王楠 隋海娟 張玲玲 金英 趙彬
阿托伐他汀對淀粉樣β蛋白誘導(dǎo)大鼠原代海馬神經(jīng)元損傷保護(hù)作用的研究
王楠 隋海娟 張玲玲 金英 趙彬
目的 探討阿托伐他汀(atorvastatin,Ato)對β淀粉樣蛋白(Aβ)誘導(dǎo)的體外培養(yǎng)原代海馬神經(jīng)元損傷保護(hù)作用。方法 選用出生0~24 h Sprague-Dawley大鼠乳鼠,解剖顯微鏡下分離海馬,進(jìn)行海馬神經(jīng)元體外培養(yǎng),培養(yǎng)10 d后用于實驗。將培養(yǎng)的海馬神經(jīng)元分為3組:(1)正常對照組:加入含有1%(質(zhì)量濃度) DMSO培養(yǎng)基;(2)Aβ1-42組:加入1.25 μmol/L Aβ;(3)Aβ(1.25 μmol/L)+不同濃度阿托伐他汀組(0.1、0.5、1、2.5 μmol/L)。應(yīng)用CellTiter-GloTM熒光細(xì)胞活性試劑盒檢測培養(yǎng)海馬神經(jīng)元ATP含量,用以反映神經(jīng)元活力;通過CytoTox-ONETM試劑盒測定培養(yǎng)細(xì)胞上清液中乳酸脫氫酶(LDH)含量,用以測定神經(jīng)元細(xì)胞膜的損傷程度;應(yīng)用免疫熒光染色觀察神經(jīng)元突觸素(SYP)、突觸后致密蛋白95(PSD-95)、bassoon蛋白表達(dá)。Western印跡法半定量檢測海馬神經(jīng)元突觸蛋白SYP、PSD-95、bassoon的改變。結(jié)果 與正常對照組比較,培養(yǎng)10 d海馬神經(jīng)元經(jīng)1.25 μmol/L Aβ1-42作用48 h后,其ATP和LDH水平均明顯降低(均P<0.01),而0.5、1.0、2.5 μmol/L Ato組能夠明顯抑制Aβ1-42引起的ATP和LDH水平降低(P<0.01)。免疫熒光及Western blot結(jié)果顯示,1.25 μmol/L Aβ1-42可使海馬神經(jīng)元SYP、PSD-95、bassoon蛋白表達(dá)明顯降低,而Ato能夠明顯抑制Aβ1-42引起的SYP、PSD-95、bassoon蛋白表達(dá)降低。結(jié)論 Ato對Aβ誘導(dǎo)的體外培養(yǎng)海馬神經(jīng)元毒性有保護(hù)作用,這種保護(hù)作用可能與Ato對抗Aβ1-42引起的海馬神經(jīng)元SYP、PSD-95、bassoon表達(dá)降低有關(guān)。
阿爾茨海默??;阿托伐他??;海馬神經(jīng)元;淀粉樣β蛋白;突觸蛋白
阿爾茨海默病(Alzheimer disease,AD)是一種中樞神經(jīng)系統(tǒng)退行性疾病,是老年癡呆的主要原因[1]。雖然AD患者腦內(nèi)的病理學(xué)改變比較明確,但其發(fā)病機(jī)制尚不清楚。許多研究表明β淀粉樣蛋白(amyloid-β peptide,Aβ)在AD患者腦內(nèi)沉積是AD發(fā)病的中心環(huán)節(jié)。AD臨床表現(xiàn)為進(jìn)行性記憶功能障礙和認(rèn)知行為異常。大量研究表明AD的記憶功能障礙與可溶性Aβ1-42觸發(fā)的突觸功能失調(diào)和過度磷酸化tau蛋白聚集有關(guān)[2]。離體和再體實驗研究表明Aβ1-42能激活谷氨酸受體,導(dǎo)致異常鈣離子內(nèi)流,抑制長時程突觸傳遞增強(qiáng),最終導(dǎo)致突觸功能喪失[3-4]。阿托伐他汀(atorvastatin,Ato)屬于他汀類藥物,因其具有半衰期長、代謝好、強(qiáng)效安全的調(diào)脂作用,而廣泛用于臨床。目前認(rèn)為長期服用他汀類藥物能降低AD的發(fā)病率[5-6],他汀類藥物有降低Aβ產(chǎn)生、抑制炎性反應(yīng)、抗凋亡、抗氧化作用[7-8]。該研究應(yīng)用體外培養(yǎng)大鼠乳鼠海馬神經(jīng)元為模型,進(jìn)一步探討Ato對Aβ1-42引起的海馬神經(jīng)元損傷保護(hù)作用機(jī)制。
