• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      系統(tǒng)性紅斑狼瘡并發(fā)動(dòng)脈粥樣硬化的免疫機(jī)制研究進(jìn)展

      2017-04-05 09:49:41沈正東于慧敏王俊婷
      山東醫(yī)藥 2017年22期
      關(guān)鍵詞:內(nèi)皮粒細(xì)胞硬化

      沈正東,于慧敏,王俊婷

      (哈爾濱醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院,哈爾濱150086)

      系統(tǒng)性紅斑狼瘡并發(fā)動(dòng)脈粥樣硬化的免疫機(jī)制研究進(jìn)展

      沈正東,于慧敏,王俊婷

      (哈爾濱醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院,哈爾濱150086)

      系統(tǒng)性紅斑狼瘡(SLE)患者動(dòng)脈粥樣硬化發(fā)生率明顯高于健康人群,心腦血管疾病仍是其晚期死亡的主要原因。除了傳統(tǒng)因素的作用外,免疫系統(tǒng)也參與其中。與健康人群相比,SLE患者血清中存在大量表型及功能異常的中性粒細(xì)胞、巨噬細(xì)胞以及淋巴細(xì)胞,同時(shí)大量存在的凋零細(xì)胞可以作為自身抗原,異常免疫細(xì)胞過度活化,對(duì)自身抗原的呈遞和識(shí)別能力增強(qiáng),耐受性減弱,加快了炎性因子如干擾素1的釋放,進(jìn)而造成了慢性炎癥,使內(nèi)皮細(xì)胞受到損傷,加速動(dòng)脈粥樣硬化的形成。

      系統(tǒng)性紅斑狼瘡;動(dòng)脈粥樣硬化;中性粒細(xì)胞;巨噬細(xì)胞;淋巴細(xì)胞;干擾素1

      系統(tǒng)性紅斑狼瘡(SLE)是一種自身免疫介導(dǎo)的慢性炎癥性疾病,好發(fā)于育齡女性,常累及腎臟、皮膚、關(guān)節(jié)、血液和神經(jīng)等。近年來,隨著診治水平的提高,SLE患者早期的病死率大大減少,但心血管疾病仍然是SLE患者晚期死亡的主要原因之一。有研究[1]發(fā)現(xiàn),35~44歲的SLE女性心肌梗死的發(fā)病率比同齡女性高50倍。慢性的內(nèi)皮損傷是動(dòng)脈粥樣硬化形成的關(guān)鍵。氧化低密度脂蛋白(ox-LDL)在內(nèi)皮下沉積造成內(nèi)皮損傷,進(jìn)而促進(jìn)趨化因子的釋放,和T淋巴細(xì)胞、單核細(xì)胞、樹突細(xì)胞的聚集均在動(dòng)脈粥樣硬化中發(fā)揮關(guān)鍵作用。細(xì)胞調(diào)節(jié)、細(xì)胞因子、免疫復(fù)合物、激素的使用在引發(fā)SLE患者心腦血管疾病的過程中起重要作用,心腦血管疾病的

      發(fā)生發(fā)展離不開免疫機(jī)制的調(diào)節(jié),這提示SLE與動(dòng)脈粥樣硬化在免疫機(jī)制中存在關(guān)聯(lián)性。凋零細(xì)胞清除障礙、Th1細(xì)胞功能失調(diào)、B細(xì)胞活化及ox-LDL被認(rèn)為是兩者共同的機(jī)制[2]。現(xiàn)就SLE并發(fā)動(dòng)脈粥樣硬化的免疫機(jī)制研究進(jìn)展綜述如下。

