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      牛腹瀉病毒的PCR檢測方法

      2017-04-19 06:42:26林春麗張海波陳紅霞侯春燕云雨生內(nèi)蒙古維克生生物科技有限公司
      獸醫(yī)導(dǎo)刊 2017年7期
      關(guān)鍵詞:槍頭瓊脂糖特異性

      林春麗 張海波 陳紅霞 侯春燕 云雨生/內(nèi)蒙古維克生生物科技有限公司

      牛腹瀉病毒的PCR檢測方法

      林春麗 張海波 陳紅霞 侯春燕 云雨生/內(nèi)蒙古維克生生物科技有限公司

      本研究是通過PCR技術(shù)對新生牛是否帶有牛病毒性腹瀉病毒進(jìn)行檢驗(yàn),排除其患病牛,制備無病毒血清,進(jìn)一步用于獸藥的研制。

      一、材料與方法

      (一)材料

      1.主要試劑。RNAiso plus購自Takara公司;氯仿、無水乙醇、75%酒精,DEPC水、ddH2O、DNA Marker購自TakaRa公司;核酸染料購自百泰克有限公司;高速低溫離心機(jī)購自Sigma公司;PCR擴(kuò)增儀為美國伯樂公司,型號為S1000;凝膠成像儀。

      2.樣品。共30個(gè)樣本包括:28個(gè)未知樣本均為新生牛初血清;空白對照;陰性對照和陽性對照。

      (二)方法

      1.PCR檢測。PCR技術(shù),即聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)是由Saiki發(fā)明,其技術(shù)對世界生物醫(yī)學(xué)的巨大推動作用,獲得了1992年的諾貝爾醫(yī)學(xué)獎。由美國PE-Cetus公司的Kary Banks Mulis在1985年建立的。這項(xiàng)技術(shù)可在試管內(nèi)的經(jīng)數(shù)小時(shí)反應(yīng)就將特定的DNA片段擴(kuò)增數(shù)百萬倍,這種迅速獲取大量單一核酸片段的技術(shù)在分子生物學(xué)研究中具有舉足輕重的意義,極大地推動了生命科學(xué)的研究進(jìn)展。它不僅是DNA分析最常用的技術(shù),而且在DNA重組與表達(dá)、基因結(jié)構(gòu)分析和功能檢測中具有重要的應(yīng)用價(jià)值。

      二、操作步驟。

      (一)樣品提取前準(zhǔn)備

      1.器材準(zhǔn)備。1 000μl槍,200μl槍,50μl槍、1 000μl槍頭,200μl槍頭,75%酒精棉,止血鉗,EP管,EP管架等。

      2.提取步驟。

      (1)取2 ml無菌無酶EP管,加入RNA Siso Plus(裂解液)900μL(加液過程中如槍頭接觸到EP管壁或其他物品,需更換槍頭),再分別吸取待測血清樣品、陽性對照、陰性對照各200μL于EP管中,每加一次樣品換一次槍頭。輕輕上下顛倒搖勻,至底部無沉淀,顏色均一,冰盒中靜置5min。將已檢測樣品放回-20℃冷凍保存。(陰性對照放在中間順序)

      (2)12 000 r/min、4℃,離心1 min。加入200μL的氯仿,上下顛倒20次混勻,至顏色均一為乳粉色,冰盒中靜置8 min。

      (3)12 000 r/min、4℃、離心15 min。在離心剩余2 min時(shí)準(zhǔn)備新1.5 ml無菌無酶EP管,加入800μl-20℃預(yù)冷的異丙醇。從離心機(jī)輕拿輕放取出EP管。(離心后液體分為三層,底層為有機(jī)溶液層,中層蛋白質(zhì),上層上清液含RNA)。吸取400μl上清液(分兩次200μl吸取,吸取上層液體時(shí)切勿碰觸或吸取中層蛋白質(zhì)),放入事先加好異丙醇的新1.5 ml EP管中,輕輕上下顛倒20次搖勻,-20℃靜置20 min。

      (4)12 000 r/min、4℃、離心15 min。離心機(jī)中EP管擺放方向保持一致,以使沉淀在管底同一側(cè)。若離心后不出沉淀繼續(xù)-20℃放置10~20 min后離心。棄上清,保留沉淀。沉淀即為RNA提取物,量很少,在倒上清液時(shí)注意,切勿將沉淀倒出。

      (5)加入1 ml 75%乙醇(DEPC水配制,加乙醇過程中如槍頭接觸到EP管壁或其他物品,需更換槍頭),輕輕上下顛倒,洗滌沉淀,將沉淀懸浮起來即可。

      (6)7 500 r/min、4℃、離心5 min。棄上清,保留沉淀。用200μl槍頭將管底殘余乙醇液體吸凈,吸取一個(gè)樣品換一個(gè)槍頭,注意不要碰觸和吸取到RNA沉淀。

      (7)EP管中的RNA在超凈工作臺中室溫下自然干燥10 min。加入20μL的無RNase水(將水加到沉淀上),輕彈溶解沉淀,短期使用-20℃保存,長期使用保存于-70℃下。

      (二)引物設(shè)計(jì)

      根據(jù)Genebank數(shù)據(jù)庫,使用引物設(shè)計(jì)軟件Primeier 5.0設(shè)計(jì)BVDV特異性引物如下。

      gB1、gB2引物

      FR oe rv we引ar s物red名 PP稱rrii m meerr 5 5''--TG AG CT GA AC CG核TT CC苷GT TC酸TC CA序GA CG列GC CT TG CC TC CC --33’’

      gE1、gE2引物:

      FR oe rv we引ras物red名 PP稱rrii m meerr 5 5''--CGTCTTTTGCTG核CGG苷TCCC酸GCAG序CA T列CT GG GA T GT CCTGT --33’’