1.1 藥品與試劑 Ato購于LKT Laboratories, Inc.公司(批號23922105,純度>98%),用二甲亞砜(DMSO)溶解。Aβ1-42(批號:SCP0038)為Sigma公司產(chǎn)品,用無菌生理鹽水溶解,溶解后37 ℃孵育24 h,使其成為聚集狀態(tài)。DMEM、F12培養(yǎng)基購于Invitrogen公司;DMSO、胰蛋白、L-多聚賴氨酸均購于Sigma公司;新生胎牛血清、馬血清購于廣州蕊特生物科技有限公司;HEPES購于Calbiochem公司;阿糖胞苷購于意大利S.P.A公司;CellTiter-GloTM熒光細(xì)胞活性試劑盒(G7570)、CytoTox-ONETMHomogeneous Membrane Inte-grity試劑盒(G7890)購自Promega公司;鼠突觸相關(guān)蛋白突觸素(synaptophysin,SYP)多克隆抗體、兔突觸后致密蛋白95(PSD95)多克隆抗體購自Santa Cruz公司;兔bassoon多克隆抗體(ab76065)、山羊抗鼠二抗購自Abcam公司;β-肌動蛋白(β-actin)抗體購于Beyotime試劑公司;SuperSignal West Pico化學(xué)發(fā)光底物購于美國Thermo scientific公司。其他相關(guān)試劑均由遼寧醫(yī)學(xué)院藥理實驗室提供。
1.2 方法
1.2.1 海馬神經(jīng)元原代培養(yǎng):取出生24 h以內(nèi)的SD 大鼠乳鼠(遼寧醫(yī)學(xué)院動物實驗中心提供),75%(體積分?jǐn)?shù))酒精消毒,取出海馬,剪成1 mm3左右的小塊。加入 0.125%(質(zhì)量濃度)胰蛋白酶進(jìn)行消化。待細(xì)胞分散后,終止消化。200目篩網(wǎng)過濾,1000g離心10 min,用含10%(體積分?jǐn)?shù))胎牛血清和10%(體積分?jǐn)?shù))馬血清的DMEM/F12培養(yǎng)基制成細(xì)胞懸液,調(diào)整細(xì)胞密度為1×105/L~1×107/L,接種在鋪有L-多聚賴氨酸培養(yǎng)皿或6孔培養(yǎng)板中,置于37 ℃、5%(體積分?jǐn)?shù))CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。培養(yǎng)48 h后加入含阿糖胞苷(終濃度為5 mg/L)的培養(yǎng)基,抑制非神經(jīng)細(xì)胞增殖。以后每3 d半量換液1次。
1.2.2 細(xì)胞處理及分組:海馬神經(jīng)元培養(yǎng)10 d用于實驗,并分為3組:(1)正常對照組:加入含有1%(質(zhì)量濃度)DMSO培養(yǎng)基;(2)Aβ1-42組:加入濃度1.25 μmol/L的Aβ;(3)Aβ(1.25 μmol/L)+不同濃度Ato組(0.1、0.5、1.0、2.5 μmol/L,以下分別簡稱Ato 0.1、0.5、1.0、2.5 μmol/L組):將不同濃度Ato加入到培養(yǎng)神經(jīng)元作用1 h,然后加入Aβ作用48 h。
1.2.3 細(xì)胞活力檢測:將接種在96孔培養(yǎng)板的海馬神經(jīng)元經(jīng)各藥物處理后,按CellTiter-GloTM熒光細(xì)胞活性試劑盒和CytoTox-ONETMHomo- geneous Membrane Integrity試劑盒操作步驟進(jìn)行ATP含量及乳酸脫氫酶(LDH)釋放測定。
