陳云香,劉國(guó)鋼,陳 敏 ,時(shí)維靜*, 王 茜, 竇金鳳
(1.安徽科技學(xué)院 食品藥品學(xué)院,安徽 鳳陽 233100;2.杭州藝福堂茶業(yè)有限公司,浙江 杭州 310051)
黃蜀葵花、莖、葉多糖與黃酮含量比較
陳云香1,劉國(guó)鋼2,陳 敏1,時(shí)維靜1*, 王 茜1, 竇金鳳1
(1.安徽科技學(xué)院 食品藥品學(xué)院,安徽 鳳陽 233100;2.杭州藝福堂茶業(yè)有限公司,浙江 杭州 310051)
目的:比較黃蜀葵花、莖、葉多糖和黃酮的含量。方法:采用UV法測(cè)定黃蜀葵花、莖、葉中的多糖和黃酮,采用HPLC法測(cè)定黃蜀葵黃酮中金絲桃苷的含量。結(jié)果:黃蜀葵花多糖浸膏得率26.0%,多糖含量17.0%;黃蜀葵莖多糖浸膏得率12.3%,多糖含量11.6%;黃蜀葵葉多糖浸膏得率19.0%,多糖含量14.8%。黃蜀葵花黃酮浸膏得率30.5%,總黃酮含量3.45%;黃蜀葵莖黃酮浸膏得率10.0%,總黃酮含量0.68%;黃蜀葵葉黃酮浸膏得率16.5%,總黃酮含量1.05%。黃蜀葵莖和葉未檢測(cè)到金絲桃苷,黃蜀葵花中金絲桃苷含量為1.86%,符合2015版《中國(guó)藥典》規(guī)定。結(jié)論:黃蜀葵不同部位的多糖和黃酮含量存在較大差異,黃蜀葵莖和葉不可替代黃蜀葵花,但可以用于提取多糖。本試驗(yàn)為黃蜀葵的開發(fā)利用提供參考數(shù)據(jù)。
黃蜀葵;不同部位;多糖;黃酮
黃蜀葵Abelmoschusmanihot( L.) Medic.為錦葵科秋葵屬多年生草本植物,始載于宋代掌禹錫所著《嘉佑本草》[1]。黃蜀葵在我國(guó)大部分地區(qū)均有分布或栽培[2]。歷代本草多用其花入藥,其次是種子、根,莖和葉少用?,F(xiàn)代化學(xué)研究表明,黃蜀葵花主要含黃酮類成分,種子主要含氨基酸和不飽和脂肪酸,根中主要為多糖類物質(zhì)[3]。目前對(duì)黃蜀葵花和根研究應(yīng)用較多,以黃蜀葵花為主要原料的三類新藥“黃葵膠囊”已經(jīng)上市,用于治療腎炎、類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎等疾病。黃蜀葵根含黏質(zhì)(黃蜀葵多糖)可用作潤(rùn)滑藥,在食品工業(yè)中用作增稠劑和穩(wěn)定劑[4]。每年10月后栽培基地花采收后,根待來年再發(fā),大量的莖和葉被拋棄。因黃蜀葵的主要活性物質(zhì)是黃酮和多糖,本文比較黃蜀葵花、莖、葉三個(gè)不同部位多糖和黃酮含量,為黃蜀葵的開發(fā)利用提供參考數(shù)據(jù)。
1.1 試藥與儀器
黃蜀葵試驗(yàn)材料于2015年10月25日采自安徽省黃山歙縣桂林鎮(zhèn)黃蜀葵生產(chǎn)基地,經(jīng)安徽科技學(xué)院食品藥品學(xué)院時(shí)維靜教授鑒定為秋葵屬黃蜀葵Abelmoschusmanihot( L.) Medic.的花、莖和葉。
金絲桃苷(批號(hào)1779-7058)購(gòu)自上海詩(shī)丹德生物技術(shù)有限公司;葡萄糖(批號(hào)116305-141045)購(gòu)自上海阿拉丁生化科技有限公司;蘆丁(100080-201207) 購(gòu)自中國(guó)藥品生物制品檢定所;甲醇、乙腈和磷酸均為色譜純;水為超純水;濃硫酸、重蒸酚、硝酸鋁、亞硝酸鈉、氫氧化鈉、正丁醇等均為分析純。
LC-20AT型分析半制備高效液相色譜儀(日本島津公司);TU-1810紫外可見分光光度計(jì)(北京普析通用儀器有限責(zé)任公司);RE-3000旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠);CP225D準(zhǔn)微量天平(北京塞多利斯儀器系統(tǒng)有限公司)。
1.2 方法
1.2.1 黃蜀葵多糖提取 將烘干的黃蜀葵花、莖、葉粉碎,分別取其粉末30.0 g,料液比為1 ∶12.5,加熱回流提取3次,每次3 h,合并水提液并濃縮。加入95%乙醇,使溶液中乙醇的體積分?jǐn)?shù)為75%,置冰箱24 h。收集沉淀粗多糖,真空干燥箱干燥,計(jì)算得率,備用。
