簡 艷綜述 鈄方芳審校
·綜述與講座·
基因修飾DC疫苗在肺癌中的研究進(jìn)展
簡 艷綜述 鈄方芳審校
基因修飾;樹突細(xì)胞;肺癌
肺癌是我國發(fā)病率和死亡率最高的惡性腫瘤[1],大部分患者在確診時(shí)已處于中晚期,手術(shù)和放化療是肺癌的傳統(tǒng)治療模式。近年來,生物治療逐漸成為腫瘤的第四大治療模式,表皮生長因子受體酪氨酸激酶抑制劑為肺癌患者的生存帶來福音,以DC和CIK疫苗為基礎(chǔ)的主動(dòng)和過繼免疫治療也在臨床上取得了一定成績,但肺癌的5年生存率仍不足15%[2]。所以不斷探索肺癌的發(fā)病機(jī)制及尋找新的治療方式仍是攻克腫瘤的重要方向。以基因修飾的細(xì)胞免疫治療可從分子水平激活免疫應(yīng)答并重建機(jī)體免疫功能,對(duì)腫瘤干細(xì)胞或處于非增殖期的腫瘤細(xì)胞均有殺傷作用,是肺癌治療模式的重要補(bǔ)充手段[3]。DC作為目前唯一能激活未致敏初始型T細(xì)胞的APC,能特異性地識(shí)別遞呈腫瘤抗原,以特異性腫瘤基因轉(zhuǎn)染DC制作個(gè)體化疫苗,在基因水平上針對(duì)患者制定精準(zhǔn)化治療方案,以此免疫荷瘤宿主,激發(fā)高效的抗腫瘤免疫應(yīng)答,起到事半功倍的效果。本研究將具體描述基因修飾的DC疫苗在肺癌免疫治療中的發(fā)展。
DC來源于骨髓CD34+造血干細(xì)胞,因突起的偽足像樹枝,故命名為樹突狀細(xì)胞,根據(jù)來源不同分為淋巴系DC和髓系DC兩大類,淋巴系DC的前體與NK細(xì)胞、T細(xì)胞相同,髓系DC前體細(xì)胞與單核細(xì)胞和粒細(xì)胞相同[4]。根據(jù)成熟度不同DC功能有差異,未成熟的DC內(nèi)含重要細(xì)胞器,包括內(nèi)體或稱MHCⅡ類小室和溶酶體等,高表達(dá)補(bǔ)體、Toll樣受體,為DC攝取抗原提供結(jié)構(gòu)基礎(chǔ);當(dāng)未成熟DC攝取抗原后或受到某些因子刺激則分化為成熟DC,高表達(dá)共刺激因子(CD80、CD86、CD40、CD40L等)和粘附因子(IL12p35、IL12p40、IL12p70、IFN-γ等),獲得遞呈抗原(MHC-Ⅰ和MHC-Ⅱ)及活化T細(xì)胞的能力[5]。
2002年,Dunn等[6]在總結(jié)前人研究的基礎(chǔ)上,經(jīng)過大量基礎(chǔ)和臨床試驗(yàn)驗(yàn)證提出“腫瘤免疫編輯”假設(shè),認(rèn)為腫瘤形成在免疫應(yīng)答中分為3個(gè)階段:清除、平衡、逃逸,其中DC在免疫應(yīng)答中起到關(guān)鍵作用。在肺癌的發(fā)生發(fā)展中,當(dāng)宿主細(xì)胞發(fā)生癌變后,未成熟的DC經(jīng)趨化作用從外周血進(jìn)入腫瘤微環(huán)境,在腫瘤抗原刺激下形成成熟DC,上調(diào)抗原遞呈能力,高表達(dá)共刺激因子,攝取腫瘤抗原與MHC結(jié)合成MHC-抗原肽復(fù)合物作為第一活化信號(hào)激活初始T細(xì)胞使之活化分化成為T輔助細(xì)胞(Th)和細(xì)胞毒T淋巴細(xì)胞(CTL),從而啟動(dòng)體液免疫應(yīng)答消滅表達(dá)HLA多肽的癌變細(xì)胞[7];同時(shí)高表達(dá)IL-12、IL-6、TNF-a和IL-10,增強(qiáng)自然殺傷細(xì)胞的直接殺傷作用,作為第二活化信號(hào)增強(qiáng)機(jī)體對(duì)炎癥或腫瘤的免疫應(yīng)答[8]。DC分泌的趨化因子可專一性趨化初始型T細(xì)胞,促進(jìn)T細(xì)胞在腫瘤部位的聚集,增強(qiáng)T細(xì)胞激發(fā)相應(yīng)的免疫應(yīng)答[9]。然而,由于腫瘤細(xì)胞遺傳的不穩(wěn)定性及異質(zhì)性,可逃避DC識(shí)別和攝取,從而導(dǎo)致腫瘤細(xì)胞不斷增殖甚至轉(zhuǎn)移。有研究證實(shí):腫瘤細(xì)胞一般低表達(dá)或不表達(dá)MHCⅠ、MHCⅡ類分子和細(xì)胞黏附分子,同時(shí)釋放VEGF,TGF-β阻礙DC分化成熟,不利于加工形成MHC-抗原肽復(fù)合物,從而喪失抗原呈遞功能,最終出現(xiàn)腫瘤增殖及轉(zhuǎn)移[10]。 也有研究表明[11-12]:與正常組織相比,肺癌、喉癌和鼻咽癌等多種惡性腫瘤癌巢內(nèi)DC數(shù)目不足;與正常供體DC相比,從腫瘤分離得到的DC明顯缺乏抗原提呈功能,進(jìn)一步支持了該假說。