1.2.4 免疫熒光染色檢測SYP、PSD-95和bassoon表達(dá):培養(yǎng)10 d的海馬神經(jīng)元進(jìn)行處理后移去培養(yǎng)基,用PBS漂洗3次;用新鮮配制的4%(質(zhì)量濃度)多聚甲醛室溫固定30 min,PBS漂洗3次;0.3%(質(zhì)量濃度)TritonX-100作用30 min,PBS漂洗3次;室溫下3%(體積分?jǐn)?shù))山羊血清封閉30 min;加入SYP、PSD-95、bassoon抗體(1∶100)4℃過夜,PBS漂洗后,加入異硫氰酸熒光素(FITC)標(biāo)記的二抗和Cy3標(biāo)記的二抗作用2 h。熒光倒置顯微鏡下檢測SYP、PSD-95、bassoon表達(dá)。
1.2.5 Western印跡法檢測SYP、PSD-95、bassoon蛋白表達(dá):原代培養(yǎng)的海馬神經(jīng)元,經(jīng)各組處理后,用冷的PBS沖洗,立即放入預(yù)冷的裂解緩沖液中,4℃超聲粉碎后,12 000g離心,取上清,用BCA法測定蛋白質(zhì)含量,以牛血清白蛋白為標(biāo)準(zhǔn)品,將各組蛋白濃度調(diào)成一致。用10%~12%(質(zhì)量濃度)的SDS-PAGE分離蛋白質(zhì),每個泳道蛋白上樣量為20 μg。為準(zhǔn)確判斷目的蛋白帶的位置,一個泳道加See Blue Plus 2預(yù)染蛋白標(biāo)記物,電泳后將PAGE凝膠中的蛋白質(zhì)電轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜上,取出后將膜放入3%(體積分?jǐn)?shù))牛血清白蛋白中,封閉60 min。將膜放入一抗中(1∶1000),4℃過夜。TTBS沖洗后,將膜放入二抗(1∶1000)中,室溫孵育1~2 h,然后用TTBS洗膜3次,每次10 min,將膜在SuperSignal West Pico底物工作液中孵育5 min,吸干多余試劑,放置化學(xué)發(fā)光凝膠系統(tǒng)分析儀中進(jìn)行Ecl化學(xué)發(fā)光。每個抗體測定時都進(jìn)行β-肌動蛋白測定,以保證蛋白上樣量的一致性。利用Visionworks 6.3.3圖像采集及分析軟件對蛋白帶進(jìn)行分析。實驗重復(fù)3次。
1.3 統(tǒng)計學(xué)處理 實驗數(shù)據(jù)由Spss11.0統(tǒng)計軟件完成,符合正態(tài)分布的計量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用One-way ANOVA分析,兩兩比較采用LSD檢驗。以P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)差異。
2.1 Ato對Aβ1-42誘導(dǎo)海馬神經(jīng)元細(xì)胞活力影響 與正常對照組比較,Aβ1-42組ATP和LDH水平均降低(P<0.01);與Aβ1-42組比較,Ato 0.5、1.0、2.5 μmol/L組ATP和LDH水平均升高(P<0.01),而Ato 0.1 μmol/L組ATP和LDH水平無統(tǒng)計學(xué)變化(P>0.05)。結(jié)果見表1。
表1 各組海馬神經(jīng)元ATP和LDH水平比較(±s,n=3,%)
注:LDH:乳酸脫氫酶;Ato:阿托伐他汀;Aβ:β淀粉樣蛋白,圖1、2同;與正常對照組比較,aP<0.01;與Aβ1-42組比較,bP<0.01;與Ato 0.5 μmol/L組比較,cP<0.01;與 Ato 1.0 μmol/L組比較,dP<0.01