1.2.2 Sevage法除蛋白質(zhì) 分別取不同部位的黃蜀葵粗多糖5.0 g,以適量水溶解。按多糖水溶液體積1/4加入Sevage試劑(三氯甲烷-正丁醇4 ∶1)混合,充分振蕩后靜置,離心除去蛋白層,如此反復(fù)操作,至無游離蛋白為止。濃縮,干燥,計(jì)算得率,備用。
1.2.3 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液制備 精確稱取無水葡萄糖10.0 mg,蒸餾水溶解后定容到50 mL容量瓶中,配置成200 mg/L的葡萄糖儲(chǔ)備液。
1.2.4 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制 精密吸取0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL葡萄糖溶液,分別定容至10 mL容量瓶中,移取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)系列溶液各1 mL,分別置于10 mL具塞試管中,依次加入5%苯酚溶液1.0 mL,充分振蕩后迅速加入濃硫酸6.0 mL,搖勻,室溫下放置30 min,以蒸餾水為空白對(duì)照,在490 nm處測(cè)定吸光度[5]。
1.2.5 黃蜀葵多糖測(cè)定 精密稱取不同部位的黃蜀葵多糖浸膏各5 mg,置100 mL容量瓶中,加水充分溶解,定容至刻度。精密移取黃蜀葵多糖溶液各1 mL,按“1.2.4”項(xiàng)下方法測(cè)吸光度,計(jì)算出黃蜀葵花、莖和葉多糖含量。
1.2.6 黃蜀葵黃酮提取 將烘干的黃蜀葵花、莖、葉粉碎,分別取其粉末20.0 g,加入10倍量的60%乙醇,回流提取1 h,提取2次,過濾,合并上清液,回收乙醇,水浴濃縮至稠狀,于真空干燥箱干燥,計(jì)算得率,備用。
1.2.7 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液制備 精密稱取蘆丁對(duì)照品 10.0 mg,置 50 mL 量瓶中,用 70% 乙醇溶解,并定容至刻度,振蕩搖勻,配制成 200 mg/L 的對(duì)照溶液,備用。
1.2.8 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制 吸取蘆丁對(duì)照品溶液 0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mL,置 10 mL 量瓶中,加5% 亞硝酸鈉溶液 0.3 mL,搖勻,放置 6 min,加10%硝酸鋁溶液0.3 mL,搖勻,放置6 min,再加 4%氫氧化鈉溶液4 mL,搖勻,用 30%乙醇定容至刻度,放置15 min后,在506 nm處測(cè)定吸光度[6]。
1.2.9 黃蜀葵總黃酮測(cè)定 精密稱取不同部位黃蜀葵黃酮浸膏0.1 g,定容到50 mL量瓶,各取1.0 mL置10 mL 量瓶中,按“1.2.7”項(xiàng)下方法操作檢測(cè),計(jì)算出黃蜀葵花、莖和葉總黃酮含量。
1.2.10 測(cè)定金絲桃苷色譜條件 采用Agilent ZORBAX Eclipse Plus C18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm),檢測(cè)波長(zhǎng):360 nm,流動(dòng)相:乙腈-0.1%磷酸溶液(15:85),流速:1.0 mL/min,理論板數(shù)按金絲桃苷峰計(jì)算不低于10 000[7]。記錄色譜圖譜。
1.2.11 對(duì)照品溶液的制備 精密稱定金絲桃苷標(biāo)準(zhǔn)品0.3 mg,置于2 mL容量瓶中,用色譜甲醇定容,混勻,再精密吸取100 μL,置2 mL容量瓶中,甲醇定容,混勻,得對(duì)照品溶液。