      1 中性粒細(xì)胞在SLE并發(fā)動(dòng)脈粥樣硬化中的作用

      中性粒細(xì)胞是機(jī)體天然免疫系統(tǒng)的主要效應(yīng)器細(xì)胞,被激活后可釋放多肽及活性氧達(dá)到抗菌作用。其中S100A8、S100A9、S100A8/A9蛋白在中性粒細(xì)胞內(nèi)大量存在,與Toll樣受體結(jié)合后誘發(fā)炎癥反應(yīng)。最近研究[3,4]表明,S100A8/A9蛋白在SLE患者血液中高于普通人群,且與心血管危險(xiǎn)因素和心血管事件呈正相關(guān)。中性粒細(xì)胞除了吞噬和脫顆粒作用外,還可以通過向細(xì)胞外釋放含有染色質(zhì)和肽類的纖維——細(xì)胞外網(wǎng)絡(luò)(NET)發(fā)揮更強(qiáng)的抗菌作用,加速自身死亡。NET通過MMP-9和組蛋白對(duì)內(nèi)皮細(xì)胞產(chǎn)生很強(qiáng)的細(xì)胞毒性,造成內(nèi)皮功能失調(diào)、內(nèi)皮細(xì)胞凋亡及血栓形成[5,6]。并且NET可以通過氧化機(jī)制修飾高密度脂蛋白,使其產(chǎn)生促動(dòng)脈粥樣硬化作用[7]。在SLE患者中,NET通過TLR9激活漿細(xì)胞樣樹突細(xì)胞誘導(dǎo)產(chǎn)生干擾素α(IFN-α),大量的IFN-α進(jìn)一步促進(jìn)中性粒細(xì)胞產(chǎn)生NET,形成惡性循環(huán)。抑制NET形成可以改善血管功能、降低斑塊形成和清除血栓[8]。具有更強(qiáng)抗菌作用的低密度粒細(xì)胞(LDG)被視為中性粒細(xì)胞的一個(gè)特殊類型,首次在SLE患者血清中被發(fā)現(xiàn),其形成機(jī)制尚不清楚。LDG形成NET的能力更強(qiáng),較中性粒細(xì)胞合成更多種類的炎性因子,在SLE炎癥反應(yīng)中起重要作用。

      2 巨噬細(xì)胞在SLE并發(fā)動(dòng)脈粥樣硬化中的作用

      單核細(xì)胞在先天免疫及后天免疫中發(fā)揮重要作用,遷移到組織后變?yōu)橥淌赡芰Ω鼜?qiáng)的巨噬細(xì)胞。巨噬細(xì)胞通過清除凋零細(xì)胞和對(duì)骨的再吸收維持正常的組織內(nèi)環(huán)境。巨噬細(xì)胞表面存在多種受體,通過識(shí)別病原體相關(guān)分子模式分泌多種炎性因子。M2型巨噬細(xì)胞可優(yōu)先清除凋亡細(xì)胞并且抑制炎癥,M1型巨噬細(xì)胞則特異性分泌炎性因子。在自身免疫功能紊亂的疾病中,巨噬細(xì)胞的表型及功能會(huì)出現(xiàn)異常。SLE患者血清中巨噬細(xì)胞對(duì)凋零細(xì)胞的吞噬能力下降,導(dǎo)致大量凋零細(xì)胞沉積,激活免疫應(yīng)答[9],促進(jìn)動(dòng)脈粥樣硬化形成[2]。然而,小鼠狼瘡性腎炎的研究證明,免疫復(fù)合物的存在足以激活巨噬細(xì)胞發(fā)揮功能[10]。以上研究表明,巨噬細(xì)胞吞噬作用的發(fā)揮,與抗原的類型、細(xì)胞不同表型及免疫失調(diào)有密切關(guān)系,然而其機(jī)制尚不完全清楚。巨噬細(xì)胞可以通過胞飲形式吞噬ox-LDL,過多的脂質(zhì)沉積在巨噬細(xì)胞中形成泡沫細(xì)胞。CD36可以增加巨噬細(xì)胞對(duì)ox-LDL的吞噬作用。用SLE患者的血清培養(yǎng)出來的巨噬細(xì)胞,CD36表達(dá)明顯增強(qiáng),可加速泡沫細(xì)胞的形成,引起早期動(dòng)脈粥樣硬化。通過抑制CD36的表達(dá)可以減輕抗磷脂抗體誘導(dǎo)的組織因子表達(dá)[11]。廣泛表達(dá)于抗原遞呈細(xì)胞表面(如巨噬細(xì)胞)的Fcγ受體(FcγR)參與了細(xì)胞吞噬、細(xì)胞溶解、脫顆粒及炎性因子的誘導(dǎo)。其中FCγRⅢ及FCγRⅠ可以誘導(dǎo)炎癥產(chǎn)生,F(xiàn)CγRⅡ起到抑制通路作用。Gamma chain作為FCγRⅠ和FCγRⅢ上的多聚受體,在促炎方面起重要作用。去除γ-chain的Fc受體可以抑制動(dòng)脈粥樣的形成。FCγRⅡb的缺乏不僅可增加SLE的患病率,而且可以加速動(dòng)脈粥樣硬化進(jìn)展。然而最新研究表明,去除FcγRⅡbB6基因的小鼠明顯減緩了動(dòng)脈粥樣硬化的形成[12]。提示巨噬細(xì)胞的表型及功能的異常在SLE發(fā)生動(dòng)脈粥樣硬化過程中起重要作用,具體機(jī)制仍需進(jìn)一步探索。