2.2 免疫熒光檢測 結(jié)果見圖1。(1)SYP免疫陽性反應(yīng)呈點狀沿神經(jīng)突起和神經(jīng)元胞體周圍排列。正常對照組海馬神經(jīng)元SYP點狀排列密集,熒光強(qiáng)度高,Aβ1-42組海馬神經(jīng)元SYP較正常對照組明顯減少,加入Ato 1.0 μmol/L可對抗Aβ引起的SYP減少。(2)bassoon蛋白在神經(jīng)元成點狀分布,應(yīng)用Aβ1-421.25 μmol/L作用48 h,bassoon蛋白表達(dá)量明顯降低,熒光結(jié)果表現(xiàn)為點狀密度和強(qiáng)度明顯降低。在加入Aβ1-42前1 h加入Ato 1.0 μmol/L可明顯對抗Aβ1-42引起的海馬神經(jīng)元bassoon蛋白表達(dá)降低。(3)PSD-95蛋白在神經(jīng)元胞體和突起成點狀分布。Aβ1-42組PSD-95蛋白表達(dá)量明顯降低,表現(xiàn)為點狀密度和強(qiáng)度明顯降低,在加入Aβ1-42前1 h加入Ato 1.0 μmol/L可明顯對抗Aβ1-42引起的海馬神經(jīng)元PSD-95表達(dá)量降低。
注:SYP:突觸素,PSD-95:突觸后致密蛋白95,圖2同 圖1 熒光倒置顯微鏡下觀察各組大鼠海馬神經(jīng)元突觸蛋白SYP、bassoon、PSD-95表達(dá)(免疫熒光,×40)
注:1:正常對照組;2:Aβ1-42組;3:Ato 0.5 mmol/L組;4:Ato 1.0 mmol/L組;5:Ato 2.5 mmol/L組;與正常對較照組比,aP<0.01;與Aβ1-42組比較,bP<0.01;與Ato 0.5 μmol/L組比較,cP<0.01;與 Ato 1.0 μmol/L組比較,dP<0.01 圖2 Western blot檢測各組大鼠海馬神經(jīng)元 SYP、bassoon和PSD-95 蛋白表達(dá)比較
2.3 Western blot檢測 與正常對照組比較,Aβ1-42組SYP、PSD-95、bassoon蛋白表達(dá)減少,而Ato(0.5、1.0、2.5 μmol/L)可明顯對抗Aβ1-42引起的海馬神經(jīng)元SYP、bassoon、PSD-95蛋白表達(dá)減少,并呈明顯濃度依賴性(圖2)。
AD患者大腦中老年斑的主要成分Aβ可導(dǎo)致突觸功能損害,可能是發(fā)病機(jī)制中的起始因素和關(guān)鍵環(huán)節(jié)[9],Aβ有40~43個氨基酸殘基,主要有Aβ40和Aβ42兩種形式,其中Aβ42聚集性最強(qiáng),有較強(qiáng)神經(jīng)細(xì)胞毒性[10-11]。研究結(jié)果顯示沉積狀態(tài)Aβ可引起神經(jīng)突退縮和神經(jīng)元變性[12]。ATP是活細(xì)胞新陳代謝的一個指標(biāo),通過測定培養(yǎng)細(xì)胞ATP的含量可反映細(xì)胞活力[13]。測定LDH釋放可反映細(xì)胞膜受損程度。本研究結(jié)果顯示,Aβ1-42組ATP和LDH水平較對照組降低,表明Aβ1-42對海馬神經(jīng)元有明顯的神經(jīng)毒性作用,而Ato組ATP和LDH水平高于Aβ1-42組,提示Ato可對抗Aβ1-42對海馬神經(jīng)元的損傷作用;另外,通過采用不同濃度Ato進(jìn)行干預(yù)顯示,在一定范圍內(nèi),隨著Ato濃度從0.5、1.0、2.5 μmol/L逐漸增加,ATP和LDH水平逐漸增加,提示Ato對抗Aβ1-42對海馬神經(jīng)元的損傷作用逐漸增強(qiáng),具有劑量依賴關(guān)系。
