biāo)準(zhǔn)曲線,并推導(dǎo)出牛源性成分的含量。公式中的y為牛源性成分含量,x為檢測(cè)的Ct值。應(yīng)用公式計(jì)算出牛肉粉含量分別為2.9%、4.2%、9.2%、21.0%、45.4%和78.1%,線性相關(guān)系數(shù)R2= 0.989,線性范圍為1%~100%,其線性關(guān)系如圖7所示。兩種方法的定量結(jié)果均與實(shí)際結(jié)果相近,相關(guān)數(shù)據(jù)及定量結(jié)果見(jiàn)表4。

      圖6 標(biāo)準(zhǔn)曲線及模擬混合樣品中牛源性成分定量檢測(cè)

      表4 牛源性成分熒光PCR定量結(jié)果

      2.5市售商品的檢測(cè)

      對(duì)10份標(biāo)稱(chēng)為牛肉的制品同時(shí)應(yīng)用本方法和國(guó)標(biāo)GB/T 20190—2006(普通PCR)進(jìn)行牛源性成分檢測(cè)。兩種方法的定性檢測(cè)結(jié)果完全吻合,其中6份樣品檢出牛源性成分,另4份樣品未檢出牛源性成分。應(yīng)用本方法進(jìn)行定量分析,6份檢出牛源性成分的樣品,其中有5份樣品牛肉含量約100%,另1份樣品含量約為40%。而普通PCR方法凝膠電泳條帶亮度和清晰度基本一致,無(wú)法區(qū)分樣品牛源性成分含量。熒光定量PCR檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)圖8,普通PCR檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)圖9。

      圖7 牛源性成分熒光定量PCR標(biāo)準(zhǔn)曲線線性關(guān)系

      圖8 市售商品熒光定量PCR檢測(cè)

      圖9 市商樣品普通PCR檢測(cè)

      3 討論

      動(dòng)物產(chǎn)品的質(zhì)量安全涉及畜牧業(yè)健康發(fā)展、公共衛(wèi)生、宗教信仰、進(jìn)出口貿(mào)易等諸多領(lǐng)域。傳統(tǒng)的感官檢驗(yàn)和免疫學(xué)方法僅能鑒別生鮮肉的種屬。肉制品經(jīng)加工后,因其感官性狀、蛋白質(zhì)成分和其他免疫原性物質(zhì)被破壞而難以鑒別。DNA比蛋白質(zhì)的耐熱性強(qiáng),高溫處理過(guò)的食品中仍能提取出DNA。有資料表明,肉制品經(jīng)過(guò)加工后,即使溫度達(dá)到141℃,也有足夠的DNA可通過(guò)實(shí)時(shí)熒光PCR技術(shù)檢測(cè)到,所以對(duì)于經(jīng)過(guò)加工的食物仍具有較強(qiáng)的鑒別能力[2-3]。本次建立的熒光PCR方法擴(kuò)增曲線具有典型的“S”型,特異性強(qiáng),穩(wěn)定性較好,混合肉粉中牛源性成分的熒光PCR方法最低檢出限為10-5(即0.001%),高于國(guó)標(biāo)法最低檢出限(0.1%)100倍。這與相關(guān)報(bào)道一致,說(shuō)明所設(shè)計(jì)的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件較好[4-6]。

      本研究主要針對(duì)國(guó)內(nèi)消費(fèi)量較高且價(jià)格昂貴的牛肉作為研究對(duì)象,通過(guò)設(shè)計(jì)特異引物和探針,建立定性及相對(duì)定量檢測(cè)體系,將構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)曲線的Ct值分別代入公式,得出樣品中牛肉含量,以達(dá)到甄別惡意造假和摻假的目的[7]。構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)曲線和日常檢測(cè)樣品的所用方法和實(shí)驗(yàn)條件必須完全相同。標(biāo)準(zhǔn)曲線建立后可供多次使用,更改DNA提取方法、更換熒光PCR反應(yīng)試劑,更新熒光PCR儀或儀器關(guān)鍵配件,必須重新制作標(biāo)準(zhǔn)曲線。也可通過(guò)PCR儀自帶軟件設(shè)定標(biāo)準(zhǔn)曲線參數(shù)分析各樣品計(jì)算濃度。在線性范圍1%~100%內(nèi)對(duì)6個(gè)不同濃度的模擬樣品進(jìn)行定量檢測(cè),兩種分析方法的定量結(jié)果均與實(shí)際結(jié)果相近,證實(shí)該定量體系可以用來(lái)檢測(cè)牛肉粉的含量。