      3 淋巴細(xì)胞在SLE并發(fā)動(dòng)脈粥樣硬化中的作用

      B細(xì)胞與T細(xì)胞是人體免疫中的重要環(huán)節(jié),兩者相互作用在SLE的發(fā)生、發(fā)展中起到了重要作用。近年來越來越多的研究發(fā)現(xiàn),動(dòng)脈粥樣硬化的形成與獲得性免疫有密切的關(guān)系[13]。

      B細(xì)胞通過體液免疫、抗原呈遞及產(chǎn)生炎性因子在SLE及動(dòng)脈粥樣硬化中發(fā)揮著重要作用。SLE患者B細(xì)胞自身免疫耐受的缺失促進(jìn)了B細(xì)胞的增殖與活化。B細(xì)胞的缺乏可以增加動(dòng)脈粥樣硬化,提示B細(xì)胞在動(dòng)脈粥樣硬化形成中起保護(hù)作用。B細(xì)胞主要的功能之一是分泌免疫球蛋白M(IgM)。IgM在抗動(dòng)脈粥樣硬化中起重要作用[14]。研究[15]發(fā)現(xiàn)抗磷酸膽堿的IgM抗體和抗丙二醛的IgM抗體可以作為動(dòng)脈粥樣硬化形成過程中的保護(hù)性指標(biāo)。SLE患者的血清中存在大量分泌IgM較少的CD11b+B1細(xì)胞,其可誘導(dǎo)CD4+T細(xì)胞的增殖,使SLE病情惡化。B2細(xì)胞對(duì)動(dòng)脈粥樣硬化形成作用的雙向性可能與細(xì)胞不同的數(shù)量、不同的遺傳背景及不同的表型有關(guān)[16]。動(dòng)物研究發(fā)現(xiàn),抗CD20抗體可通過清除B2細(xì)胞減輕動(dòng)脈粥樣硬化,但仍缺少臨床研究。對(duì)B細(xì)胞分型的研究可以進(jìn)一步揭示SLE動(dòng)脈粥樣硬化發(fā)生的機(jī)制。調(diào)節(jié)性B(Breg)細(xì)胞通過分泌IL-10、轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子及凋亡因子發(fā)揮抗動(dòng)脈粥樣硬化作用。動(dòng)物及臨床研究都提示,Breg細(xì)胞可以抑制炎癥及自身免疫性疾病。在SLE患者中,CD24+CD38hiBreg細(xì)胞功能存在缺失,導(dǎo)致IL-10分泌減少,對(duì)Th1細(xì)胞分化的抑制減弱。Menon等[17]研究發(fā)現(xiàn),SLE患者中CD24+CD38hiBreg細(xì)胞數(shù)量減少,其數(shù)量減少可以導(dǎo)致IFN-α升高,而IFN-α在SLE患者血栓形成、內(nèi)皮損傷及促進(jìn)動(dòng)脈粥樣硬化方面起到關(guān)鍵作用。上述研究提示在SLE患者體內(nèi)CD24+CD38hiBreg可能在質(zhì)和量?jī)蓚€(gè)方面受到損傷,從而促進(jìn)動(dòng)脈粥樣硬化的形成。