大腦是由相互連接的神經(jīng)元網(wǎng)絡(luò)形成,突觸-突觸連接是神經(jīng)元之間信息傳遞的重要部位,與學(xué)習(xí)、記憶密切相關(guān),突觸容易發(fā)生動態(tài)變化,突觸可塑性是學(xué)習(xí)和記憶的基礎(chǔ)。研究表明突觸的功能異常和丟失被廣泛認(rèn)為是AD患者認(rèn)知功能下降的細(xì)胞機(jī)制[14]。突觸蛋白是一組與突觸相關(guān)的具有神經(jīng)元特異性的磷酸蛋白,能夠調(diào)節(jié)神經(jīng)遞質(zhì)的釋放并參與神經(jīng)元早期發(fā)育。SYP是最豐富的突觸囊泡蛋白,高度集中在腦組織突觸前部的軸突末梢,SYP調(diào)控神經(jīng)遞質(zhì)的釋放。bassoon是一種突觸鷹架蛋白,主要集中在突觸前活性部位,與突觸遞質(zhì)釋放和突觸可塑性方面有關(guān)。PSD-95是另一種鷹架蛋白,該蛋白在突觸可塑性中產(chǎn)生重要的作用。雷公藤可減少AD轉(zhuǎn)基因小鼠海馬區(qū)Aβ沉積,增加AD轉(zhuǎn)基因小鼠海馬區(qū)PSD-95和SYP表達(dá),從而明顯改善突觸變性和認(rèn)知損害[15],提高快速老化的SAMP8鼠海馬CA1區(qū)PSD-95和腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(BDNF)表達(dá),從而改善快速老化的SAMP8鼠認(rèn)知功能[16]。本研究免疫熒光結(jié)果及Western blot半定量結(jié)果顯示,Aβ1-42組海馬神經(jīng)元SYP、bassoon、PSD-95蛋白較正常對照組明顯減少,表明Aβ可引起海馬神經(jīng)元相關(guān)突觸蛋白表達(dá)減少。這與Zeng等[15]研究結(jié)果一致。另外,本研究采用不同濃度Ato對Aβ引起的海馬神經(jīng)元損傷的影響進(jìn)行觀察發(fā)現(xiàn),Ato能明顯對抗Ab1-42引起的SD大鼠海馬神經(jīng)元SYP、PSD-95、bassoon蛋白的降低,提示Ato對Aβ1-42引起的突觸損傷具有明顯的對抗作用,且隨Ato濃度增加,其SYP、PSD-95、bassoon蛋白表達(dá)逐漸增加,表明Ato對抗Aβ1-42引起的突觸蛋白SYP、PSD-95、bassoon表達(dá)降低存在劑量依賴關(guān)系。
Ato屬于他汀類調(diào)血脂類藥物,是羥甲基戊二酰輔酶A還原酶抑制劑,已被廣泛應(yīng)用于臨床治療高膽固醇血癥、預(yù)防心腦血管事件。最近研究結(jié)果提示他汀類藥物有獨立于降脂作用之外的神經(jīng)細(xì)胞保護(hù)作用。長期服用他汀類藥物能降低AD的發(fā)病率,改善AD患者認(rèn)知障礙[17]。另有研究對AD模型犬應(yīng)用阿托伐他汀鈣大劑量(80 mg/d)干預(yù)14.5個月,結(jié)果顯示阿托伐他汀鈣可明顯改善AD模型犬的認(rèn)知功能,其作用機(jī)制與Ato的抗氧化損傷及抗炎性反應(yīng)作用有關(guān)[18]。
綜上所述,本研究通過觀察Ato對Aβ誘導(dǎo)的大鼠原代海馬神經(jīng)元培養(yǎng)細(xì)胞及大鼠海馬突觸相關(guān)蛋白表達(dá)變化的影響,結(jié)果證實Ato有助于突觸損傷修復(fù),為他汀類藥物阻止Aβ引起的神經(jīng)毒性,改善AD臨床癥狀提供了一定的實驗證據(jù)。他汀類藥物詳細(xì)作用機(jī)制值得進(jìn)一步深入研究,為AD預(yù)防和治療提供更多的依據(jù)。
[1]Selkoe DJ, Schenk D. Alzheimer’s disease: molecular understanding predicts amyloid-based therapeutics[J]. Annu Rev Pharmacol Toxicol,2003,43:545-584.