1.2.12 金絲桃苷標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制 采用自動(dòng)進(jìn)樣精密吸取金絲桃苷對(duì)照品溶液4、6、8、10、12 μL,以峰面積積分值為縱坐標(biāo),金絲桃苷的進(jìn)樣量(μg)為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.13 金絲桃苷測(cè)定 精密稱取總黃酮浸膏粉各10.0 mg,置于25 mL的容量瓶中,加入適量色譜甲醇,超聲30 min(60 ℃、250 W),取出,放冷,加色譜甲醇至刻度,混勻,取續(xù)濾液,按“1.2.8”項(xiàng)下條件測(cè)定,進(jìn)樣量10 μL。
2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線方程與相關(guān)系數(shù)
采用UV法檢測(cè)多糖和黃酮,采用HPLC法測(cè)定金絲桃苷,各標(biāo)準(zhǔn)曲線方程、相關(guān)系數(shù)與線性范圍見表1。
表1 各標(biāo)準(zhǔn)曲線方程、相關(guān)系數(shù)與線性范圍
2.2 多糖測(cè)定結(jié)果
詳見表2,多糖浸膏得率在12.3~26%,總多糖含量在11.6~17.0%之間。
2.3 總黃酮結(jié)果
詳見表2,黃酮浸膏得率在10.0~30.5%,總黃酮含量在0.05~3.45%之間。
2.4 金絲桃苷含量
黃蜀葵莖和葉中金絲桃苷含量極少,達(dá)不到檢測(cè)線。黃蜀葵花中金絲桃苷含量符合2015版《中國(guó)藥典》含量>0.50%(見表2)。檢測(cè)圖譜見圖1。
A.金絲桃苷標(biāo)準(zhǔn)品;B. 黃蜀葵花;1金絲桃苷峰
提取部位Extraction多糖浸膏得率Yieldofpolysaccharide總多糖含量Polysaccharidecontent黃酮浸膏得率Totalflavonoidsextractionrate總黃酮含量Totalflavonoidscontent金絲桃苷含量Hyperincontent黃蜀葵花26.017.030.53.451.86黃蜀葵莖12.311.610.00.68-黃蜀葵葉19.014.816.50.05-
從表2可以看出,黃蜀葵不同部位多糖含量花>葉>莖,黃蜀葵不同部位總黃酮花>莖>葉。金絲桃苷在莖和葉中未檢出,表明金絲桃苷是黃蜀葵花中黃酮的指標(biāo)性成分。
近年來,關(guān)于黃蜀葵多糖和黃酮化合物的研究越來越多,大部分集中在黃蜀葵花,對(duì)黃蜀葵莖和葉的研究則相對(duì)較少[8]。黃蜀葵中不同部位多糖和黃酮化合物的含量比較也未見報(bào)道。本試驗(yàn)比較了黃蜀葵花、莖、葉中的多糖和黃酮含量,并證明了金絲桃苷是黃蜀葵花中黃酮的指標(biāo)性成分。
本試驗(yàn)中紫外可見分光光度儀測(cè)定多糖和黃酮均采用文獻(xiàn)法,測(cè)定黃蜀葵中金絲桃苷采用2015版《中國(guó)藥典》中方法,方法簡(jiǎn)便、準(zhǔn)確、經(jīng)典,所得數(shù)據(jù)可靠。結(jié)果表明,黃蜀葵花多糖浸膏得率26.0%,多糖含量17.0%;黃蜀葵莖多糖浸膏得率12.3%,多糖含量11.6%;黃蜀葵葉多糖浸膏得率19.0%,多糖含量14.8%。黃蜀葵花黃酮浸膏得率30.5%,總黃酮含量3.45%;黃蜀葵莖黃酮浸膏得率10.0%,總黃酮含量0.68%;黃蜀葵葉黃酮浸膏得率16.5%,總黃酮含量1.05%。黃蜀葵花中金絲桃苷含量為1.86%,符合2015版《中國(guó)藥典》規(guī)定。黃蜀葵不同部位的多糖和黃酮含量存在較大差異,黃蜀葵莖和葉可以用于提取多糖,但不可替代黃蜀葵花使用。
[1]王茜,王啟之,時(shí)維靜,等.響應(yīng)面法與正交設(shè)計(jì)法優(yōu)化黃蜀葵總黃酮閃提工藝比較[J].安徽科技學(xué)院學(xué)報(bào),2015,29(5):24-31.
[2]章慶華.歙縣黃蜀葵高產(chǎn)栽培管理技術(shù)要點(diǎn)[J].農(nóng)村經(jīng)濟(jì)與科技,2013,24(6):177-178.
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[8]李春梅,王濤,張祎,等.中藥黃蜀葵花化學(xué)成分的分離與鑒定(Ⅰ)[J].沈陽藥科大學(xué)學(xué)報(bào),2010,27(9):711-714.