3.1 DC疫苗來源
目前用于臨床免疫治療的DC多來源于肺癌患者的外周血,亦可從骨髓、臍血中提取,但骨髓提取的有創(chuàng)性及臍血來源困難限制了使用;同時(shí)外周血淋巴系DC含量少,體外培養(yǎng)困難,故疫苗制作多來源于外周血的髓系DC。外周血分離出單個(gè)核細(xì)胞后,在白介素-4(IL-4)、粒細(xì)胞-巨噬細(xì)胞集落刺激因子(GM-CSF)和腫瘤壞死因子-α(TNF-α)的誘導(dǎo)下分化為成熟的DC。腫瘤抗原加載方式主要有抗原致敏和基因修飾兩種,抗原致敏主要是將腫瘤細(xì)胞的全部抗原信息或特異性抗原肽通過接觸融合共培養(yǎng)方式負(fù)載。這類疫苗制備方法簡便,容易實(shí)施,但非相關(guān)抗原量大且種類多,有誘發(fā)自身免疫性疾病危險(xiǎn)?;蛐揎検峭ㄟ^特異性基因轉(zhuǎn)染方式改變DC的遺傳表達(dá),精準(zhǔn)個(gè)體化的提呈腫瘤抗原,避免了上述缺點(diǎn)。沈晨陽等[13]研究發(fā)現(xiàn):單純的熱休克蛋白gp96-肽復(fù)合物/DC疫苗較腫瘤細(xì)胞粗提物/DC 疫苗誘導(dǎo)的淋巴細(xì)胞分泌產(chǎn)生更高的IFN-γ和更強(qiáng)烈的抗腫瘤免疫應(yīng)答,究其原因?yàn)槟[瘤細(xì)胞粗提物特異性不高或者丟失導(dǎo)致,進(jìn)一步證明特異性的腫瘤抗原修飾DC疫苗效果更佳。
3.2 基因轉(zhuǎn)染樹突細(xì)胞的方式
3.2.1 物理化學(xué)法 物理法常用為顯微注射法及電穿孔法,化學(xué)法常用如DNA-磷酸鈣共沉淀法、二乙基氨基乙基-葡聚糖法、聚陽離子-二甲基亞砜法等,上述兩種轉(zhuǎn)染技術(shù)易于操作,具有可重復(fù)性,對(duì)靶細(xì)胞的影響因素少,但轉(zhuǎn)染率相對(duì)不高。
3.2.2 非病毒基因轉(zhuǎn)移法 將目的基因以非病毒載體包裝攜帶,通過細(xì)胞膜內(nèi)吞或膜溶合的方式將基因組導(dǎo)入靶細(xì)胞。常用試劑如陽離子脂質(zhì)體和陽離子聚合物。它無免疫原性,且不攜帶致病基因,對(duì)負(fù)載的DNA大小不限制,可負(fù)荷RNA、核糖體及其他大分子物質(zhì)。Zou等[14]將負(fù)載在陽離子脂質(zhì)體上的p53用于肺癌的基因治療,發(fā)現(xiàn)不管在體內(nèi)還是體外實(shí)驗(yàn)中均可使腫塊縮小,但脂質(zhì)體的靶向性欠佳。
3.2.3 病毒載體轉(zhuǎn)染法 以病毒作為載體將目的基因轉(zhuǎn)染至靶細(xì)胞染色體從而獲得持續(xù)表達(dá),常用如:逆轉(zhuǎn)錄病毒載體、腺病毒以及單純皰疹病毒等。病毒載體可承載比較大的外源基因,同時(shí)高表達(dá)多個(gè)目的基因,轉(zhuǎn)染率較非病毒載體和物理化學(xué)法高,目的基因可持續(xù)表達(dá),是目前常用的轉(zhuǎn)染方式之一。Lin等[15]使用慢病毒作為MAGE-A3基因載體轉(zhuǎn)染DC,發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染率高達(dá)(80±2.5)%,轉(zhuǎn)染后DC疫苗高表達(dá)CD80、CD86、HLA-DR,對(duì)表達(dá)MAGE-A3抗原的細(xì)胞株具有殺傷作用。
4.1 基因修飾DC疫苗治療肺癌的優(yōu)勢(shì)