[2]Reifert J, Hartung-Cranston DA, Feinstein SC. Amyloid beta-mediated cell death of cultured hippocampal neurons reveals extensive Tau fragmentation without increased full-length tau phosphorylation[J].J Biol Chem,2011, 286(23):20797-20811.
[3]Ferreira ST, Klein WL. The Aβ oligomer hypothesis for synapse failure and memory loss in Alzheimer’s disease[J].Neurobiol Learn Mem, 2011, 96(4):529-543.
[4]Benilova I, Karran E, De Strooper B. The toxic Aβ oligomer and Alzheimer’s disease: an emperor in need of clothes [J].Nat Neurosci, 2012, 15(3):349-357.
[5]Bettermann K, Arnold AM, Williamson J,et al.Statins, risk of dementia, and cognitive function: secondary analysis of the Ginkgo Evaluation of Memory Study(GEMS) [J].J Stroke Cerebrovasc Dis, 2012,21(6):436-444.
[6]Wong WB, Lin VW, Boudreau D,et al.Statins in the prevention of dementia and Alzheimer’s disease: a meta-analysis of observational studies and an assessment of confounding[J]. Pharmacoepidemiol Drug Saf, 2013,22(4):345-358.
[7]Abrahamson EE, Ikonomovic MD, Dixon CE, et al. Simvastatin therapy prevents brain trauma-induced increases in beta-amyloid peptide levels [J]. Ann Neurol, 2009,66(3):407-414.
[8]Hosaka A, Araki W, Oda A, et al. Statins reduce amyloid beta-peptide production by modulating amyloid precursor protein maturation and phosphorylation through a cholesterol-independent mechanism in cultured neurons[J].Neurochem Res, 2013,38(3):589-600.
[9]Puzzo D, Privitera L, Fa M, et al. Endogenous amyloid-β is necessary for hippocampal synaptic plasticity and memory[J]. Ann Neurol, 2011, 69(5):819-830.
[10]Bate C, Williams A. Amyloid-β-induced synapse damage is mediated via cross-linkage of cellular prion proteins[J]. J Biol Chem, 2011, 286(44):37955-37963.
[11]Moreno JA, Mallucci GR. Dysfunction and recovery of synapses in prion disease: implications for neurodegeneration[J]. Biochem Soc Trans, 2010, 38(2):482-487.
[12]Haass C, Selkoe DJ. Soluble protein oligomers in neurodegeneration: lessons from the Alzheimer’s amyloid beta-peptide[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2007, 8(2):101-112.
[13]Pannese E. Morphological changes in nerve cells during normal aging[J]. Brain Struct Funct, 2011, 216(2):85-89.