      應(yīng)用Taqman熒光PCR檢測(cè)方法對(duì)抽檢的10份標(biāo)稱(chēng)牛肉的制品進(jìn)行牛源性成分定量檢測(cè),發(fā)現(xiàn)5份有摻假造假現(xiàn)象。經(jīng)使用本實(shí)驗(yàn)室脊椎動(dòng)物通用引物進(jìn)行擴(kuò)增,并對(duì)PCR產(chǎn)物測(cè)序,確定其種屬,其中4份含有豬源性成分,1份含有鴨源性成分,說(shuō)明市場(chǎng)上確實(shí)存在以低價(jià)肉類(lèi)加工而成的假牛肉。

      本研究建立的牛源性成分Taqman熒光 PCR檢測(cè)方法特異性強(qiáng)、靈敏度高,可以快速、準(zhǔn)確檢測(cè)畜肉食品中含有的牛源性成分及其含量,能夠?yàn)橘|(zhì)檢部門(mén)打擊不法商販、維護(hù)消費(fèi)者合法利益提供有力的科學(xué)依據(jù)。

      [1] 王穎,史艷宇,劉金華,等. 熒光定量PCR方法檢測(cè)畜肉食品中豬源性成分[J]. 食品安全質(zhì)量檢測(cè)學(xué)報(bào),2013,4(5):1529-1534.

      [2] 馮秀燕,董紅霞,魏秀蓮,等. 動(dòng)物源性飼料中牛源和羊源性成分的檢測(cè)方法[J]. 飼料研究,2006(11):52-54.

      [3] 楊寶華,宗卉,林慶燕,等. 用分子生物學(xué)方法鑒別檢測(cè)動(dòng)物源性飼料中的牛羊源性成分[J]. 中國(guó)畜牧獸醫(yī)雜志,2002,38(1):3-5.

      [4] 國(guó)家質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)檢疫總局.飼料中牛羊源性成分的定性檢測(cè)定性聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)法:GB/T 20190—2006[S] . 北京:中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社,2006.

      [5] 國(guó)家質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)檢疫總局.食品、化妝品和飼料中牛羊豬源性成分檢測(cè)方法實(shí)時(shí)PCR法:SN/T 2051—2008[S].北京:中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社,2008.

      [6] 趙冉,蔡振鴻,陳永鋒,等. 動(dòng)物產(chǎn)品及飼料中牛源和羊源性成分三重?zé)晒釶CR檢測(cè)方法的建立[J]. 畜牧與獸醫(yī),2012,44(7):18-22.

      [7] 于雷,姜艷彬,王海,等. 熒光定量PCR法的優(yōu)化及其在牛羊源性成分檢測(cè)中的應(yīng)用研究[J]. 中國(guó)畜牧獸醫(yī)雜志,2009,45(24):51-54.

      (責(zé)任編輯:朱迪國(guó))

      Detection of Bovine-derived Materials in Meat Products by Real-time Fluorescent PCR with TaqMan Probe and Its Quantitative Research

      Sha Caihua,Wang Wenhui,Huang Haichao,Liao Xiuyun,Yang Su
      (Zhuhai Entry-exit Inspection and Quarantine Bureau,Zhuhai,Guangdong519000)

      According to the conserved sequence of the gene in bovine mitochondria,the specific primers and probes were designed,a real-time fluorescent PCR with TaqMan probe for detecting bovine-derived materials existing in meat products was developed. Then its specificity,sensitivity and stability were evaluated. Through the simulated concentration standard curve,the relative quantitative detection of bovine-derived materials was conducted. Results showed that this method had the characteristics of strong specificity and high sensitivity,by which the lowest detection limit was 0.001%. As a summary,the established method was suitable for rapid detection of bovine-derived materials and content in meat products.

      bovine-derived materials;mitochondria;real-time fluorescent PCR with TaqMan probe

      TS251.5

      A

      1005-944X(2016)12-0089-05

      10.3969/j.issn.1005-944X.2016.12.024

      珠海出入境檢驗(yàn)檢疫局科技計(jì)劃項(xiàng)目(ZH2014-21)

      汪文輝

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