基因修飾DC疫苗相較于傳統(tǒng)的DC疫苗治療肺癌具有如下優(yōu)勢(shì):①基因轉(zhuǎn)染后DC疫苗能表達(dá)全蛋白序列,包含所有抗原位點(diǎn),相較于單純的外源性刺激能更有效地進(jìn)行抗原遞呈;②表達(dá)抗原時(shí)間更持久,增強(qiáng)抗原提呈能力,同時(shí)高表達(dá)共刺激因子和細(xì)胞因子的能力,對(duì)抗腫瘤細(xì)胞的抑制作用,具有更強(qiáng)的激發(fā)免疫應(yīng)答反應(yīng)能力;③病毒載體轉(zhuǎn)染后刺激DC細(xì)胞成熟并延長存活時(shí)間,增強(qiáng)免疫應(yīng)答;④基因修飾DC疫苗表達(dá)抗原精準(zhǔn),不含有正常人體抗原,不易誘發(fā)自身免疫疾病?;蛐揎桪C疫苗的高效性和安全性奠定了其在臨床腫瘤治療中的地位。
4.2 基因修飾DC疫苗在肺癌中的臨床轉(zhuǎn)化研究
肺癌的發(fā)生發(fā)展是一個(gè)多因素多階段過程,其中外界理化因素是誘因,不同癌基因上調(diào)表達(dá)或抑癌基因突變、異常甲基化及缺失被認(rèn)為是不同病理類型肺癌發(fā)生的早期分子事件?;诨蛩降母淖?,我們通過改造DC疫苗特異性呈遞腫瘤抗原,達(dá)到殺傷腫瘤細(xì)胞的功效。有研究發(fā)現(xiàn)15%~20%的非小細(xì)胞肺癌患者存在RAS原癌基因突變,其中90%為K-RAS基因突變[16]。Zhao等[17]通過動(dòng)物實(shí)驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn):K-ras 基因修飾的DC 疫苗相較于單純DC疫苗組能更快更高效地縮小荷瘤小鼠腫塊。針對(duì)約有50%以上的非小細(xì)胞肺癌出現(xiàn)抑癌P53基因突變[18],有人評(píng)估了腺病毒轉(zhuǎn)染特異性基因P53的DC疫苗在肺癌中的療效和安全性,Ⅰ/Ⅱ期臨床試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)納入的40%~50%患者有良好的抗腫瘤免疫應(yīng)答,且無不良反應(yīng);Ⅲ期臨床試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)回輸P53/DC疫苗有效率和進(jìn)展率分別為78.6%和33.3%,進(jìn)一步證實(shí)了特異性表達(dá)腫瘤抗原的DC疫苗的有效性和安全性[19]。細(xì)胞因子可使免疫細(xì)胞趨向癌巢中心,促進(jìn)DC識(shí)別抗原并高表達(dá)共刺激分子,在抗腫瘤免疫應(yīng)答中具有重要作用,Morandi等[20]研究發(fā)現(xiàn),細(xì)胞因子修飾的DC疫苗能夠持續(xù)表達(dá)并增強(qiáng)抗腫瘤免疫應(yīng)答。陳吉泉等[21]研究發(fā)現(xiàn)IL-12基因修飾的DC疫苗可增強(qiáng)NK活性,更加高效地激發(fā)CTL抗腫瘤免疫應(yīng)答。癌胚抗原(CEA)作為肺癌早期篩查的一個(gè)指標(biāo),側(cè)面反映腫瘤的活動(dòng)程度,吳軍等[22]利用癌胚抗原重組痘苗病毒(rV-CEA)轉(zhuǎn)染樹突狀細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染了rV-CEA的DC疫苗表面高表達(dá)MHC-CEA抗原肽復(fù)合物、共刺激分子和細(xì)胞間粘附分子,高效地誘導(dǎo)免疫應(yīng)答對(duì)抗分泌性CEA的腫瘤細(xì)胞。Ishikawa等[23]臨床Ⅰ期研究發(fā)現(xiàn)半乳糖?;拾贝夹揎椀腄C疫苗針對(duì)進(jìn)展期肺癌有一定的治療作用,且無不良應(yīng)出現(xiàn)。CK19在肺癌中高表達(dá),通過慢病毒將CK19轉(zhuǎn)染至DC疫苗相較單純DC疫苗,能夠更高效地縮小荷瘤小鼠肺癌腫塊[24]。
4.3 基因修飾DC疫苗治療肺癌的不足
特異性基因修飾DC疫苗治療肺癌具有廣泛的前景,但仍存在不足之處。首先,基因工程制作的高耗時(shí)耗費(fèi)在經(jīng)濟(jì)上存在一定的發(fā)展限制,仍需探索更高效簡便安全的基因轉(zhuǎn)染技術(shù)。其次,病毒轉(zhuǎn)染DC后可能出現(xiàn)基因重組或互補(bǔ)致表達(dá)異常,具有潛在的致病危險(xiǎn)。Zhang等制作了一種新型的溶瘤腺病毒疫苗:使用端粒反轉(zhuǎn)錄酶促進(jìn)溶瘤腺病毒進(jìn)行抗癌作用,單純皰疹病毒腺苷激酶作為自殺基因控制溶瘤腺病毒的存亡,在體內(nèi)外實(shí)驗(yàn)中證實(shí)了該新型疫苗的有效性和安全性[25],可能克服DC疫苗病毒轉(zhuǎn)染后的不良反應(yīng)。