[14]Zhang LL, Sui HJ, Liang B, et al. Atorvastatin prevents amyloid-beta peptide oligomer-induced synapto toxicity and memory dysfunction in rats through a p38 MAPK-dependent pathway[J]. Acta Pharmacol Sin, 2014,35:716-726.
[15]Zeng Y,ZhangJ,Zhu Y,et al. Tripchlorolide improves cognitive deficits by reducing amyloid β and upregulating synapse-related proteins in a transgenic model of Alzheimer’s disease[J].J Neurochem,2015,133(1):38-52.
[16]Lin N,Pan XD,Chen AQ,et al.Tripchlorolide improves age-associated cognitive deficits by reversing hippocampal synaptic plasticity impairment and NMDA receptor dysfunction in SAMP8 mice[J]. Behav Brain Res,2014 ,258:8-18.
[17]Nadkarni NK, Perera S, Hanlon JT, et al. Statins and brain integrity in older adults:secondary analysis of the Health ABC study[J]. Alzheimers Dement,2015,11(10):1202-1211.
[18]Sparks DL,Sabbagh MN,Connor DJ,et al.Atorvastatin therapy lowers circulating cholesterol but not free radical activity in advance of identifiable clinical benefit in the treatment of mild-to-moderate AD[J].Curr Alzheimer Res,2005,2(3):343-353.
(本文編輯:時秋寬)
Neuroprotective effect of atorvastatin on amyloid-β protein-induced neurotoxicity in cultured hippocampal neurons
WANGNan,SUIHaijuan,ZHANGLingling,JINYing*,ZHAOBin.
*DepartmentofPharmacology,LiaoningMedicalUniversity,JinzhouLiaoning121001,China
Corresponding author:JIN Ying, Email:jyjinying1130@163.com
Objective To investigate the neuroprotective effect of atorvastatin(Ato) on amyloid-β protein-induced neurotoxicity in cultured hippocampal neurons. Methods Primary cultures were obtained from hippocampi of 0 h to 24 h-old Sprague-Dawley rats. After 10 days in culture, the hippocampi cells were divided into a control group, an Aβ1-42(1.25 μmol/L) group, and a treatment group with different Ato concentrations (0.1, 0.5, 1.0, 2.5 μmol/L). The ATP content of the culture was quantified using CellTiter-GloTMassay. The lactate dehydrogenase released into the culture media was measured using CytoTox-ONETMassay. The changes of SYP, bassoon and PSD-95 proteins were observed by immunofluorescence staining. SYP, bassoon and PSD-95 protein were evaluated using Western blotting. Results Compared with the normal control group, in hippocampal neurons cultured for 10 d by Aβ1-42(1.25 μmol/L) for 48 h, ATP% and LDH% decreased significantly(P<0.01). Adding Ato (0.5, 1.0, 2.5 μmol/L) significantly inhibited Aβ1-42induced ATP% and LDH% decreases (P<0.01). Immunofluorescence and Western results showed that Aβ1-42(1.25 μmol/L) decreased SYP, bassoon and PSD-95 protein expression. Compared with the Aβ1-42group, Ato could significantly inhibit the Aβ1-42induced above effects. Conclusions Ato has a protective effect against the neurotoxicity of amyloid beta protein to cultured hippocampal neuronsinvitro, which may be related to the inhibition of synaptic proteins.
Alzheimer’s disease; atorvastatin; hippocampal neurons; amyloid-β peptide; synapse protein
10.3969/j.issn.1006-2963.2017.03.007
121001遼寧醫(yī)學(xué)院藥理學(xué)教研室〔王楠(現(xiàn)工作于沈陽市第五人民醫(yī)院)、隋海娟、張玲玲、金英〕;110023沈陽市第五人民醫(yī)院(趙彬)
金英,Email:jyjinying1130@163.com
R742.8+9
A
1006-2963(2017)03-0178-05
2016-06-02)
中國神經(jīng)免疫學(xué)和神經(jīng)病學(xué)雜志2017年3期