      PCR操作程序

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      PCR反應(yīng)參數(shù)設(shè)定

      注:按照上述表格所示,反應(yīng)體系配制在冰盒上進(jìn)行,設(shè)定好反應(yīng)程序后,將裝有上述體系液體PCR反應(yīng)管,包括對照管(空白PCR體系管和水樣PCR體系管)放入Smart CycLer System中按照表格中參數(shù)設(shè)定PCR儀進(jìn)行PCR反應(yīng)。

      圖1 PCR儀

      (三)電泳分析

      1.制膠。稱取1.35 g瓊脂糖粉放入錐形瓶中(注:倒入過程中避免瓊脂糖粉末粘在錐形瓶壁上。)加入90 ml 1*TBE溶液,微波爐加熱無絮狀物至完全溶解(注:至少沸騰3次),取出錐形瓶后,冷卻至60℃左右,加入17μL的核酸染料,搖至徹底混勻后倒入帶有梳子的膠槽中(輕輕混勻即可,避免氣泡產(chǎn)生),冷卻凝固40 min。

      2.電泳。

      (1)將制好的膠放入電泳槽中,倒入1*TBE,液位高于膠面2 mm。

      (2)用移液槍取20μl 6×Loading Buffer于載玻片上,并取3μl加至PCR產(chǎn)物管中反復(fù)吹打三次混勻后吸取10μl混合液加入瓊脂糖凝膠點(diǎn)樣孔中,從左面第二個(gè)孔開始依次點(diǎn)樣品、陰性對照與陽性對照,最后取7μl marker點(diǎn)于第一個(gè)孔中。

      (3)將電泳儀正負(fù)極對應(yīng)連接,開啟電泳儀電源開關(guān),在120V電壓下電泳50 min。將跑完的瓊脂糖凝膠從電泳槽取出,放在凝膠成像儀中,進(jìn)行觀察。

      三、結(jié)果判定

      圖2 未感染與感染樣本對照

      如圖2,12號為陰性對照,無明亮的;24號為陽性對照,出現(xiàn)明亮的條帶,證明實(shí)驗(yàn)成立。剩余樣本在316 bp處,8號、9號、10號、11號、20號、21號、23號出現(xiàn)明亮的條帶,說明該樣本血清樣本染牛腹瀉病毒。

      四、影響PCR檢測因素

      (一)dNTP的質(zhì)量與濃度

      1.dNTP的質(zhì)量與濃度和PCR擴(kuò)增效率有密切關(guān)系。dNTP粉呈顆粒狀,如保存不當(dāng)易變性失去生物學(xué)活性。在PCR反應(yīng)中,dNTP應(yīng)為50~200 umol/L,尤其是注意4種dNTP的濃度要相等( 等摩爾配制),如其中任何一種濃度不同于其它幾種時(shí)(偏高或偏低),就會引起錯(cuò)配。濃度過低又會降低PCR產(chǎn)物的產(chǎn)量。dNTP能與Mg2+結(jié)合,使游離的Mg2+濃度降低。

      2.Mg2+濃度。Mg2+對PCR擴(kuò)增的特異性和產(chǎn)量有顯著的影響,在一般的PCR反應(yīng)中,各種dNTP濃度為200 umol/L 時(shí),Mg2+濃度為1.5~2.0 mmol/L 為宜。Mg2+濃度過高,反應(yīng)特異性降低,出現(xiàn)非特異擴(kuò)增,濃度過低會降低Taq DNA聚合酶的活性,使反應(yīng)產(chǎn)物減少。

      3.溫度與時(shí)間的設(shè)置?;赑CR原理三步驟而設(shè)置變性-退火-延伸三個(gè)溫度點(diǎn)。在標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)中采用三溫度點(diǎn)法,雙鏈DNA在90℃~95℃變性,再迅速冷卻至40℃~60℃,引物退火并結(jié)合到靶序列上,然后快速升溫至70℃~75℃,在Taq DNA 聚合酶的作用下,使引物鏈沿模板延伸。對于較短靶基因(長度為100~300 bp時(shí))可采用二溫度點(diǎn)法, 除變性溫度外、退火與延伸溫度可合二為一,一般采用94℃變性,65℃左右退火與延伸(此溫度Taq DNA酶仍有較高的催化活性)。

      4.循環(huán)次數(shù)。循環(huán)次數(shù)決定PCR擴(kuò)增程度。PCR循環(huán)次數(shù)主要取決于模板DNA的濃度。一般的循環(huán)次數(shù)選在30~40次之間,循環(huán)次數(shù)越多,非特異性產(chǎn)物的量亦隨之增多。

      (二)影響PCR特異性的因素

      通過上述內(nèi)容,可以看出有許多因素可以影響PCR的特異性。

      1.退火步驟的嚴(yán)格性:提高退火溫度可以減少不匹配的雜交,從而提高特異性。

      2.減短退火時(shí)間及延伸時(shí)間可以減少錯(cuò)誤引發(fā)及錯(cuò)誤延伸。

      3.引物二聚體是最常見的副產(chǎn)品,降低引物及酶的濃度也可以減少錯(cuò)誤引發(fā),尤其是引物的二聚化.

      4.改變MgCl2濃度可以改進(jìn)特異性,這可能是提高反應(yīng)嚴(yán)格性或者對Taq酶的直接作用。

      一般認(rèn)為PCR產(chǎn)物應(yīng)在48 h以內(nèi)完成電泳檢測,有些最好于當(dāng)日電泳檢測,大于48 h后帶型就會出現(xiàn)不規(guī)則,甚至消失。

      (略)

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