總之,基因表達(dá)異常是細(xì)胞癌變的原因之一,從分子水平上尋找新的治療途徑是目前肺癌治療的研究熱點(diǎn),特異性基因修飾DC疫苗具有精準(zhǔn)的靶向性和強(qiáng)大的抗原遞呈能力,達(dá)到個(gè)體化免疫殺傷治療,具有可靠的理論基礎(chǔ)和成功的臨床前期試驗(yàn)基礎(chǔ),是目前理想的、有希望的治療途徑之一。但由于基因工程的耗費(fèi)、技術(shù)的限制及可能存在的細(xì)胞免疫治療不良反應(yīng)限制了其發(fā)展,廣泛應(yīng)用于臨床仍需更嚴(yán)謹(jǐn)?shù)囊呙缭O(shè)計(jì)和樣本量更大的臨床前期探索。
[1] Chen W,Zheng R,Baade P D,et al.Cancer statistics in China,2015〔J〕. CA Cancer J Clin,2016,66(2):115-132.
[2] Vansteenkiste J,De Ruysscher D,Eberhardt WEE,et al.Early and locally advanced non-small-cell lung cancer (NSCLC): ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis,treatment and follow-up〔J〕.Ann Oncol,2013,24(suppl 6):i89-i98.
[3] Reck M.What future opportunities may immuno-oncology provide for improving the treatment of patients with lung cancer?〔J〕.Ann Oncol,2012,23(suppl 8):i28-i34.
[4] Merad M,Sathe P,Helft J,et al.The dendritic cell lineage:ontogeny and function of dendritic cells and their subsets in the steady state and the inflamed setting〔J〕.Annu Rev Immunol,2013,31(1):563-604.
[5] 王克玲,郭 力,施榮富,等.成熟與未成熟小鼠樹突狀細(xì)胞的生物免疫學(xué)特性研究〔J〕.中華醫(yī)學(xué)雜志,2011,91(45):3225-3228.
[6] Dunn GP,Bruce AT,Ikeda H,et al.Cancer immunoediting: from immuno- surveillance to tumor escape〔J〕.Nat Immunol,2002,3(11):991-998.
[7] Klechevsky E,Morita R,Liu M,et al.Functional specializations of human epidermal langerhans cells and CD14+ dermal dendritic cells〔J〕.Immunity,2008,29(3):497-510.
[8] MacDonald KPA.Characterization of human blood dendritic cell subsets〔J〕.Blood,2002,100(13):4512-4520.
[9] Morse MA,Mosca PJ,Clay TM,et al.Dendritic cell maturation in active immunotherapy strategies〔J〕.Expert Opin Biol Ther,2002,2(1):35-43.