      T細(xì)胞在SLE患者并發(fā)動(dòng)脈粥樣進(jìn)程中發(fā)揮的作用受到了越來越多的重視,雖然具體機(jī)制尚不清楚,但大量的研究表明可能的機(jī)制包括CD40-CD40L信號(hào)通路過度活化、轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β與調(diào)節(jié)性T(Treg)細(xì)胞的減少、Th1和Th17的活化與增多等。輔助性T細(xì)胞17(Th17)與其分泌的IL-17在動(dòng)脈粥樣硬化中發(fā)揮重要作用。IL-17對(duì)動(dòng)脈粥樣硬化的形成可能起雙向作用。Th1有明顯加速動(dòng)脈粥樣硬化的作用,Th17與Treg功能的失調(diào)在動(dòng)脈粥樣硬化中同樣存在。SLE患者Th17與IL-17的數(shù)量增多[18,19],并與疾病活動(dòng)有關(guān)。研究發(fā)現(xiàn)SLE患者Th17/Th1升高、Treg/Th17降低[20,21],各種原因引起的氧化應(yīng)激是造成SLE患者Th17與Treg細(xì)胞功能性失調(diào)的主要原因[22]。合并動(dòng)脈粥樣硬化的SLE患者Th17的血清水平明顯高于不合并動(dòng)脈粥樣硬化的SLE患者及健康人群,Treg細(xì)胞的結(jié)果則與Th17相反[23]。提示Th17及Treg細(xì)胞的功能失調(diào)在SLE及動(dòng)脈粥樣硬化的促進(jìn)作用。Treg可以通過協(xié)調(diào)后天免疫,抑制特異性抗原免疫應(yīng)答,從而起到抗炎、抗動(dòng)脈粥樣硬化的作用[24]。Treg在動(dòng)脈粥樣硬化的初期可以抑制炎癥反應(yīng),在恢復(fù)期可以起到促進(jìn)動(dòng)脈損傷的恢復(fù)。SLE患者Treg數(shù)量及功能均受到損傷,但有研究發(fā)現(xiàn)活動(dòng)期SLE患者Treg在外周血的數(shù)量比穩(wěn)定期SLE及健康人群中的數(shù)量明顯增多,其原因可能與檢測(cè)Treg的不同亞型有關(guān)[25]?;顒?dòng)期SLE患者CD8+Treg細(xì)胞不能發(fā)揮抑制效應(yīng)T細(xì)胞的作用,而非活動(dòng)期SLE患者CD8+Treg可以發(fā)揮抑制效應(yīng)T細(xì)胞的作用,提示活動(dòng)期SLE患者發(fā)生心腦血管意外的風(fēng)險(xiǎn)增加。

      SLE患者T細(xì)胞受體的異常表達(dá),補(bǔ)償?shù)幕钚酝ǖ酪约跋掠涡盘?hào)的激活導(dǎo)致共刺激因子中CD40L表達(dá)增加。CD40L和表達(dá)在B細(xì)胞上的CD40相互作用,發(fā)揮促進(jìn)B細(xì)胞分化及增殖,抗體生成以及類別轉(zhuǎn)化的作用[26]。CD40-CD40L與動(dòng)脈粥樣硬化和代謝綜合征有著密切關(guān)系[27],CD40-CD40L協(xié)同刺激通路的紊亂可以減輕動(dòng)脈粥樣硬化,并誘導(dǎo)形成穩(wěn)定的動(dòng)脈斑塊。一項(xiàng)臨床研究發(fā)現(xiàn),他汀類藥物可以降低穩(wěn)定型心絞痛患者CD40L的表達(dá)[28]。T細(xì)胞上脂質(zhì)筏的異常聚集也是SLE發(fā)病的重要機(jī)制,他汀類藥物可以通過破壞脂質(zhì)筏,達(dá)到抑制異常信號(hào)的傳導(dǎo)的作用。這些都為臨床中應(yīng)用他汀類治療SLE并發(fā)動(dòng)脈粥樣硬化提供了可能的依據(jù)。