(責(zé)任編輯:馬世堂)
Comparison of Polysaccharides and Flavones Content in Abelmoschus Manihot Different Parts
CHEN Yun-xiang1, LIU Guo-gang2, CHEN Min1, SHI Wei-jing1*, WANG Qian1,DOU Jin-feng1
(1.College of Food and Drug, Anhui Science and Technology University, Fengyang 233100, China;2.Hangzhou Efuton Tea Limited Company, Hangzhou 310051,China)
Objective: To compare polysaccharides and flavones content in Abelmoschus manihot different parts. Methods: Polysaccharides and flavones of Abelmoschus manihot flower, stem and leaf were determined by UV. Hyperoside of Abelmoschus manihot was determined by HPLC. Results: The polysaccharide extract yield of flowers is 26.0% and polysaccharide content is 17.0%. The polysaccharide extract yield of stems is 12.3% and polysaccharide content is 11.6%. The polysaccharide extract yield of leaves is 19.0% and polysaccharide content is 14.8%. The flavones extract yield of flowers is 30.5% and flavones content is 3.45%. The flavones extract yield of stems is 10.0% and flavones content is 0.68%. The flavones extract yield of leaves is 16.5% and flavones content is 1.05%. Hyperoside in Abelmoschus manihot stems and leaves was not detected. Hyperoside content in Abelmoschus manihot flowers is 1.86%. Conclusion: There is a big difference of polysaccharides and flavones content in Abelmoschus manihot different parts. This test provides reference for the development and utilization of Abelmoschus manihot.
Abelmoschus Manihot; Different parts; Polysaccharide; Flavonoids
2016-06-01
省級(jí)大學(xué)生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)訓(xùn)練計(jì)劃項(xiàng)目(S10879CX33,108792015051);滁州市科技局“高校發(fā)明專利技術(shù)研究項(xiàng)目”(201305)。
陳云香(1994-),女,福建省泉州市人,在讀本科生,主要從事中藥及藥物制劑研究。*通訊作者:時(shí)維靜,教授,E-mail:shiwj@ahstu.edu.cn。
R927.2
A
1673-8772(2016)06-0050-04