[10] Ma Y,Aymeric L,Locher C,et al.The dendritic cell-tumor cross-talk in cancer〔J〕.Curr Opin Immunol,2011,23(1):146-152.
[11] Perrot I,Blanchard D,F(xiàn)reymond N,et al.Dendritic cells infiltrating human non-small cell lung cancer are blocked at immature stage1〔J〕.J Immunol,2007,178(5):2763-2769.
[12] Gigante M,Blasi A,Loverre A,et al.Dysfunctional DC subsets in RCC patients: Ex vivo correction to yield an effective anti-cancer vaccine〔J〕.Mol Immunol,2009,46(5):893-901.
[13] 沈晨陽,劉 軍,王丹蕾,等.肺癌gp96-多肽復(fù)合物/DC疫苗體外誘導(dǎo)CTL反應(yīng)的實(shí)驗(yàn)研究〔J〕.中國肺癌雜志,2002,5(6):435-439.
[14] Zou Y,Zong G,Ling Y,et al.Development of cationic liposome formulations for intratracheal gene therapy of early lung cancer〔J〕.Cancer Gene Ther,2000,7(5):683-696.
[15] Lin L,Wei J,Chen Y,et al.Induction of antigen-specific immune responses by dendritic cells transduced with a recombinant lentiviral vector encoding MAGE-A3 gene〔J〕.J Cancer Res Clin Oncol,2014,140(2):281-289.
[16] Mascaux C,Iannino N,Martin B,et al.The role of RAS oncogene in survival of patients with lung cancer: a systematic review of the literature with meta-analysis〔J〕.Br J Cancer,2005,92(1):131-139.
[17] Zhao F,Zhou QH,Lu YR,et al.In vitro anti-tumor immune response induced by dendritic cells transfected with recombinant adenovirus carrying mutant k-ras genes〔J〕.J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci,2005,25(4):378-381.
[18] Steven AA,Hu Y,Buta M,et al.p53 Mutations and survival in stage Ⅰ non-small-cell lung cancer:results of a prospective study〔J〕.J Natl Cancer Inst,2003,95(13):961-970.
[19] Chiappori AA,Soliman H,Janssen WE,et al.INGN-225: a dendritic cell-based p53 vaccine (Ad.p53-DC) in small cell lung cancer: observed association between immune response and enhanced chemotherapy effect〔J〕.Expert Opinion on Biological Therapy,2010,10(6):983-991.
[20] Morandi F,Chiesa S,Bocca P,et al.Tumor mRNA-Transfected dendritic cells stimulate the generation of CTL that recognize neuroblastoma-associated antigens,kill tumor cells:immunotherapeutic implications〔J〕.Neoplasia,2006,8(10):833-842.
[21] 陳吉泉,修清玉,沈 策,等.白介素12基因修飾的樹突細(xì)胞疫苗治療自發(fā)性轉(zhuǎn)移性肺癌〔J〕.癌癥,2002,21(12):1328-1331.
[22] 吳 軍,楊太成,王曉懷,等.人癌胚抗原重組痘苗病毒轉(zhuǎn)染樹突狀細(xì)胞體外誘導(dǎo)的抗腫瘤免疫〔J〕.中華微生物學(xué)和免疫學(xué)雜志,2003,23(1):27-30.
[23] Ishikawa A,Motohashi S,Ishikawa E,et al.A phase Ⅰ study of a-galactosylceramide (KRN7000)-pulsed dendritic cells in patients with advanced and recurrent non-small cell lung cancer〔J〕.Clinical Cancer Research,2005,11(5):1910-1917.
[24] Sun QF,Zhao XN,Peng CL,et al.Immunotherapy for Lewis lung carcinoma utilizing dendritic cells infected with CK19 gene recombinant adenoviral vectors〔J〕.2015,34(5):2289-2295.
[25] Zhang JF,Wei F,Wang HP,et al.Potent anti-tumor activity of telomerase-dependent and HSV-TK armed oncolytic adenovirus for non-small cell lung cancer in vitro and in vivo〔J〕.J Exp Clin Cancer Res,2010,29:52.
江西省科技廳重大創(chuàng)新項(xiàng)目(編號(hào):20143ACG70020)
330000 南昌大學(xué)醫(yī)學(xué)院(簡 艷);330029 江西省腫瘤醫(yī)院(鈄方芳)
鈄方芳
10.3969/j.issn.1001-5930.2017.10.052
R734.2
B
1001-5930(2017)10-1735-03
2017-02-14
2017-03-23)
(編輯甘艷)