      4 干擾素1(IFN-1)在SLE并發(fā)動(dòng)脈粥樣硬化中的作用

      IFN-1主要由pDC和LDGs產(chǎn)生,在SLE及動(dòng)脈粥樣硬化中發(fā)揮重要作用。IFN-1通過抑制內(nèi)皮祖細(xì)胞(EPCs)、循環(huán)生血管細(xì)胞(CAC)、血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子,IL-1β抑制血管修復(fù),抑制Treg,促進(jìn)Th1,直接刺激B細(xì)胞誘導(dǎo)形成抗原呈遞細(xì)胞,并且可以通過誘導(dǎo)趨化因子受體的表達(dá)等方式造成免疫紊亂,激發(fā)并加重炎癥產(chǎn)生,破壞血管內(nèi)皮[29]。SLE患者血清中IFN及IFN誘導(dǎo)基因表達(dá)升高,這個(gè)現(xiàn)象被稱為“IFN信號(hào)”。包含核酸的免疫復(fù)合物及自體核酸被認(rèn)為是SLE患者體內(nèi)內(nèi)源性的IFN誘導(dǎo)物,增加IFN的釋放[30]。近年來IFN-α在動(dòng)脈粥樣硬化中的作用研究越來越多,在動(dòng)脈粥樣硬化早期可以引起血管內(nèi)皮功能失調(diào),趨化炎性細(xì)胞增加動(dòng)脈斑塊損傷促進(jìn)血栓形成,加速單核細(xì)胞對(duì)脂質(zhì)的攝取進(jìn)而形成泡沫細(xì)胞,促進(jìn)細(xì)胞凋亡[ 31]。在動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),去除IFN-1受體基因可以改善狼瘡傾向大鼠血管內(nèi)皮的舒張功能,改善其EPCs的數(shù)量和功能,并加速其新血管的生成[32]。臨床研究也證實(shí),IFN-α是SLE患者動(dòng)脈粥樣硬化形成的重要因素[29]。抗瘧藥物長(zhǎng)期用于SLE的治療,并且在SLE患者動(dòng)脈粥樣硬化形成過程中起保護(hù)作用。環(huán)形GMP-AMP合酶是刺激IFN-β產(chǎn)生的必要物質(zhì),抗瘧藥物可以抑制環(huán)形GMP-AMP合酶與DNA的相互作用,進(jìn)而抑制IFN-β的產(chǎn)生[33]。最新研究發(fā)現(xiàn)青蒿酯可以抑制IFN誘導(dǎo)基因的表達(dá),抑制移動(dòng)抑制因子的產(chǎn)生,從而達(dá)到治療SLE動(dòng)脈粥樣硬化的目的[34]。這些為抗瘧藥物應(yīng)用于SLE相關(guān)動(dòng)脈粥樣硬化的治療提供了有力支持。

      目前心血管疾病仍是SLE晚期死亡的主要原因,在控制傳統(tǒng)動(dòng)脈粥樣硬化危險(xiǎn)因素的同時(shí),尋找SLE并發(fā)動(dòng)脈粥樣硬化的機(jī)制已經(jīng)成為研究的熱點(diǎn)。對(duì)SLE患者早期發(fā)現(xiàn)、及早治療和有效管理仍是目前臨床控制SLE并發(fā)動(dòng)脈粥樣硬化的主要措施。他汀類藥物及抗瘧藥物的應(yīng)用在控制SLE并發(fā)的動(dòng)脈粥樣硬化中有積極意義。

      [1] Urowitz MB, Gladman DD, Anderson NM, et al. Cardiovascular events prior to or early after diagnosis of systemic lupus erythematosus in the systemic lupus international collaborating clinics cohort[J]. Lupus Sci Med, 2016,3(1):e000143.

      [2] Wigren M, Nilsson J, Kaplan MJ. Pathogenic immunity in systemic lupus erythematosus and atherosclerosis: common mechanisms and possible targets for intervention[J]. J Intern Med, 2015, 278(5): 494-506.

      [3] Cotoi OS, Dunér P, Ko, N, et al. Plasma S100A8/A9 correlates with blood neutrophil counts, traditional risk factors, and cardiovascular disease in middle-aged healthy individuals[J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2014,34(1):202-210.

      [4] Tydén H, Lood C, Gullstrand B, et al. Increased serum levels of S100A8/A9 and S100A12 are associated with cardiovascular disease in patients with inactive systemic lupus erythematosus[J]. Rheumatology (Oxford), 2013,52(11):2048-2055.

      [5] Carmona-Rivera C, Zhao W, Yalavarthi S, et al. Neutrophil extracellular traps induce endothelial dysfunction in systemic lupus erythematosus through the activation of matrix metalloproteinase-2[J]. Ann Rheum Dis, 2015,74(7):1417-1424.

      [6] Saffarzadeh M, Juenemann C, Queisser MA, et al. Neutrophil extracellular traps directly induce epithelial and endothelial cell death: a predominant role of histones[J]. PLoS One, 2012,7(2):e32366.

      [7] Smith CK, Vivekanandan-Giri A, Tang C, et al. Neutrophil extracellular trap-derived enzymes oxidize high-density lipoprotein: an additional proatherogenic mechanism in systemic lupus erythematosus[J]. Arthritis Rheumatol, 2014, 66(9): 2532-2544.

      [8] Knight JS, Subramanian V, O′Dell AA, et al. Peptidylarginine deiminase inhibition disrupts NET formation and protects against kidney, skin and vascular disease in lupus-prone MRL/lpr mice[J]. Ann Rheum Dis, 2015,74(12):2199-2206.

      [9] Gaipl US, Munoz LE, Grossmayer G, et al. Clearance deficiency and systemic lupus erythematosus (SLE)[J]. J Autoimmun, 2007,28(2):114-121.

      [10] Bergtold A, Gavhane A, D′Agati V, et al. FcR-bearing myeloid cells are responsible for triggering murine lupus nephritis[J]. J Immunol, 2006,177(10):7287-7295.

      [11] Kato M, Atsumi T, Oku K, et al. The involvement of CD36 in monocyte activation by antiphospholipid antibodies[J]. Lupus, 2013,22(8):761-771.

      [12] Ng HP, Zhu X, Harmon EY, et al. Reduced Atherosclerosis in apoE-inhibitory FcbγRⅡb-Deficient Mice Is Associated With Increased Anti-Inflammatory Responses by T Cells and Macrophages[J]. Arterioscler Thromb Vasc Bio, 2015,35(5):1101-1112.

      [13] Lichtman AH, Binder CJ, Tsimikas S, et al. Adaptive immunity in atherogenesis: new insights and therapeutic approaches[J]. J Clin Invest, 2013,123(1):27-36

      [14] Kyaw T, Tay C, Krishnamurthi S, et al. B1a B lymphocytes are atheroprotective by secreting natural IgM that increases IgM deposits and reduces necrotic cores in atherosclerotic lesions[J]. Circ Res, 2011,109(8):830-840.

      [15] Rahman M, Sing S, Golabkesh, Z, et al. IgM antibodies against malondialdehyde and phosphorylcholine are together strong protection markers for atherosclerosis in systemic lupus erythematosus: Regulation and underlying mechanisms[J]. Clin Immunol, 2016,166(167):27-37.

      [16] Tsiantoulas D, Diehl CJ, Witztum JL, et al. B cells and humoral immunity in atherosclerosis[J]. Circ Res, 2014,114(11):1743-1756.

      [17] Menon M, Blair PA, Isenberg DA, et al. A Regulatory Feedback between Plasmacytoid Dendritic Cells and Regulatory B Cells Is Aberrant in Systemic Lupus Erythematosus[J]. Immunity, 2016,44(3):683-697.

      [18] Araújo JA, Mesquita D Jr, de Melo Cruvinel W, et al. Th17 cells and CD4(+) multifunctional T cells in patients with systemic lupus erythematosus[J]. Rev Bras Reumatol Engl Ed, 2016,56(1):28-36.

      [19] Xing Q, Wang B, Su H, et al. Elevated Th17 cells are accompanied by FoxP3+Treg cells decrease in patients with lupus nephritis[J]. Rheumatol Int, 2012,32(4):949-958.

      [20] Shah K, Lee WW, Lee SH, et al. Dysregulated balance of Th17 and Th1 cells in systemic lupus erythematosus[J]. Arthritis Res Ther, 2010,12(2):R53.

      [21] Ma J, Yu J, Tao X, et al. The imbalance between regulatory and IL-17-secreting CD4+T cells in lupus patients[J]. Clin Rheumatol, 2010,29(11):1251-1258.

      [22] Yang J, Yang X, Zou H, et al. Oxidative Stress and Treg and Th17 Dysfunction in Systemic Lupus Erythematosus[J]. Oxid Med Cell Longev, 2016,2016:2526174.

      [23] Zhu M, Mo H, Li D, et al. Th17/Treg imbalance induced by increased incidence of atherosclerosis in patients with systemic lupus erythematosus (SLE)[J]. Clin Rheumatol, 2013,32(7):1045-1052.

      [24] Foks AC, Lichtman AH, Kuiper J, et al. Treating atherosclerosis with regulatory T cells[J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2015,35(2):280-287.

      [25] Golding A, Hasni S, Illei G, et al. The percentage of FoxP3+Helios+Treg cells correlates positively with disease activity in systemic lupus erythematosus[J]. Arthritis Rheum, 2013,65(11):2898-2906.

      [26] Nien Yee Kow, Anselm Mak, et al. Costimulatory Pathways: Physiology and Potential Therapeutic Manipulation in Systemic Lupus Erythematosus[J]. Clin Dev Immunol, 2013,2013:245928.

      [27] Wolf D, Jehle F, Michel NA, et al. Coinhibitory suppression of T cell activation by CD40 protects against obesity and adipose tissue inflammation in mice[J]. Circulation, 2014,129(23):2414-2425.

      [28] Türk U, Alioglu E, Tengiz I, et al. Statin use is associated with decreased CD-40 ligand expression on T lymphocytes of coronary atheroma plaque in patients with stable coronary artery disease[J]. Anadolu Kardiyol Derg, 2008,8(2):99-103.

      [29] Somers EC, Zhao W, Lewis EE, et al. Type Ⅰ interferons are associated with subclinical markers of cardiovascular disease in a cohort of systemic lupus erythematosus patients[J]. PLoS One, 2012,7(5):e37000.

      [30] Hagberg N, Ronnblom L. Systemic Lupus Erythematosus--A Disease with A Dysregulated Type I Interferon System[J]. Scand J Immunol, 2015,82(3):199-207.

      [31] Boshuizen MC, de Winther MP. Interferons as Essential Modulators of Atherosclerosis[J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2015,35(7):1579-1588.

      [32] Thacker SG, Zhao W, Smith CK, et al. Type I interferons modulate vascular function, repair, thrombosis, and plaque progression in murine models of lupus and atherosclerosis[J]. Arthritis Rheum, 2012,64(9):2975-2985.

      [33] An J, Woodward JJ, Sasaki T, et al. Cutting edge: Antimalarial drugs inhibit IFN-β production through blockade of cyclic GMP-AMP synthase-DNA interaction[J]. J Immunol, 2015,194(9):4089-4093.

      [34] Feng X, Chen W, Xiao L, et al. Artesunate inhibits type I interferon-induced production of macrophage migration inhibitory factor in patients with systemic lupus erythematosus[J]. Lupus, 2017,26(1):62-72.

      于慧敏(E-mail: huimin1973@126.com)

      10.3969/j.issn.1002-266X.2017.22.038

      R593.24

      A

      1002-266X(2017)22-0102-04

      2017-03-31)

      猜你喜歡
      內(nèi)皮粒細(xì)胞硬化
      山東:2025年底硬化路鋪到每個(gè)自然村
      經(jīng)方治療粒細(xì)胞集落刺激因子引起發(fā)熱案1則
      Apelin-13在冠狀動(dòng)脈粥樣硬化病變臨床診斷中的應(yīng)用價(jià)值
      磨削硬化殘余應(yīng)力分析與預(yù)測(cè)
      額顳葉癡呆伴肌萎縮側(cè)索硬化1例
      Wnt3a基因沉默對(duì)內(nèi)皮祖細(xì)胞增殖的影響
      內(nèi)皮祖細(xì)胞在缺血性腦卒中診治中的研究進(jìn)展
      嗜酸性粒細(xì)胞增多綜合征的治療進(jìn)展
      誤診為嗜酸粒細(xì)胞增多癥1例分析
      粒細(xì)胞集落刺激因子與子宮內(nèi)膜容受性
      洛川县| 邯郸县| 怀集县| 九江县| 板桥市| 延吉市| 阿鲁科尔沁旗| 甘孜县| 大化| 临夏市| 惠东县| 开封县| 正定县| 武鸣县| 伊春市| 开化县| 密云县| 神农架林区| 嵩明县| 金寨县| 沙湾县| 肥乡县| 曲靖市| 崇文区| 徐州市| 沙河市| 确山县| 南丰县| 永济市| 酒泉市| 察雅县| 紫金县| 察隅县| 临沂市| 合川市| 孟连| 玛纳斯县| 六安市| 武义县| 武定县| 石林|